Кортикотропин-рилизинг фактор (КРФ) и капсаицин-чувствительные афферентные нейроны с эфферентно-подобной функцией (КЧН) вносят важный вклад в регуляцию функций желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) и гастропротекцию. Цель обзора заключалась в анализе данных литературы, в том числе и результатов собственных исследований, о взаимодействии КРФ и КЧН в обеспечении гастропротекции и регуляции функций ЖКТ, с фокусом на наиболее изученное их взаимодействие в регуляции моторной функции ЖКТ. На основании результатов исследований авторов обзора обсуждается возможность вклада КЧН в реализацию гастропротективного влияния КРФ и, наоборот, возможность участия КРФ в обеспечении гастропротективного действия капсацина, активирующего КЧН. Рассматривается вклад глюкокортикоидных гормонов в реализацию гастропротективного действия КРФ и компенсаторная гастропротективная роль данных гормонов в условиях выключения из функционирования КЧН.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
Кортикотропин-рилизинг фактор (КРФ), нейропептид, состоящий из 41 аминокислотной последовательности [141], является ключевым медиатором стрессорной реакции. КРФ, продуцирующийся клетками паравентрикулярного ядра (ПВЯ) гипоталамуса в ответ на действие стрессора, стимулирует синтез и секрецию адренокортикотропного гормона (АКТГ) и бэта-эндорфина кортикотрофами передней доли гипофиза [141].
Список литературы
1. Багаева Т.Р., Бобрышев П.Ю., Комкова О.П., Филаретова Л.П. Роль глюкокортикоидных гормонов и капсаицин-чувствительных нейронов в гастропротективном эффекте ишемического прекондиционирования // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2012. Т. 98. № 10. С. 1242-1249. EDN: PFCZAH
2. Бобрышев П.Ю., Подвигина Т.Т., Багаева Т.Р., Филаретова Л.П. Компенсаторное гастропротективное действие глюкокортикоидных гормонов в условиях выключения функции капсаицин-чувствительных нейронов у крыс // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2006. Т. 92. № 8. С. 1006-1015. EDN: JSCIST
3. Золотарев В.А., Хропычева Р.П. Взаимодействие синтаз оксида азота с циклооксигеназами при регуляции физиологических и патофизиологических процессов и его роль в механизмах адаптивной гастропротекции // Успехи физиологических наук. 2021. Т. 52. № 4. С. 3–17. DOI: 10.31857/S0301179821040093 EDN: FNJSCH
4. Мязина М.А., Багаева Т.Р., Филаретова Л.П. Влияние метирапона на гастропротективное действие кортикотропин-рилизинг фактора при его центральном введении в условиях ульцерогенного влияния индометацина // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2014. Т. 100. № 12. С. 1421-1430. EDN: TBFHBV
5. Подвигина Т.Т., Бобрышев П.Ю., Багаева Т.Р., Мальцев Н.А., Левкович Ю.И., Филаретова Л.П. Влияние десенситизации капсаицин-чувствительных афферентных нейронов на микроциркуляцию в желудке у крыс зависит от содержания глюкокортикоидных гормонов в крови // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2008. Т. 94. № 6. С. 700-709. EDN: JTGCAD
6. Подвигина Т.Т., Морозова О.Ю., Солнушкин С.Д., Чихман В.Н., Филаретова Л.П. Влияние сенсититизации и десенситизации капсаицин-чувствительных нейронов на образование эрозий в слизистой оболочке желудка, индуцированных индометацином, у крыс: роль глюкокортикоидных гормонов // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2019. Т. 105. № 2. С. 225-237. DOI: 10.1134/S0869813919020080 EDN: YYYZRR
7. Филаретова Л.П., Багаева Т.Р., Морозова О.Ю. Гастропротективное действие кортикотропин-рилиинг фактора (КРФ): вовлечение глюкококортикоидных гормонов и КРФ рецепторов 2-го типа // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2012. Т. 98. № 12. С. 1555-1566. EDN: PPLUWB
8. Филаретова Л.П., Подвигина Т.Т., Багаева Т.Р., Бобрышев П.Ю. Компенсаторная гастропротективная роль глюкокортикоидных гормонов // Рос. физиол. журн. им. И.М. Сеченова. 2007. Т. 93. № 11. С. 1217-1228. EDN: IJBHTF
9. Филаретова Л.П., Ярушкина Н.И. Капсаицин-чувствительные нейроны: роль в гастропротекции и регуляции болевой чувствительности Капсаицин-чувствительные нейроны: роль в гастропротекции и регуляции болевой чувствительности // Успехи физиологических наук. 2019. Т. 50. № 1. С. 3–16. DOI: 10.1134/S0301179819010053 EDN: YYYMZN
10. Abdel Salam O.M., Szolcsányi J., Mózsik G. The indomethacin-induced gastric mucosal damage in rats. Effect of gastric acid, acid inhibition, capsaicin-type agents and prostacyclin // J. Physiol. Paris. 1997. V. 91. P. 7–19. DOI: 10.1016/s0928-4257(99)80161-2
11. Akiba Y., Kaunitz J.D., Million M. Peripheral corticotropin-releasing factor receptor type 2 activation increases colonic blood flow through nitric oxide pathway in rats // Digestive diseases and sciences. 2015. V. 60. № 4. P. 858–867. -y. DOI: 10.1007/s10620-015-3579
12. Bakke H.K., Bogsnes A., Murison R. Studies on the interaction between ICV effects of CRF and CNS noradrenaline depletion // Physiology & Behavior. 1990. V. 47. № 6. P. 1253–1260. -i. DOI: 10.1016/0031-9384(90)90379
13. Bale T.L., Vale W.W. CRF and CRF receptors: role in stress responsivity and other behaviors // Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 2004. V. 44. P. 525–557. DOI: 10.1146/annurev.pharmtox.44.101802.121410
14. Balemans D., Boeckxstaens G.E., Talavera K., Wouters M.M. Transient receptor potential ion channel function in sensory transduction and cellular signaling cascades underlying visceral hypersensitivity // American J. Physiology – Gastrointestinal and Liver Physiology. 2017. V. 312. № 6. P. G635–G648. DOI: 10.1152/ajpgi.00401.2016
15. Barquist E., Zinner M., Rivier J., Taché Y. Abdominal surgery-induced delayed gastric emptying in rats: role of CRF and sensory neurons // The American Journal of Physiology. 1992. V. 262. № 4 Pt 1. P. G616-20. DOI: 10.1152/ajpgi.1992.262.4.G616
16. Barthó L., Benkó R., Patacchini R. et al. Effects of capsaicin on visceral smooth muscle: a valuable tool for sensory neurotransmitter identification // European J. Pharmacology. 2004. V. 500. № 1–3. P. 143–157. DOI: 10.1016/j.ejphar.2004.07.020 EDN: XOGKDX
17. Baylie R.L., Brayden J.E. TRPV channels and vascular function // Acta Physiologica (Oxford, England). 2011. V. 203. № 1. P. 99–116. /.x. DOI: 10.1111/j.1748-1716.2010.02217
18. Birklein F., Schmelz M. Neuropeptides, neurogenic inflammation and complex regional pain syndrome (CRPS) // Neuroscience Letters. 2008. V. 437. № 3. P. 199–202. DOI: 10.1016/j.neulet.2008.03.081 EDN: LXFAZP
19. Bobryshev P., Podvigina T., Maltcev N., Filaretova L. Gastric microcirculation as target of gastroprotective action of glucocorticoid hormones in rats with desensitization of capsaicin-sensitive sensory neurons // Inflammopharmacology. 2006. V. 14. № 5–6. P. 236–242. DOI: 10.1007/s10787-006-1546-0 EDN: LKCNRV
20. Bobryshev P., Bagaeva T., Filaretova L. Gastroprotective action of glucocorticoid hormones in rats with desensitization of capsaicin-sensitive sensory neurons // Inflammopharmacology. 2005. V. 13. № 1–3. P. 217–228. DOI: 10.1163/156856005774423782 EDN: LIXATN
21. Bonaz B., Taché Y. Corticotropin-releasing factor and systemic capsaicin-sensitive afferents are involved in abdominal surgery-induced Fos expression in the paraventricular nucleus of the hypothalamus // Brain Research. 1997. V. 748. № 1–2. P. 12–20. DOI: 10.1016/s0006-8993(96)01281-4
22. Boorse G.C., Denver R.J. Widespread tissue distribution and diverse functions of corticotropin-releasing factor and related peptides // General and Comparative Endocrinology. 2006. V. 146. № 1. P. 9–18. DOI: 10.1016/j.ygcen.2005.11.014
23. Botz B., Kriszta G., Bölcskei K. et al. Capsaicin-Sensitive Peptidergic Sensory Nerves Are Anti-Inflammatory Gatekeepers in the Hyperacute Phase of a Mouse Rheumatoid Arthritis Model // International J. Molecular Sciences. 2021. V. 22. № 4. P. 1682. DOI: 10.3390/ijms22041682 EDN: CXRMXU
24. Chatoo M., Li Y., Ma Z. et al. Involvement of Corticotropin-Releasing Factor and Receptors in Immune Cells in Irritable Bowel Syndrome // Frontiers in Endocrinology. 2018. V. 9. P. 21. DOI: 10.3389/fendo.2018.00021 EDN: MCORAT
25. Chen R.Y.Z., Guth P.H. Interaction of endogenous nitric oxide and CGRP in sensory neuron-induced gastric vasodilation // American J. Physiology. 1995. V. 268. № 5 Pt 1. P. G791-6. DOI: 10.1152/ajpgi.1995.268.5.G791
26. Chen R.Y.Z., Li D.S., Guth P.H. Role of calcitonin gene-related peptide in capsaicin-induced gastric submucosal arteriolar dilation // American J. Physiology. 1992. V. 262. № 5 Pt 2. P. H1350-5. DOI: 10.1152/ajpheart.1992.262.5.H1350
27. Coşkun T., Bozkurt A., Alican I. et al. Pathways mediating CRF-induced inhibition of gastric emptying in rats // Regulatory Peptides. 1997. V. 69. № 3. P. 113–120. DOI: 10.1016/s0167-0115(96)02066-6 EDN: XRLUGU
28. Csekő K., Beckers B., Keszthelyi D., Helyes Z. Role of TRPV1 and TRPA1 ion channels in inflammatory bowel diseases: Potential therapeutic targets? // Pharmaceuticals. 2019. V. 12. № 2. P. 48. DOI: 10.3390/ph12020048
29. Czimmer J., Tache Y. Peripheral Corticotropin Releasing Factor Signaling Inhibits Gastric Emptying: Mechanisms of Action and Role in Stress-related Gastric Alterations of Motor Function // Current Pharmaceutical Design. 2017. V. 23. № 27. P. 4042–4047. DOI: 10.2174/1381612823666170228142428
30. Debreceni A., Abdel-Salam O.M., Figler M., Juricskay I., Szolcsányi J., Mózsik G. Capsaicin increases gastric emptying rate in healthy human subjects measured by 13C-labeled octanoic acid breath test // J. Physiology. Paris. 1999. V. 93. № 5. P. 455–460. -x. DOI: 10.1016/s0928-4257(99)00114
31. Dedic N., Chen A., Deussing J.M. The CRF Family of Neuropeptides and their Receptors - Mediators of the Central Stress Response // Current Molecular Pharmacology. 2018. V. 11. № 1. P. 4–31. DOI: 10.2174/1874467210666170302104053
32. Dufau M.L., Tinajero J.C., Fabbri A. Corticotropin-releasing factor: an antireproductive hormone of the testis // FASEB journal. 1993. V. 7. № 2. P. 299–307. DOI: 10.1096/fasebj.7.2.8382638
33. Esposito P., Chandler N., Kandere K. et al. Corticotropin-releasing hormone and brain mast cells regulate blood-brain-barrier permeability induced by acute stress // The J. Pharmacology and Experimental Therapeutics. 2002. V. 303. № 3. P. 1061–1066. DOI: 10.1124/jpet.102.038497
34. Filaretova L. Tanaka A., Miyazawa T., Kato S., Takeuchi K. Mechanisms by which endogenous glucocorticoid protects against indomethacin-induced gastric injury in rats // American J. Physiology – Gastrointestinal and Liver Physiology. 2002. V. 283. № 5. P. G1082–1089. DOI: 10.1152/ajpgi.00189.2002
35. Filaretova L., Bobryshev P., Bagaeva T., Podvigina T., Takeuchi K. Compensatory gastroprotective role of glucocorticoid hormones during inhibition of prostaglandin and nitric oxide production and desensitization of capsaicin-sensitive sensory neurons // Inflammopharmacology. 2007. V. 15. № 4. P. 146–53. -x. DOI: 10.1007/s10787-007-1589 EDN: LKVOHV
36. Filaretova L. Gastroprotective Effect of Stress Preconditioning: Involvement of Glucocorticoids. // Current Pharmaceutical Design. 2017. V. 23. № 27. P. 3923–3927. DOI: 10.2174/1381612823666170215145125 EDN: XXYCVN
37. Filaretova L., Bagaeva T. The realization of the brain-gut interactions with corticotropin-releasing factor and glucocorticoids. // Current Neuropharmacology. 2016. V. 14. № 8. P. 876–881. DOI: 10.2174/1570159x14666160614094234 EDN: YVBRDX
38. Filaretova L., Bagaeva T., Morozova O. Stress and the stomach: Corticotropin-releasing factor may protect the gastric mucosa in stress through involvement of glucocorticoids // Cellular and Molecular Neurobiology. 2012. V. 32. № 5. P. 829–836. -z. DOI: 10.1007/s10571-012-9800 EDN: SPNQBB
39. Filaretova L.P. Podvigina T.T, Bobryshev P.Y., Bagaeva T.R., Tanaka A., Takeuchi K. Hypothalamic-pituitary-adrenocortical axis: The hidden gold in gastric mucosal homeostasis // Inflammopharmacology. 2006. V. 14. № 5–6. P. 207–213. DOI: 10.1007/s10787-006-1544-2 EDN: LJZVAX
40. Filaretova L.P., Morozova O.Y., Yarushkina N.I. Peripheral corticotropin-releasing hormone may protect the gastric musosa against indometacin-induced injury through involvement of glucocorticoids // J. Physiology and Pharmacology. 2021. V. 72. № 5. P. 1–10. DOI: 10.26402/jpp.2021.5.06 EDN: VNMVNF
41. Filaretova L., Morozova O., Myazina M., Bagaeva T. Cortricotropin-releasing factor (CRF) may protect the gastric mucosa against injury through involvement CRF1 and CRF2 receptor types // FASEB J. 2013. V. 27. № 1. P. 1093.11. DOI: 10.1096/fasebj.27.1_supplement.1093.11
42. Filaretova L.P., Morozova O.Yu. From hypothalamic regulation of pituitary-adrenocortical axis to participation of glucocorticoids in gastroprotective action of corticotropin-releasing factor // J. Evolutionary Biochemistry and Physiology. 2022. V. 58. № 6. P. 1994–2006. EDN: RYJZFD
43. Filaretova L.P. The Contribution of corticotropin-releasing factor to gastroprotection // Neurochem. J. 2018. V. 12. № 2. P. 127–129. DOI: 10.1134/S1819712418020046 EDN: KYNHGC
44. Filaretova L.P., Bagaeva T.R., Morozova O.Yu., Myazina M.A. Corticotropin-releasing factor may protect the gastric mucosa in stress through involvement of glucocorti-coids. Chapter in: Filaretova L.P., Takeuchi K. (eds): Cell/Tissue Injury and Cytoprotec-tion/Organoprotection in the Gastrointestinal Tract: Mechanisms, Prevention and Treatment // Front. Gastrointest. Res. Basel, Karger, 2012. V. 30. P. 124-133. DOI: 10.1159/000338424
45. Fischer M.J.M., Ciotu C.I., Szallasi A. The Mysteries of Capsaicin-Sensitive Afferents // Frontiers in Physiology. 2020. V. 11. P. 554195. DOI: 10.3389/fphys.2020.554195 EDN: JCOGOP
46. Fukudo S., Nomura T., Hongo M. Impact of corticotropin-releasing hormone on gastrointestinal motility and adrenocorticotropic hormone in normal controls and patients with irritable bowel syndrome // Gut. 1998. V. 42. № 6 P. 845–849. DOI: 10.1136/gut.42.6.845
47. Gonzalez R., Dunkel R., Koletzko B., Schusdziarra V., Allescher H.D. Effect of capsaicin-containing red pepper sauce suspension on upper gastrointestinal motility in healthy volunteers // Digestive Diseases and Sciences. 1998. V. 43. № 6. P. 1165–1171. DOI: 10.1023/a:1018831018566 EDN: AKGDNR
48. Gourcerol G., Wu S.V., Yuan P.Q. et al. Activation of corticotropin-releasing factor receptor 2 mediates the colonic motor coping response to acute stress in rodents // Gastroenterology. 2011. V. 140. № 5. P. 1586-96.e6. DOI: 10.1053/j.gastro.2011.01.039
49. Gunion M.W., Kauffman G.L., Tache Y. Intrahypothalamic corticotropin-releasing factor elevates gastric bicarbonate and inhibits stress ulcers in rats // American J. Physiology. 1990. V. 258. № 1 Pt 1. P. G152-7. DOI: 10.1152/ajpgi.1990.258.1.G152
50. Hagiwara S., Kaushal E., Paruthiyil S. et al. Gastric corticotropin-releasing factor influences mast cell infiltration in a rat model of functional dyspepsia // PloS One. 2018. V. 13. № 9. P. e0203704. DOI: 10.1371/journal.pone.0203704
51. Hauger R.L., Risbrough V., Brauns O., Dautzenberg F.M. Corticotropin releasing factor (CRF) receptor signaling in the central nervous system: new molecular targets. // CNS & Neurological Disorders Drug Targets. 2006. V. 5. № 4. P. 453–79. DOI: 10.2174/187152706777950684
52. Henckens M.J.A.G., Deussing J.M., Chen A. Region-specific roles of the corticotropin-releasing factor–urocortin system in stress // Nature Publishing Group. 2016. V. 17. № 10. P. 636–51. DOI: 10.1038/nrn.2016.94
53. Heymann-Mönnikes I., Taché Y., Trauner M., Weiner H., Garrick T. CRF microinjected into the dorsal vagal complex inhibits TRH analog- and kainic acid-stimulated gastric contractility in rats // Brain Research. 1991. V. 554. № 1–2. P. 39–144. -t. DOI: 10.1016/0006-8993(91)90181
54. Holzer P., Pabst M.A, Lippe I.T. et al. Afferent nerve-mediated protection against deep mucosal damage in the rat stomach // Gastroenterology. 1990. V. 98. № 4. P. 838–848. -l. DOI: 10.1016/0016-5085(90)90005
55. Holzer P. Neural injury, repair, and adaptation in the GI tract. II. The elusive action of capsaicin on the vagus nerve // American J. Physiology. 1998. V. 275. № 1. P. G8-13. DOI: 10.1152/ajpgi.1998.275.1.G8
56. Holzer P., Livingston E. H., Guth P.H. Sensory neurons signal for an increase in rat gastric mucosal blood flow in the face of pending acid injury // Gastroenterology. 1991. V. 101. № 2. P. 416–423. -l. DOI: 10.1016/0016-5085(91)90020
57. Holzer P., Maggi C. A. Dissociation of dorsal root ganglion neurons into afferent and efferent- like neurons // Neuroscience. 1998. V. 86. № 2. P. 389–398. DOI: 10.1016/s0306-4522(98)00047-5 EDN: ABGIPT
58. Holzer P., Pabst M.A., Lippe I.T. Intragastric capsaicin protects against aspirin-induced lesion formation and bleeding in the rat gastric mucosa // Gastroenterology. 1989. V. 96. № 6. P. 1425–1433. DOI: 10.1016/0016-5085(89)90508-8
59. Holzer P., Sametz W. Gastric mucosal protection against ulcerogenic factors in the rat mediated by capsaicin-sensitive afferent neurons // Gastroenterology. 1986. V. 91. № 4. P. 975–981. -x. DOI: 10.1016/0016-5085(86)90702
60. Hori A., Hotta N., Fukazawa A. et al. Insulin potentiates the response to capsaicin in dorsal root ganglion neurons in vitro and muscle afferents ex vivo in normal healthy rodents // J. Physiology. 2022. V. 600. № 3. P. 531–545. DOI: 10.1113/JP282740 EDN: DRCBIB
61. Hussain Z., Park H. Inflammation and impaired gut physiology in post-operative ileus: mechanisms and the treatment options // J. Neurogastroenterology and Motility. 2022. V. 28. № 4. P. 517–530. DOI: 10.5056/jnm22100 EDN: SJZBPY
62. Ilie M., Caruntu C., Tampa M., et al. Capsaicin: Physicochemical properties, cutaneous reactions and potential applications in painful and inflammatory conditions (Review) // Experimental and Therapeutic Medicine. 2019. V. 18. № 2. P. 916-925. DOI: 10.3892/etm.2019.7513
63. Izbéki F., Wittmann T., Jancsó G., Csáti S., Lonovics J. Inhibition of astric emptying and small intestinal transit by ethanol is mediated by capsaicin-sensitive afferent nerves // Naunyn-Schmiedeberg’s Archives of Pharmacology. 2002. V. 365. № 1. P. 17–21. DOI: 10.1007/s00210-001-0491-0 EDN: ASUQJB
64. Jamieson B.B., Kim J.S., Iremonger K.J. Cannabinoid and vanilloid pathways mediate opposing forms of synaptic plasticity in corticotropin-releasing hormone neurons // J. Neuroendocrinology. 2022. V. 34. № 4. P. e13084. DOI: 10.1111/jne.13084 EDN: FUONXK
65. Kang J.Y., Alexander B., Math M.V., Williamson R.C. The effect of chilli and its pungent ingredient capsaicin on gastrointestinal transit in the rat // J. Gastroenterology and Hepatology. 1993. V. 8. № 6. P. 513–516. x. DOI: 10.1111/j.1440-1746.1993.tb01644
66. Kiank C., Taché Y., Larauche M. Stress-related modulation of inflammation in experimental models of bowel disease and post-infectious irritable bowel syndrome: role of corticotropin-releasing factor receptors // Brain, Behavior, and Immunity. 2010. V. 24. № 1. P. 41–48. DOI: 10.1016/j.bbi.2009.08.006 EDN: XXBEJF
67. Kishimoto T., Pearse R.V. 2nd., Lin C.R., Rosenfeld M.G. A sauvagine/corticotropin-releasing factor receptor expressed in heart and skeletal muscle // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 1995. V. 92. № 4. P. 1108–1112. DOI: 10.1073/pnas.92.4.1108
68. Korosi A., Kozicz T., Richter J. et al. Corticotropin-releasing factor, urocortin 1, and their receptors in the mouse spinal cord // The J. Comparative Neurology. 2007. V. 502. № 6. P. 973–989. DOI: 10.1002/cne.21347
69. Kozakai Y., Hori K., Aye-Mon A. et al. The role of peripheral corticotropin-releasing factor signaling in a rat model of stress-induced gastric hyperalgesia // Biochemical and Biophysical Research Communications. 2019. V. 519. № 4. P. 797–802. DOI: 10.1016/j.bbrc.2019.09.040
70. Kruseman A.C.N., Linton E.A., Lowry P.J., Rees L.H., Besser G.M. Corticotropin-releasing factor immunoreactivity in human gastrointestinal tract // Lancet. 1982. V. 2. № 8310. P. 1245–1246. DOI: 10.1016/s0140-6736(82)90105-2
71. Kubo Y., Kumano A., Kamei K. et al. Urocortin prevents indomethacin-induced small intestinal lesions in rats through activation of CRF2 receptors. // Digestive Diseases and Sciences. 2010. V. 55. № 6. P. 1570–80. DOI: 10.1007/s10620-009-0930-1 EDN: CXFPLI
72. Kumar V., Kumar V., Devi K. et al. Intrarectal Capsazepine Administration Modulates Colonic Mucosal Health in Mice // International J. Molecular Sciences. 2022. V. 23. № 17. P. 9577. DOI: 10.3390/ijms23179577 EDN: LIVFEG
73. Larauche M, Gourcerol G., Wang L. et al. Cortagine, a CRF1 agonist, induces stresslike alterations of colonic function and visceral hypersensitivity in rodents primarily through peripheral pathways // American J. Physiology–Gastrointestinal and Liver Physiology. 2009. V. 297. № 1. P. G215–G227. DOI: 10.1152/ajpgi.00072.2009
74. Larauche M., Moussaoui N., Biraud M., et al. Brain corticotropin-releasing factor signaling: Involvement in acute stress-induced visceral analgesia in male rats // Neurogastroenterology and Motility. 2019. V. 31. № 2. P. e13489. DOI: 10.1111/nmo.13489 EDN: GWUWJE
75. Lázár Z., Benkó R., Bölcskei K. et al. Actions of endothelin and corticotropin releasing factor in the guinea-pig ileum: no evidence for an interaction with capsaicin-sensitive neurons // Neuropeptides. 2003. V. 37. № 4. P. 220–232. DOI: 10.1016/s0143-4179(03)00048-9
76. Lenz H.J., Raedler A., Greten H., Vale W.W., Rivier J.E. Stress-induced gastrointestinal secretory and motor responses in rats are mediated by endogenous corticotropin-releasing factor // Gastroenterology. 1988. V. 95. № 6. P. 1510–1517. DOI: 10.1016/s0016-5085(88)80070-2
77. Lenz H.J., Hester S.E., Brown M.R. Corticotropin-releasing factor. Mechanisms to inhibit gastric acid secretion in conscious dogs // J. Clinical Investigation. 1985. V. 75. № 3. P. 889–895. DOI: 10.1172/JCI111788
78. Lewis M.W., Hermann G.E., Rogers R.C., Travagli R.A. In vitro and in vivo analysis of the effects of corticotropin releasing factor on rat dorsal vagal complex // J. Physiology. 2002. V. 543. № Pt 1. P. 135–146. DOI: 10.1113/jphysiol.2002.019281
79. Liu T., Wan Y., Meng Y. et al. Capsaicin: A Novel Approach to the Treatment of Functional Dyspepsia // Molecular Nutrition & Food Research. 2023. V. 67. № 9. P. 2200793. DOI: 10.1002/mnfr.202200793 EDN: PIXSUW
80. Liu S., Chang J., Long N. et al. Endogenous CRF in rat large intestine mediates motor and secretory responses to stress // Neurogastroenterology and Motility. 2016. V. 28. № 2. P. 281–291. DOI: 10.1111/nmo.12725
81. Lippe I.T., Pabst M.A., Holzer P. Intragastric capsaicin enhances rat gastric acid elimination and mucosal blood flow by afferent nerve stimulation // British Journal of Pharmacology. 1989. V. 96. № 1. P. 91–100..x. DOI: 10.1111/j.1476-5381.1989.tb11788
82. Lv Y., Wen J., Fang Y., Zhang H., Zhang J. Corticotropin-releasing factor receptor 1 (CRF-R1) antagonists: Promising agents to prevent visceral hypersensitivity in irritable bowel syndrome // Peptides. 2022. V. 147. P. 170705. DOI: 10.1016/j.peptides.2021.170705 EDN: VCLYXG
83. Lytinas M., Kempuraj D., Huang M., et al. Acute stress results in skin corticotropin-releasing hormone secretion, mast cell activation and vascular permeability, an effect mimicked by intradermal corticotropin-releasing hormone and inhibited by histamine-1 receptor antagonists // International Archives of Allergy and Immunology. 2003. V. 130. № 3. P. 224–231. DOI: 10.1159/000069516
84. Martínez V., Rivier J., Wang L., Taché Y. Central injection of a new corticotropin-releasing factor (CRF) antagonist, astressin, blocks CRF- and stress-related alterations of gastric and colonic motor function // The J. Pharmacology and Experimental Therapeutics. 1997. V. 280. № 2. P. 754–760.
85. Martínez V. Wang L., Rivier J.E., Vale W., Taché Y. Differential actions of peripheral corticotropin-releasing factor (CRF), urocortin II, and urocortin III on gastric emptying and colonic transit in mice: role of CRF receptor subtypes 1 and 2 // J. Pharmacology and Experimental Therapeutics. 2002. V. 301. № 2. P. 611–617. DOI: 10.1124/jpet.301.2.611
86. Martínez V., Wang L., Rivier J., Grigoriadis D., Taché Y. Central CRF, urocortins and stress increase colonic transit via CRF1 receptors while activation of CRF2 receptors delays gastric transit in mice. // J. Physiology. 2004. V. 556. № Pt 1. P. 221–34. DOI: 10.1113/jphysiol.2003.059659
87. Matsumoto J., Takeuchi K., Ueshima K., Okabe S. Role of capsaicin-sensitive afferent neurons in mucosal blood flow response of rat stomach induced by mild irritants // Digestive Diseases and Sciences. 1992. V. 37. № 9. P. 1336–1344. DOI: 10.1007/BF01296001 EDN: ZWTQRK
88. Matsumoto J., Takeuchi K., Okabe S. Characterization of gastric mucosal blood flow response induced by intragastric capsaicin in rats // Japanese J. Pharmacology. 1991. № 2(57). C. 205-213. DOI: 10.1254/jjp.57.205
89. Matsumoto K., Kurosawa E., Terui H., et al. Localization of TRPV1 and contractile effect of capsaicin in mouse large intestine: high abundance and sensitivity in rectum and distal colon // American J. Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 2009. V. 297. № 2. P. G348-60. DOI: 10.1152/ajpgi.90578.2008
90. Merchant N.B., Goodman J., Dempsey D.T., Milner R.E., Ritchie W.P.Jr. The role of calcitonin gene-related peptide and nitric oxide in gastric mucosal hyperemia and protection // J. Surgical Research. 1995. V. 58. № 3. P. 344–350. DOI: 10.1006/jsre.1995.1053
91. Million M., Maillot C., Saunders P. et al. Human urocortin II, a new CRF-related peptide, displays selective CRF(2)-mediated action on gastric transit in rats // American J. Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 2002. V. 282. № 1. P. G34-40. DOI: 10.1152/ajpgi.00283.2001
92. Monnikes H., Schmidt B.G., Raybould H.E., Taché Y. CRF in the paraventricular nucleus mediates gastric and colonic motor response to restraint stress // American J. Physiology. 1992. V. 262. № 1. Pt 1. P. G137-43. DOI: 10.1152/ajpgi.1992.262.1.G137
93. Mousa S.A., Bopaiah C.P., Richter J.F., Yamdeu R.S., Schäfer M. Inhibition of inflammatory pain by CRF at peripheral, spinal and supraspinal sites: Involvement of areas coexpressing CRF receptors and opioid peptides // Neuropsychopharmacology. 2007. V. 32. № 12. P. 2530–2542. DOI: 10.1038/sj.npp.1301393
94. Mousa S.A., Khalefa B.I., Shaqura M. et al. Superior control of inflammatory pain by corticotropin-releasing factor receptor 1 via opioid peptides in distinct pain-relevant brain areas // J. Neuroinflammation. 2022. V. 19. № 1. P. 148. DOI: 10.1186/s12974-022-02498-8 EDN: FNHTMF
95. Mózsik G. Capsaicin as new orally applicable gastroprotective and therapeutic drug alone or in combination with nonsteroidal anti-inflammatory drugs in healthy human subjects and in patients // Progress in drug research. Fortschritte der Arzneimittelforschung. Progres des recherches pharmaceutiques. 2014. V. 68. P. 209–258. DOI: 10.1007/978-3-0348-0828-6_9 EDN: YVTETH
96. Mózsik G., Szolcsányi J., Dömötör A. Capsaicin research as a new tool to approach of the human gastrointestinal physiology, pathology and pharmacology // Inflammopharmacology. 2007. V. 15. № 6. P. 232–245. DOI: 10.1007/s10787-007-1584-2 EDN: EVPJEQ
97. Mózsik G., Szolcsányi J., Rácz I. Gastroprotection induced by capsaicin in healthy human subjects // World J. Gastroenterology. 2005. V. 11. № 33. P. 5180–5184. DOI: 10.3748/wjg.v11.i33.5180
98. Nakade Y., Fukuda H., Iwa M. et al. Restraint stress stimulates colonic motility via central corticotropin-releasing factor and peripheral 5-HT3 receptors in conscious rats // American J. Physiology. Gastrointestinal and liver physiology. 2007. V. 292. № 4. P. G1037-44. DOI: 10.1152/ajpgi.00419.2006
99. Nozu T., Martinez V., Rivier J., Taché Y. Peripheral urocortin delays gastric emptying: role of CRF receptor 2 // American J. physiology. 1999. V. 276. № 4. P. G867-74. DOI: 10.1152/ajpgi.1999.276.4.G867
100. Nozu T., Okumura T. Corticotropin-releasing factor receptor type 1 and type 2 interaction in irritable bowel syndrome // J. Gastroenterology. 2015. V. 50. № 8. P. 819–30. DOI: 10.1007/s00535-015-1086-8 EDN: FJAPRH
101. Okumi H., Tashima K., Matsumoto K. et al. Dietary agonists of TRPV1 inhibit gastric acid secretion in mice // Planta Medica. 2012. V. 78. № 17. P. 1801–1806. DOI: 10.1055/s-0032-1315387
102. Pett K., Van Viau V., Bittencourt J.C. et al. Distribution of mRNAs encoding CRF receptors in brain and pituitary of rat and mouse // J. Comparative Neurology. 2000. V. 428. № 2. P. 191–212. 3.0.co;2-u“ xmlns:xlink=“http://www.w3.org/1999/xlink”> :23.0.co;2-u. DOI: 10.1002/1096-9861(20001211)428
103. Qin C., Wang Y., Li S., Tang Y., Gao Y. The Involvement of Endothelin Pathway in Chronic Psychological Stress-Induced Bladder Hyperalgesia Through Capsaicin-Sensitive C-Fiber Afferents // J. Inflammation Research. 2022. V. 15. P. 1209–1226. DOI: 10.2147/JIR.S346855 EDN: ZCUYRM
104. Quintana E., García-Zaragozá E., Martínez-Cuesta M.A. et al. A cerebral nitrergic pathway modulates endotoxin-induced changes in gastric motility // British J. Pharmacology. 2001. V. 134. № 2. P. 325–332. DOI: 10.1038/sj.bjp.0704258
105. Ray A., Henke P.G., Gulati K., Sen P. The amygdaloid complex, corticotropin releasing factor and stress-induced gastric ulcerogenesis in rats // Brain Research. 1993. V. 624. № 1–2. P. 286–290. DOI: 10.1016/0006-8993(93)90089-6
106. Raybould H.E., Hölzer H. Dual capsaicin-sensitive afferent pathways mediate inhibition of gastric emptying in rat induced by intestinal carbohydrate // Neuroscience Letters. 1992. V. 141. № 2. P. 236–238. -j. DOI: 10.1016/0304-3940(92)90902
107. Rieger N.S., Varela J.A., Ng A.J. et al. Insular cortex corticotropin-releasing factor integrates stress signaling with social affective behavior // Neuropsychopharmacology. 2022. V. 47. № 6. P. 1156–1168. DOI: 10.1038/s41386-022-01292-7 EDN: SNKGQC
108. Rosca A.E., Iesanu M.I., Zahiu C.D.M. et al. Capsaicin and Gut Microbiota in Health and Disease // Molecules. 2020. V. 25. № 23. P. 5681. DOI: 10.3390/molecules25235681 EDN: LIYJLC
109. Satoh H., Akiba Y., Urushidani T. Proton pump inhibitors prevent gastric antral ulcers induced by NSAIDs via activation of capsaicin-sensitive afferent nerves in mice // Digestive Diseases and Sciences. 2020. V. 65. № 9. P. 2580–2594. -x. DOI: 10.1007/s10620-020-06157 EDN: QEXEMH
110. Satyanarayana M.N. Capsaicin and gastric ulcers // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2006. V. 46. № 4. P. 275–328. DOI: 10.1080/1040-830491379236
111. De Schepper H.U., De Man J.G., Ruyssers N.E. et al. TRPV1 receptor signaling mediates afferent nerve sensitization during colitis-induced motility disorders in rats // American J. Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 2008. V. 294. № 1. P. G245-53. DOI: 10.1152/ajpgi.00351.2007
112. Shi M., Jones A.R., Niedringhaus M.S. et al. Glucose acts in the CNS to regulate gastric motility during hypoglycemia // American J. Physiology. Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 2003. V. 285. № 5. P. R1192-202. DOI: 10.1152/ajpregu.00179.2003
113. Shibasaki T., Yamauchi N., Hotta M. et al. Brain corticotropin-releasing factor acts as inhibitor of stress-induced gastric erosion in rats // Life Sciences. 1990. V. 47. № 11. P. 925–932. DOI: 10.1016/0024-3205(90)90539-4
114. Silverman H.A., Chen A., Kravatz N.L., Chavan S.S., Chang E.H. Involvement of neural transient receptor potential channels in peripheral inflammation // Frontiers in Immunology. 2020. V. 11. P. 590261. DOI: 10.3389/fimmu.2020.590261 EDN: GLJRKN
115. Skofitsch G., Insel T.R., Jacobowitz D.M. Binding sites for corticotropin releasing factor in sensory areas of the rat hindbrain and spinal cord // Brain Research Bulletin. 1985. V. 15. № 5. P. 519–522. DOI: 10.1016/0361-9230(85)90043-7
116. Skofitsch G., Jacobowitz D.M. Corticotropin releasing factor-like immunoreactive neurons in the rat retina // Brain Research Bulletin. 1984. V. 12. № 5. P. 539–542. DOI: 10.1016/0361-9230(84)90169-2
117. Slominski A.T., Zmijewski M.A., Zbytek B. et al. Key role of CRF in the skin stress response system // Endocrine Reviews. 2013. V. 34. № 6. P. 827–884. DOI: 10.1210/er.2012-1092 EDN: SQDRHD
118. Stengel A., Goebel-Stengel M., Wang L., et al. Central administration of pan-somatostatin agonist ODT8-SST prevents abdominal surgery-induced inhibition of circulating ghrelin, food intake and gastric emptying in rats // Neurogastroenterology and Motility. 2011. V. 23. № 7. P. 1–26. x. DOI: 10.1111/j.1365-2982.2011.01721
119. Stengel A., Taché Y. Neuroendocrine control of the gut during stress: corticotropin-releasing factor signaling pathways in the spotlight // Annual Review of Physiology. 2009. V. 71. P. 219–239. DOI: 10.1146/annurev.physiol.010908.163221
120. Stengel A., Taché Y. Corticotropin-releasing factor signaling and visceral response to stress // Experimental Biology and Medicine. 2010. V. 235. № 10. P. 1168–1178. DOI: 10.1258/ebm.2010.009347
121. Stengel A., Taché Y. CRF and urocortin peptides as modulators of energy balance and feeding behavior during stress // Frontiers in Neuroscience. 2014. № 8. P. 52. DOI: 10.3389/fnins.2014.00052
122. Stengel A., Taché Y. Brain peptides and the modulation of postoperative gastric ileus // Current Opinion in Pharmacology. 2014. V. 19. P. 31–37. DOI: 10.1016/j.coph.2014.06.006
123. Storozhuk M.V., Moroz O.F., Zholos A.V. Multifunctional TRPV1 ion channels in physiology and pathology with focus on the brain, vasculature, and some visceral Systems // BioMed Research International. 2019. V. 2019. P. 5806321. DOI: 10.1155/2019/5806321 EDN: FYZHCC
124. Sullivan T.R. Jr., Milner R., Dempsey D.T., Ritchie W.P. Jr. Effect of capsaicin on gastric mucosal injury and blood flow following bile acid exposure // Journal of Surgical Research. 1992. V. 52. № 6. P. 596–600. -m. DOI: 10.1016/0022-4804(92)90135
125. Szabados T., Gömöri K., Pálvölgyi L. et al. Capsaicin-sensitive sensory nerves and the trpv1 ion channel in cardiac physiology and pathologies // International J. Molecular Sciences. 2020. V. 21. № 12. P. 1–23. DOI: 10.3390/ijms21124472 EDN: POAFLJ
126. Szallasi A., Blumberg P.M. Vanilloid (Capsaicin) receptors and mechanisms. // Pharmacological Reviews. 1999. V. 51. № 2. P. 159–212. EDN: XLJHSV
127. Szallasi A. The vanilloid (capsaicin) receptor TRPV1 in blood pressure regulation: a novel therapeutic target in hypertension? // International J. Molecular Sciences. 2023. V. 24. № 10. P. 8769. DOI: 10.3390/ijms24108769 EDN: UFZDPZ
128. Szolcsányi J. Forty years in capsaicin research for sensory pharmacology and physiology // Neuropeptides. 2004. V. 38. № 6. P. 377–384. DOI: 10.1016/j.npep.2004.07.005
129. Szolcsányi J., Barthó L. Capsaicin-sensitive afferents and their role in gastroprotection: An update // J. Physiology (Paris). 2001. V. 95. № 1–6. P. 181–188. DOI: 10.1016/s0928-4257(01)00023-7
130. Tache Y., Larauche M., Yuan P.Q., Million M. Brain and gut CRF signaling: biological actions and role in the gastrointestinal tract // Current Molecular Pharmacology. 2018. V. 11. № 1. P. 51–71. DOI: 10.2174/1874467210666170224095741
131. Taché Y., Gunion M., Lauffenberger M., Goto Y. Inhibition of gastric acid secretion by intracerebral injection of calcitonin gene related peptide in rats // Life Sciences. 1984. V. 35. № 8. P. 871–878. DOI: 10.1016/0024-3205(84)90413-2
132. Taché Y., Bonaz B. Corticotropin-releasing factor receptors and stress-related alterations of gut motor function // J. Clinical Investigation. 2007. V. 117. № 1. P. 33–40. DOI: 10.1172/JCI30085
133. Tache Y., Maeda-Hagiwara M., Turkelson C.M. Central nervous system action of corticotropin-releasing factor to inhibit gastric emptying in rats // American J. Physiology. 1987. V. 253. № 2 Pt 1. P. G241-5. DOI: 10.1152/ajpgi.1987.253.2.G241
134. Taché Y., Million M. Role of corticotropin-releasing factor signaling in stress-related alterations of colonic motility and hyperalgesia // J. Neurogastroenterology and Motility. 2015. V. 21. № 1. P. 8–24. DOI: 10.5056/jnm14162
135. Takeuchi K., Tanaka A., Suzuki K., Mizoguchi H. Gastrointestinal sparing anti-inflammatory drugs-effects on ulcerogenic and healing responses // Current Pharmaceutical Design. 2001. V. 7. № 1. P. 49–69. DOI: 10.2174/1381612013398464
136. Takeuchi K., Ueshima K., Matsumoto J., Okabe S. Role of capsaicin-sensitive sensory nerves in acid-induced bicarbonate secretion in rat stomach // Digestive Diseases and Sciences. 1992. V. 37. № 5. P. 737–743. DOI: 10.1007/BF01296432
137. Takeuchi K. Pathogenesis of NSAID-induced gastric damage: Importance of cyclooxygenase inhibition and gastric hypermotility // World J. Gastroenterology. 2012. V. 18. № 18. P. 2147–2160. DOI: 10.3748/wjg.v18.i18.2147 EDN: YADPEY
138. Takeuchi K., Abe N., Kumano A. Influence of adrenalectomy on protective effects of urocortin I, a corticotropin-releasing factor, against indomethacin-induced enteropathy in rats. // Current Neuropharmacology. 2016. V. 14. № 8. P. 866–875. DOI: 10.2174/1570159x14666160701020807
139. Takeuchi K., Satoh H. NSAID-induced small intestinal damage – Roles of various pathogenic factors // Digestion. 2015. V. 91. № 3. P. 218–232. DOI: 10.1159/000374106
140. Tebbe J.J., Mronga S., Schäfer M.K. et al. Stimulation of neurons in rat ARC inhibits gastric acid secretion via hypothalamic CRF1/2- and NPY-Y1 receptors // American J. Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 2003. V. 285. № 6. P. G1075-83. DOI: 10.1152/ajpgi.00125.2003
141. Vale W., Spiess J., Rivier C., Rivier J. Characterization of a 41-residue ovine hypothalamic peptide that stimulates secretion of corticotropin and beta-endorphin // Science. 1981. V. 213. № 4514. P. 1394–1397. DOI: 10.1126/science.6267699 EDN: IDQFQV
142. Vasconcelos M., Stein D.J., Gallas-Lopes M., Landau L., de Almeida R.M.M. Corticotropin-releasing factor receptor signaling and modulation: implications for stress response and resilience // Trends in Psychiatry and Psychotherapy. 2020. V. 42. № 2. P. 195–206. DOI: 10.1590/2237-6089-2018-0027 EDN: XVBBWN
143. Wallace J.L. Nonsteroidal anti-inflammatory drugs and gastroenteropathy: The second hundred years // Gastroenterology. 1997. V. 112. № 3. P. 1000–1016. DOI: 10.1053/gast.1997.v112.pm9041264
144. Wang L., Cardin S., Martínez V., Taché Y. Intracerebroventricular CRF inhibits cold restraint-induced c-fos expression in the dorsal motor nucleus of the vagus and gastric erosions in rats // Brain Research. 1996. V. 736. № 1–2. P. 44–53. DOI: 10.1016/0006-8993(96)00726-3
145. Ward S.M., Bayguinov J., Won K.J., Grundy D., Berthoud H.R. Distribution of the vanilloid receptor (VR1) in the gastrointestinal tract. // J. Comparative Neurology. 2003. V. 465. № 1. P. 121–35. DOI: 10.1002/cne.10801
146. Wei P., Keller C., Li L. Neuropeptides in gut-brain axis and their influence on host immunity and stress // Computational and Structural Biotechnology J. 2020. V. 18. P. 843–851. DOI: 10.1016/j.csbj.2020.02.018 EDN: NYIJCL
147. Whittle B.J.R., Lopez-Belmonte J., Moncada S. Regulation of gastric mucosal integrity by endogenous nitric oxide: interactions with prostanoids and sensory neuropeptides in the rat // British J. Pharmacology. 1990. V. 99. № 3. P. 607–611. x. DOI: 10.1111/j.1476-5381.1990.tb12977
148. Williams C.L., Peterson J.M., Villar R.G., Burks T.F. Corticotropin-releasing factor directly mediates colonic responses to stress // American J. Physiology. 1987. V. 253. № 4 Pt 1. P. G582-6. DOI: 10.1152/ajpgi.1987.253.4.G582
149. De Winter B.Y., Bredenoord A.J., Van Nassauw L. et al. Involvement of afferent neurons in the pathogenesis of endotoxin-induced ileus in mice: Role of CGRP and TRPV1 receptors // European J. Pharmacology. 2009. V. 615. № 1–3. P. 177–184. DOI: 10.1016/j.ejphar.2009.04.055
150. Wolter H.J. Corticotropin-releasing factor is contained within perikarya and nerve fibres of rat duodenum // Biochemical and Biophysical Research Communications. 1984. V. 122. № 1. P. 381–387. DOI: 10.1016/0006-291x(84)90486-8
151. Xiang Y., Xu X., Zhang T. et al. Beneficial effects of dietary capsaicin in gastrointestinal health and disease // Experimental Cell Research. 2022. V. 417. № 2. P. 113227. DOI: 10.1016/j.yexcr.2022.113227 EDN: VXWUQF
152. Yang D., Luo Z., Ma S. et al. Activation of TRPV1 by dietary capsaicin improves endothelium-dependent vasorelaxation and prevents hypertension // Cell Metabolism. 2010. V. 12. № 2. P. 130–141. DOI: 10.1016/j.cmet.2010.05.015
153. Yang L.Z., Tovote P., Rayner M. et al. Corticotropin-releasing factor receptors and urocortins, links between the brain and the heart // European J. Pharmacology. 2010. V. 632. № 1–3. P. 1–6. DOI: 10.1016/j.ejphar.2010.01.027
154. Yarushkina N.I., Bagaeva T.R., Filaretova L.P. Involvement of corticotropin-releasing factor receptors type 2, located in periaquaductal gray matter, in central and peripheral CRF-induced analgesic effect on somatic pain sensitivity in rats. // J. Physiology and Pharmacology. 2016. V. 67. № 4. P. 595–603. EDN: XFRZIB
155. Yarushkina N.I., Filaretova L.P. The peripheral corticotropin-releasing factor (CRF)-induced analgesic effect on somatic pain sensitivity in conscious rats: involving CRF, opioid and glucocorticoid receptors // Inflammopharmacology. 2018. V. 26. № 2. P. 305–318. DOI: 10.1007/s10787-018-0445-5 EDN: XYAQWL
156. Yuan P.Q., Wu S.V., Stengel A., Sato K., Taché Y. Activation of CRF1 receptors expressed in brainstem autonomic nuclei stimulates colonic enteric neurons and secreto-motor function in male rats // Neurogastroenterology and Motility. 2021. V. 33. № 11. P. e14189. DOI: 10.1111/nmo.14189 EDN: SSRNRC
157. Zhang S., Tang L., Xu F. et al. TRPV1 receptor-mediated hypoglycemic mechanism of capsaicin in streptozotocin-induced diabetic rats // Frontiers in Nutrition. 2021. V. 8. P. 750355. DOI: 10.3389/fnut.2021.750355 EDN: NIPCZD
158. Zhou S.Y., Lu Y., Song I., Owyang C. Inhibition of gastric motility by hyperglycemia is mediated by nodose ganglia KATP channels // American J. Physiology. Gastrointestinal and Liver Physiology. 2011. V. 300. № 3. P. 394–400. DOI: 10.1152/ajpgi.00493.2010
159. Zittel T.T., Meile T., Huge A. et al. Preoperative intraluminal application of capsaicin increases postoperative gastric and colonic motility in rats // J. Gastrointestinal Surgery. 2001. V. 5. P. 503–13. DOI: 10.1016/s1091-255x(01)80088-3
Выпуск
Другие статьи выпуска
Фактор роста фибробластов (FGF21) является гормоном печени, который способствует адаптации организма к различным ситауциям, вызывающим напряжение систем метаболизма. В обзоре рассмотрены некоторые нерешенные вопросы, касающиеся физиологического действия этого уникального метаболического регулятора, суммированы основные знания о фармакологических свойствах FGF21 и освещены половые различия в их проявлении при коррекции ожирения. Обобщены результаты, показывающие, что эффективность использования FGF21 для терапии ожирения зависит от этиологии ожирения и пола. Подчеркивается необходимость исследования механизмов возникновения половых различий действия FGF21 для его успешного использования при лечении ожирения у особей мужского и женского пола.
Сладкое – наиболее сильная вкусовая модальность, формирующая пищевое поведение и влияющая на гомеостаз. В обзоре суммированы сведения о рецепции и кодировании вкусовых сигналов на уровне вкусовых почек и центров головного мозга при потреблении сладких веществ. Основное внимание уделено молекулярно-клеточным механизмам идентификации сладкого вкуса и детекции калорийного состава пищи, включая роль мембранных белковых рецепторов T1R2/T1R3 и связанного с ними внутриклеточного ферментативного каскада, а также метаболического механизма оценки концентрации поступающей в цитоплазму глюкозы. Описаны генетические аспекты чувствительности к сладкому и влияние полиморфизма генов рецептора сладкого вкуса на чувствительность к сахарам и низкокалорийным сахарозаменителям. В обзоре приведены результаты современных исследований эндокринной, паракринной и аутокринной модуляции рецепции и восприятия сладкого вкуса в зависимости от метаболического статуса организма. Сделано предположение о перспективном направлении исследований по проблеме.
Согласно современным представлениям, основу интеллектуальных проблем при нейрологических повреждениях мозга составляет активное забывание, регулируемое зависимыми от малых ГТФаз Rac и Rho сигнальными каскадами ремоделирования актина. Ключевой фермент этих каскадов – LIM-киназа 1 (LIMK1). Изменения экспрессии гена limk1 приводят к нейрокогнитивным патологиям. Для экспресс-скрининга и тестирования агентов целенаправленного терапевтического воздействия, изменяющих белок-белковые взаимодействия ГТФаз и компонентов сигнальных каскадов, необходимо создание и валидация простых животных моделей. Такую возможность предоставляет дрозофила, мутантные линии которой позволяют выявить узловые моменты пересечений биохимических и нервных сетей, сопровождающие активное забывание.
Наличие близких социальных связей – необходимое условие для психического и физического здоровья и благополучия в любом возрасте. Существенный процент населения Земли пережил условия “локдауна” в связи с пандемией COVID-19. Появляется все больше данных научной литературы, посвященных негативному воздействию социальной изоляции на внимание, память, восприятие, исполнительные функции и другие аспекты когнитивных процессов. Это может усложнять повседневную жизнь людей, снижая качество жизни. В обзоре предпринята попытка систематизации накопленных научных фактов о взаимосвязи социальной изоляции и развития нарушений когнитивных функций у человека, собранных в лонгитюдных популяционных исследованиях, а также проведен анализ данных о влиянии социальной изоляции разной длительности на процессы обучения и памяти, полученных в экспериментальных исследованиях на животных. Затронуты вопросы возможной связи этих нарушений, индуцированных социальной изоляцией, с изменением функционирования одной из систем стресс-реактивности – гипоталамо-гипофизарно-адреналовой оси и иммуновоспалительным ответом.
В обзоре представлены данные последних лет о восстановлении двигательных функций после спинальных травм: о спонтанной нейропластичности; о пластичности, зависящей от физической активности; о результатах использования эпидуральной и чрескожной электростимуляции спинного мозга для восстановления контроля движений; о нейрофизиологических изменениях и механизмах, инициируемых спинальной электростимуляцией, которые, возможно, способствуют функциональному восстановлению после травм спинного мозга.
Издательство
- Издательство
- ИЗДАТЕЛЬСТВО НАУКА
- Регион
- Россия, Москва
- Почтовый адрес
- 121099 г. Москва, Шубинский пер., 6, стр. 1
- Юр. адрес
- 121099 г. Москва, Шубинский пер., 6, стр. 1
- ФИО
- Николай Николаевич Федосеенков (Директор)
- E-mail адрес
- info@naukapublishers.ru
- Контактный телефон
- +7 (495) 2767735