В обзоре представлены данные последних лет о восстановлении двигательных функций после спинальных травм: о спонтанной нейропластичности; о пластичности, зависящей от физической активности; о результатах использования эпидуральной и чрескожной электростимуляции спинного мозга для восстановления контроля движений; о нейрофизиологических изменениях и механизмах, инициируемых спинальной электростимуляцией, которые, возможно, способствуют функциональному восстановлению после травм спинного мозга.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
Травма спинного мозга (ТСМ) – это событие, в результате которого большинство людей остаются инвалидами на протяжении всей жизни из-за ограниченной способности центральной нервной системы (ЦНС) к восстановлению и ограниченных терапевтических возможностей на сегодняшний день [66].
Список литературы
1. Виссарионов С.В., Солохина И.Ю., Икоева Г.А. и др. Двигательная реабилитация пациента с последствиями позвоночно-спинномозговой травмы методом неинвазивной электростимуляции спинного мозга в сочетании с механотерапией // Хирургия позвоночника. 2016. Т. 13. № 1. С. 8–12. EDN: VQGECZ
2. Городничев Р.М., Пивоварова Е.А., Пухов А. и др. Чрескожная электрическая стимуляция спинного мозга: нвазивный способ активации генераторов шагательных движений у человека // Физиология человека. 2012. Т. 38. № 2. С. 46–56. EDN: OWXFQT
3. Минаков А.Н., Чернов А.С., Асютин Д.С. и др. Экспериментальное моделирование травмы спинного мозга у лабораторных крыс // Acta Naturae. 2018. Т. 10. № 3(38). С. 4-10.
4. Новосёлова И.Н. Этиология и клиническая эпидемиология позвоночно-спинномозговой травмы (литературный обзор) // Российский нейрохирургический журн. им. профессора А.Л. Поленова. 2019. Т. 11. № 4. С. 84-92.
5. Павлов К.И., Мухин В.Н. Физиологические механизмы нейропластичности как основа психических процессов и социально-профессиональной адаптации (часть 1) // Психология. Психофизиология. 2021. Т. 14. № 3. С. 119–136. EDN: JSKHSI
6. Прудникова О.Г., Качесова А.А., Рябых С.О. Реабилитация пациентов в отдаленном периоде травмы спинного мозга: метаанализ литературных данных // Хирургия позвоночника. 2019. Т. 16. № 3. С. 8–16. EDN: COACSL
7. Смирнов В.А., Гринь А.А. Регенеративные методы лечения травмы спинного мозга. Обзор литературы. Часть 4 // Нейрохирургия. 2020. Т. 22. № 1. С. 83–92. EDN: DAATNV
8. Abualait T.S., Ibrahim A.I. Spinal direct current stimulation with locomotor training in chronic spinal cord injury // Saudi. Med. J. 2020. V. 41. P. 88–93. EDN: ROBCVZ
9. Al’joboori Y.D., Edgerton V.R., Ichiyama R.M. Effects of rehabilitation on perineural nets and synaptic plasticity following spinal cord transaction // Brain Sci. 2020. V. 10. Article 824. EDN: PGMBUZ
10. Alam M., Ling Y.T., Wong A.Y. et al. Reversing 21 years of chronic paralysis via non-invasive spinal cord neuromodulation: a case study // Ann. Clin. Transl. Neurol. 2020. V. 7. P. 829–838. EDN: UBKMTW
11. Angeli C.A., Boakye M., Morton R.A. et al. Recovery of over-ground walking after chronic motor complete spinal cord injury // N. Engl. J. Med. 2018. V. 379. P. 1244–1250. EDN: YIIANN
12. Angeli C.A., Edgerton V.R., Gerasimenko Y.P., Harkema S.J. Altering spinal cord excitability enables voluntary movements after chronic complete paralysis in humans // Brain. 2014. V. 137. P. 1394-409. EDN: SKSYEP
13. Angeli C.A., Gerasimenko Y. Combined cervical transcutaneous with lumbosacral epidural stimulation improves voluntary control of stepping movements in spinal cord injured individuals// Front. Bioeng. Biotechnol. 2023. V. 11. Article 1073716.
14. Asboth L., Friedli L., Beauparlant J. et al. Cortico–reticulo–spinal circuit reorganization enables functional recovery after severe spinal cord contusion // Nat. Neurosci. 2018. V. 21. № 4. P. 576–88. EDN: LKHOXX
15. Barss T.S., Parhizi B., Mushahwar V.K. Transcutaneous spinal cord stimulation of the cervical cord modulates lumbar networks // J. Neurophysiol. 2020. V. 123. P. 158–166. EDN: LQZNBZ
16. Beck L., Veith D., Linde M. et al. Impact of long-term epidural electrical stimulation enabled task-specific training on secondary conditions of chronic paraplegia in two humans // J. Spinal Cord Med. 2021. V. 44. P. 800–805.
17. Behrman A.L., Argetsinger L.C., Roberts M.T. et al. Activity-based therapy targeting neuromuscular capacity after pediatric-onset spinal cord injury //Top. Spinal Cord. Inj. Rehabil. 2019. V. 25. №. 2. P. 132-149. EDN: USFXJG
18. Benavides F.D., Jo H.J., Lundell H. et al. Cortical and subcortical effects of transcutaneous spinal cord stimulation in humans with tetraplegia // J. Neurosci. 2020. V. 40. P. 2633–2643. EDN: APZYLT
19. Beverungen H., Klaszky S.C., Klaszky M., Côté M.P. Rehabilitation decreases spasticity by restoring chloride homeostasis through the brain-derived neurotrophic factor-KCC2 pathway after spinal cord injury // J. Neurotrauma. 2020. V. 37. P. 846–859. EDN: DUZDRY
20. Bilchak J.N., Caron G., Côté M.P. Exercise-induced plasticity in signaling pathways involved in motor recovery after spinal cord injury // Int. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. № 9. Article 4858. EDN: EVPQGB
21. Brown A.R., Martinez M. From cortex to cord: motor circuit plasticity after spinal cord injury // Neural Regen. Res. 2019. V. 14. № 12. P. 2054–2062. EDN: BSTTWG
22. Burns A.S., Marino R.J., Kalsi-Ryan S. et al. Type and timing of rehabilitation following acute and subacute spinal cord injury: a systematic review // Glob. Spine J. 2017. V. 7. P. 175s–194s.
23. Côté M.P., Murray M., Lemay M.A. Rehabilitation strategies after spinal cord injury: inquiry into the mechanisms of success and failure // J. Neurotrauma. 2017. V. 34. № 10. P.1841–1857. EDN: YFHNTW
24. Courtine G., Gerasimenko Y., van den Brand R. et al. Transformation of nonfunctional spinal circuits into functional states after the loss of brain input // Nat. Neurosci. 2009. V. 12. № 10. P. 1333–42. EDN: MWXPWZ
25. Courtine G., Sofroniew M.V. Spinal cord repair: advances in biology and technology // Nat. Med. 2019. V. 25. P. 898–908. EDN: YPMEVE
26. Darrow D., Balser D., Netoff T.I. et al. Epidural spinal cord stimulation facilitates immediate restoration of dormantmotor and autonomic supraspinal pathways after chronic neurologically complete spinal cord injury // J. Neurotrauma. 2019. V. 36. P. 2325–2336. EDN: ZCOEDV
27. de Freitas R.M., Sasaki A., Sayenko D.G. et al. Selectivity and excitability of upper-limb muscle activation during cervical transcutaneous spinal cord stimulation in humans // J. Appl. Physiol. 2021. P. 131. № 2. P. 746-59. EDN: SOEPYO
28. Diaz-Rıos M., Guertin P.A., Rivera-Oliver M. Neuromodulation of spinal locomotor networks in rodents // Curr. Pharm. Des. 2017. V. 23. P. 1741–1752.
29. DiMarco A.F., Geertman R.T., Tabbaa K. et al. Effects of lower thoracic spinal cord stimulation on bowel management in individuals with spinal cord injury // Arch. Phys. Med. Rehabil. 2021. V. 102. P. 1155–1164. EDN: MVWRJT
30. Dimitrijevic M.R., Gerasimenko Y., Pinter M.M. Evidence for Spinal Central Pattern Generator in Humans // Annals of the New York Academy of Sciences. 1998. V. 860. P. 360–376. EDN: LEYJZV
31. Dimitrijevic M.R., Kakulas B.A. Spinal cord injuries, human neuropathology and neurophysiology // Acta Myol. 2020. V. 39. № 4. P. 353–358. EDN: VWJAEK
32. Estes S., Zarkou A., Hope J.M. et al. Combined transcutaneous spinal stimulation and locomotor training to improve walking function and reduce spasticity in subacute spinal cord injury: a randomized study of clinical feasibility and efficacy // J. Clin. Med. 2021. V. 10. Article 1167. EDN: GDCUSB
33. Evans R.W., Shackleton C.L., West S. et al. Robotic locomotor training leads to cardiovascular changes in individuals with incomplete spinal cord injury over a 24-week rehabilitation period: a randomized controlled pilot study // Arch. Phys. Med. Rehabil. 2021. V. 102. P. 1447–1456. EDN: SCOHZT
34. Filipp M.E., Travis B.J., Henry S.S. et al. Differences in neuroplasticity after spinal cord injury in varying animal models and humans // Neural. Regen. Res. 2019. V. 14. P. 7–19. EDN: DXYNEO
35. Freyvert Y., Yong N.A., Morikawa E. et al. Engaging cervical spinal circuitry with non-invasive spinal stimulation and buspirone to restore hand function in chronic motor complete patients // Sci. Rep. 2018. V. 8. Article 15546. EDN: TOOZAT
36. Gad P., Gerasimenko Y., Zdunowski S. et al. Weight bearing over-ground stepping in an exoskeleton with non-invasive spinal cord neuromodulation after motor complete paraplegia // Front. Neurosci. 2017. V. 11. Article 333. EDN: XNEWAJ
37. Gallegos C., Carey M., Zheng Y. et al. Reaching and grasping training improves functional recovery after chronic cervical spinal cord injury // Front. Cell Neurosci. 2020. V. 14. Article 110. EDN: VRUMRB
38. Gerasimenko Y., Gorodnichev R., Moshonkina T. et al. Transcutaneous electrical spinal-cord stimulation in humans // Ann. Phys. Rehabil. Med. 2015. V. 58. № 4. P. 225–231. EDN: UZZOMX
39. Gerasimenko Y., Moshonkina T., Savochin A. et al. Initiation and modulation of locomotor circuitry output with multisite transcutaneous electrical stimulation of the spinal cord in noninjured humans // J. Neurophysiol. 2015. V. 113. № 3. P. 834–842. EDN: UEOFVP
40. Gerasimenko Y., Daniel O., Regnaux J. et al. Mechanisms of locomotor activity generation under epidural spinal cord stimulation //NATO Science Series Sub Series I Life and Behavioural Sciences. 2001. V. 326. P. 164–171.
41. Gerasimenko Y.P., Lu D.C., Modaber M. et al. Noninvasive reactivation of motor descending control after paralysis // Neurotrauma. 2015. V. 32. № 24. P. 1968–1980. EDN: WRBSGF
42. Gill M.L., Grahn P.J., Calvert J.S. et al. Neuromodulation of lumbosacral spinal networks enables independent stepping after complete paraplegia // Nat. Med. 2018. V. 24. P. 1677–1682. EDN: SZAQFM
43. Gill M.L., Linde M.B., Hale R.F. et al. Alterations of spinal epidural stimulationenabled stepping by descending intentional motor commands and proprioceptive inputs in humans with spinal cord injury // Front. Syst. Neurosci. 2021. V. 14. Article 590231.
44. Goldhardt M.G., Andreia A., Dorneles G.P. et al. Does a single bout of exercise impacts BDNF, oxidative stress and epigenetic markers in spinal cord injury patients? // Funct. Neurol. 2019. V. 34. P. 158–166.
45. Greiner N., Barra B., Schiavone G. et al. Recruitment of upper-limb motoneurons with epidural electrical stimulation of the cervical spinal cord // Nat. Commun. 2021. V. 12. Article 435. EDN: HNWSPY
46. Guiho T., Baker S.N., Jackson A. Epidural and transcutaneous spinal cord stimulation facilitates descending inputs to upper-limb motoneurons in monkeys // J. Neural. Eng. 2021. V. 18. № 4. Article 046011. EDN: EPGOXN
47. Harkema S., Angeli C., Gerasimenko Y. Historical development and contemporary use of neuromodulation in human spinal cord injury // Curr. Opin. Neurol. 2022. V. 35. № 4. P. 536–543. EDN: HKCGUR
48. Harkema S., Gerasimenko Y., Hodes J. et al. Effect of epidural stimulation of the lumbosacral spinal cord on voluntary movement, standing, and assisted stepping after motor complete paraplegia: a case study // Lancet. 2011. V. 377. P. 1938–1947. EDN: OHRLFP
49. Harkema S., Hillyer J., Schmidt-Read M. et al. Locomotor training: as a treatment of spinal cord injury and in the progression of neurologic rehabilitation //Arch. Phys. Med. Rehabil. 2012. V. 93. № 9. P. 1588–97. EDN: RJTZSV
50. Harmsen I.E., Hasanova D., Elias G.J. et al. Trends in clinical trials for spinal cord stimulation // Stereotact. Funct. Neurosurg. 2021. V. 99. P. 123–134. EDN: PMTZJM
51. Herman R., He J., D’Luzansky S. et al. Spinal cord stimulation facilitates functional walking in a chronic, incomplete spinal cord injured // Spinal Cord. 2002. V. 40. P. 65–68. EDN: NKUJFO
52. Hilton B.J., Tetzlaff W. A brainstem bypass for spinal cord injury // Nat. Neurosci. 2018. V. 21. P. 457–458. EDN: WVWJYJ
53. Hofer A.S., Schwab M.E. Enhancing rehabilitation and functional recovery after brain and spinal cord trauma with electrical neuromodulation // Curr. Opin. Neurol. 2019. V. 32. № 6. P. 828–835. EDN: BYGUNO
54. Hofstoetter U.S., Freundl B., Binder H., Minassian K. Common neural structures activated by epidural and transcutaneous lumbar spinal cord stimulation: Elicitation of posterior root-muscle reflexes // PloS One. 2018. V. 13. № 1. P. e0192013-e0192013. EDN: XJOOUY
55. Imai T., Katoh H., Suyama K. et al. Amiloride promotes oligodendrocyte survival and remyelination after spinal cord injury in rats // J. Clin. Med. 2018. V. 7. № 3. Article 46.
56. Inanici F., Brighton L.N., Samejima S. et al. Transcutaneous spinal cord stimulation restores hand and arm function after spinal cord injury // IEEE Trans. Neural. Syst. Rehabil. Eng. 2021. V. 29. P. 310–319. EDN: NTFAMX
57. Inanici F., Samejima S., Gad P. et al. Transcutaneous electrical spinal stimulation promotes long-term recovery of upper extremity function in chronic tetraplegia // IEEE Trans. Neural. Syst. Rehab. Eng. 2018. V. 26. P. 1272–1278. EDN: YIGPCP
58. James N.D., McMahon S.B., Field-Fote E.C., Bradbury E.J. Neuromodulation in the restoration of function after spinal cord injury // Lancet. Neurology. 2018. V. 17. P. 905–917. EDN: YJNOSD
59. Jankowska E., Hammar I. The plasticity of nerve fibers: the prolonged effects of polarization of afferent fibers // J. Neurophysiol. 2021. V. 126. P. 1568–1591. EDN: ZCRIGP
60. Khalki L., Sadlaoud K., Lerond J. et al. Changes in innervation of lumbar motoneurons and organization of premotor network following training of transected adult rats // Exp. Neurol. 2018. V. 299. P. 1–14. EDN: YHPWFO
61. Knikou M., Murray L.M. Repeated transspinal stimulation decreases soleus H-reflex excitability and restores spinal inhibition in human spinal cord injury // PLoS One. 2019. V. 14. № 9. Article e0223135. EDN: OXWVBI
62. Leech K.A., Hornby T.G. High-intensity locomotor exercise increases brain-derived neurotrophic factor in individuals with incomplete spinal cord injury // J. Neurotrauma. 2017. V. 34. P. 1240–1248.
63. Li X., Wang Q., Ding J. et al. Exercise training modulates glutamic acid decarboxylase-65/67 expression through TrkB signaling to ameliorate neuropathic pain in rats with spinal cord injury // Mol. Pain. 2020. V. 16. P. 1–12. EDN: BCFMDF
64. Li X., Wu Q., Xie C. et al. Blocking of BDNF-TrkB signaling inhibits the promotion effect of neurological function recovery after treadmill training in rats with spinal cord injury // Spinal Cord. 2019. V. 57. P. 65–74. EDN: PGEJIO
65. Li G., Fan Z.K., Gu G.F. et al. Epidural spinal cord stimulation promotes motor functional recovery by enhancing oligodendrocyte survival and differentiation and by protecting myelin after spinal cord injury in rats // Neurosci. Bull. 2020. V. 36. P. 372–384.
66. Loy K., Bareyre F.M. Rehabilitation following spinal cord injury: how animal models can help our understanding of exercise-induced neuroplasticity // Neural. Regen. Res. 2019. V. 14. P. 405–412. EDN: VJKWOH
67. Loy K., Schmalz A., Hoche T. et al. Enhanced voluntary exercise improves functional recovery following spinal cord injury by impacting the local neuroglial injury response and supporting the rewiring of supraspinal circuits // J. Neurotrauma. 2018. V. 35. P. 2904–2915. EDN: LGCATR
68. Lu D.C., Edgerton V.R. Modaber M. et al. Engaging cervical spinal cord networks to reenable volitional control of hand function in tetraplegic patients // Neurorehabilit. Neural Repair. 2016. V. 30. № 10. P. 951–962. EDN: XFLZVJ
69. Manson G., Atkinson D.A., Shi Z. et al. Transcutaneous spinal stimulation alters cortical and subcortical activation patterns during mimicked-standing: A proof-of-concept fMRI study //Neuroimage Rep. 2022. V. 2. № 2. Article 100090.
70. Manson G.A., Calvert J.S., Ling J. et al. The relationship between maximum tolerance and motor activation during transcutaneous spinal stimulation is unaffected by the carrier frequency or vibration // Phys. Rep. 2020. V. 8. Article e14397. EDN: TRHZBE
71. McHugh L.V., Miller A.A., Leech K.A. et al. Feasibility and utility of transcutaneous spinal cord stimulation combined with walking-based therapy for people with motor incomplete spinal cord injury // Spinal Cord. Ser. Cases. 2020. V. 6. Article 104. EDN: QBOAOS
72. Mesbah S., Gonnelli F., Angeli C.A. et al. Neurophysiological markers predicting recovery of standing in humans with chronic motor complete spinal cord injury // Sci. Rep. 2019. V. 9.Article 14474. EDN: PQAIDY
73. Minassian K., McKay W.B., Binder H., Hofstoetter U.S. Targeting lumbar spinal neural circuitry by epidural stimulation to restore motor function after spinal cord injury // Neurotherapeutics. 2016. V. 13. № 2. P. 284–94. EDN: WTWNFX
74. Moraud E.M., Capogrosso M., Formento E. et al. Mechanisms underlying the neuromodulation of spinal circuits for correcting gait and balance deficits after spinal cord injury // Neuron. 2016. V. 89. P. 814–828. EDN: WUNQTJ
75. Musienko P., van den Brand R., Märzendorfer O. et al. Controlling specific locomotor behaviors through multidimensional monoaminergic modulation of spinal circuitries // J. Neurosci. 2011. V. 31. № 25. P. 9264–78. EDN: OHQRJB
76. Nagappan P.G., Chen H., Wang D.Y. Neuroregeneration and plasticity: a review of the physiological mechanisms for achieving functional recovery postinjury // Military Med. Res. 2020. V. 7. Article 30. EDN: GOIHRO
77. Noble B.T., Brennan F.H., Wang Y. et al. Thoracic VGluT21 Spinal Interneurons Regulate Structural and Functional Plasticity of Sympathetic Networks after High-Level Spinal Cord Injury // J. Neuro-science. 2022. V. 42. № 17. P. 3659–75. EDN: YLODLM
78. Parhizi B., Barss T.S., Mushahwar V.K. Simultaneous cervical and lumbar spinal cord stimulation induces facilitation of both spinal and corticospinal circuitry in humans // Front. Neurosci. 2021. V. 15. Article 615103. EDN: HXGGNN
79. Peña Pino I., Hoover C., Venkatesh S. et al. Long-Term Spinal Cord Stimulation After Chronic Complete Spinal Cord Injury Enables Volitional Movement in the Absence of Stimulation // Front. Syst. Neurosci. 2020. V. 14. Article 35. EDN: HLKKKE
80. Phillips A.A., Squair J.W., Sayenko D.G. et al. An autonomic neuroprosthesis: noninvasive electrical spinal cord stimulation restores autonomic cardiovascular function in individuals with spinal cord injury // J. Neurotrauma. 2018. V. 35. P. 446–451. EDN: XXLMST
81. Quilgars C., Bertrand S. Activity-dependent synaptic dynamics in motor circuits of the spinal cord // Current Opinion Physiology. 2019. V. 8. P. 44–49. EDN: JEWABU
82. Rejc E., Angeli C.A., Atkinson D., Harkema S.J. Motor recovery after activity-based training with spinal cord epidural stimulation in a chronic motor complete paraplegic // Sci. Rep. 2017. V. 7. Article 13476. EDN: YHZMJL
83. Rejc E., Angeli C.A. Ichiyama R.M. Editorial: Advances in Spinal Cord Epidural Stimulation for Motor and Autonomic Functions Recovery After Severe Spinal Cord Injury // Front. Syst. Neurosci. 2022. V. 15. Article 820913. EDN: INUBRV
84. Rejc E., Smith A.C., Weber K.A. et al. Spinal cord imaging markers and recovery of volitional leg movement with spinal cord epidural stimulation in individuals with clinically motor complete spinal cord injury // Front. Syst. Neurosci. 2020. V. 14. Article 559313. EDN: DILGBK
85. Rowald A., Komi S., Demesmaeker R. et al. Activity-dependent spinal cord neuromodulation rapidly restores trunk and leg motor functions after complete paralysis. Nat. Med. 2022. V. 28. P. 260–271. EDN: FELYTQ
86. Sachdeva R., Nightingale T.E., Pawar K. et al. Noninvasive neuroprosthesis promotes cardiovascular recovery after spinal cord injury // Neurotherapeutics. 2021. V. 18. P. 1244–1256. EDN: XRLMJP
87. Samejima S., Henderson R., Pradarelli J. et al. Activity-dependent plasticity and spinal cord stimulation for motor recovery following spinal cord injury // Exp. Neurol. 2022. V. 357. Article 114178. EDN: RASHGI
88. Samejima S., Caskey C.D., Inanici F. et al. Multisite transcutaneous spinal stimulation for walking and autonomic recovery in motor-incomplete tetraplegia: a single-subject design // Phys. Ther. 2022. V. 102. P. 1–12. EDN: KTZKPJ
89. Sanchez-Ventura J., Gimenez-Llort L., Penas C., Udina E. Voluntary wheel running preserves lumbar perineuronal nets, enhances motor functions and prevents hyperreflexia after spinal cord injury // Exp. Neurol. 2021. V. 336. Article 113533. EDN: CRPULC
90. Sayenko D.G., Rath M., Ferguson A.R. et al. Self-assisted standing enabled by non-invasive spinal stimulation after spinal cord injury // J. Neurotrauma. 2019. V. 36. № 9. P. 1435–50. EDN: KXSPMK
91. Seáñez I., Capogrosso M. Motor improvements enabled by spinal cord stimulation combined with physical training after spinal cord injury: review of experimental evidence in animals and humans // Bioelectronic Medicine. 2021. V. 7, Article 16.
92. Shackleton C., Hodgkiss D., Samejima S. et al. When the whole is greater than the sum of its parts: Activity-based therapy paired with spinal cord stimulation following spinal cord injury // J. Neurophysiol. 2022. V. 128. P. 1292–1306. EDN: UNNYME
93. Shapkova E.Y., Pismennaya E.V., Emelyannikov D.V., Ivanenko Y. Exoskeleton walk training in paralyzed individuals benefits from transcutaneous lumbar cord tonic electrical stimulation // Front. Neurosci. 2020. V. 14. Article 416. EDN: LXHVJU
94. Singh G., Lucas K., Keller A. et al. Transcutaneous Spinal Stimulation From Adults to Children: A Review // Top Spinal Cord Inj. Rehabil. 2023. V. 29. № 1. P. 16–32.
95. Siu R., Brown E.H., Mesbah S. et al. Novel Noninvasive Spinal Neuromodulation Strategy Facilitates Recovery of Stepping after Motor Complete Paraplegia // J. Clin. Med. 2022. V. 11. № 13. Article 3670. EDN: TVGPVZ
96. Skinnider M.A., Squair J.W., Kathe C. et al. G. Cell type prioritization in single-cell data // Nat. Biotechnol. 2021. V. 39. P. 30–34. EDN: IEMJAV
97. Taccola G., Sayenko D., Gad P. et al. And yet it moves: recovery of volitional control after spinal cord injury // Prog. Neurobiol. 2018. V. 160. P. 64–81. EDN: XXDNSP
98. Takeoka A., Arber S. Functional local proprioceptive feedback circuits initiate and maintain locomotor recovery after spinal cord injury // Cell Reports. 2019. V. 27. Issue 1. P. 71-85e3. EDN: LRHLLK
99. Tefertiller C., Rozwod M., VandeGriend E. et al. Transcutaneous electrical spinal cord stimulation to promote recovery in chronic spinal cord injury // Front. Rehabil. Sci. 2022. V. 2. Article 740307.
100. Tharu N.S., Alam M., Ling Y.T. et al. Combined Transcutaneous Electrical Spinal Cord Stimulation and Task-Specific Rehabilitation Improves Trunk and Sitting Functions in People with Chronic Tetraplegia // Biomedicines. 2022. V. 11. № 1. Article 34.
101. Urban L.S., Thornton M.A., Ingraham Dixie K.L. et al. Formation of a Novel Supraspinal-Spinal Connectome that Relearns the Same Motor Task after Complete Paralysis // J. Neurophysiol. 2021. V. 126. Issue 3. P. 957–966. EDN: KAXZSX
102. Wagner F.B., Mignardot J-B., Le Goff-Mignardot C.G. et al. Targeted neurotechnology restores walking in humans with spinal cord injury // Nature. 2018. V. 563. P. 65–71. EDN: XELSKB
103. Wernig A., Müller S., Nanassy A., Cagol E. Laufband therapy based on ‘rules of spinal locomotion’ is effective in spinal cord injured persons // Eur. J. Neurosci. 1995. V. 7. P. 823–829.
104. Ying X., Xie Q., Yu X. et al. Water treadmill training protects the integrity of the blood-spinal cord barrier following SCI via the BDNF/TrkB-CREB signalling pathway // Neurochem. Int. 2021. V. 143. Article 104945. EDN: UXDQVC
105. Yu P., Zhang W., Liu Y. et al. The effects and potential mechanisms of locomotor training on improvements of functional recovery after spinal cord injury // Int. Rev. Neurobiol. 2019. V. 147. P. 199–217. EDN: REUJEP
106. Zavvarian M.M., Hong J. M.G. The functional role of spinal interneurons following traumatic spinal cord injury // Front. Cell. Neurosci. 2020. V. 14. Article 127. EDN: PYTSMG
107. Zhang W., Yang B., Weng H. et al. Wheel running improves motor function and spinal cord plasticity in mice with genetic absence of the corticospinal tract // Front. Cell. Neurosci. 2019. V. 13. Article 106.
108. Zholudeva L.V., Abraira V.E., Satkunendrarajah K. et al. Spinal interneurons as gatekeepers to neuroplasticity after injury or disease // J. Neurosci. 2021. V. 41. № 5. P. 845–854. EDN: SPYFDG
Выпуск
Другие статьи выпуска
Фактор роста фибробластов (FGF21) является гормоном печени, который способствует адаптации организма к различным ситауциям, вызывающим напряжение систем метаболизма. В обзоре рассмотрены некоторые нерешенные вопросы, касающиеся физиологического действия этого уникального метаболического регулятора, суммированы основные знания о фармакологических свойствах FGF21 и освещены половые различия в их проявлении при коррекции ожирения. Обобщены результаты, показывающие, что эффективность использования FGF21 для терапии ожирения зависит от этиологии ожирения и пола. Подчеркивается необходимость исследования механизмов возникновения половых различий действия FGF21 для его успешного использования при лечении ожирения у особей мужского и женского пола.
Сладкое – наиболее сильная вкусовая модальность, формирующая пищевое поведение и влияющая на гомеостаз. В обзоре суммированы сведения о рецепции и кодировании вкусовых сигналов на уровне вкусовых почек и центров головного мозга при потреблении сладких веществ. Основное внимание уделено молекулярно-клеточным механизмам идентификации сладкого вкуса и детекции калорийного состава пищи, включая роль мембранных белковых рецепторов T1R2/T1R3 и связанного с ними внутриклеточного ферментативного каскада, а также метаболического механизма оценки концентрации поступающей в цитоплазму глюкозы. Описаны генетические аспекты чувствительности к сладкому и влияние полиморфизма генов рецептора сладкого вкуса на чувствительность к сахарам и низкокалорийным сахарозаменителям. В обзоре приведены результаты современных исследований эндокринной, паракринной и аутокринной модуляции рецепции и восприятия сладкого вкуса в зависимости от метаболического статуса организма. Сделано предположение о перспективном направлении исследований по проблеме.
Кортикотропин-рилизинг фактор (КРФ) и капсаицин-чувствительные афферентные нейроны с эфферентно-подобной функцией (КЧН) вносят важный вклад в регуляцию функций желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) и гастропротекцию. Цель обзора заключалась в анализе данных литературы, в том числе и результатов собственных исследований, о взаимодействии КРФ и КЧН в обеспечении гастропротекции и регуляции функций ЖКТ, с фокусом на наиболее изученное их взаимодействие в регуляции моторной функции ЖКТ. На основании результатов исследований авторов обзора обсуждается возможность вклада КЧН в реализацию гастропротективного влияния КРФ и, наоборот, возможность участия КРФ в обеспечении гастропротективного действия капсацина, активирующего КЧН. Рассматривается вклад глюкокортикоидных гормонов в реализацию гастропротективного действия КРФ и компенсаторная гастропротективная роль данных гормонов в условиях выключения из функционирования КЧН.
Согласно современным представлениям, основу интеллектуальных проблем при нейрологических повреждениях мозга составляет активное забывание, регулируемое зависимыми от малых ГТФаз Rac и Rho сигнальными каскадами ремоделирования актина. Ключевой фермент этих каскадов – LIM-киназа 1 (LIMK1). Изменения экспрессии гена limk1 приводят к нейрокогнитивным патологиям. Для экспресс-скрининга и тестирования агентов целенаправленного терапевтического воздействия, изменяющих белок-белковые взаимодействия ГТФаз и компонентов сигнальных каскадов, необходимо создание и валидация простых животных моделей. Такую возможность предоставляет дрозофила, мутантные линии которой позволяют выявить узловые моменты пересечений биохимических и нервных сетей, сопровождающие активное забывание.
Наличие близких социальных связей – необходимое условие для психического и физического здоровья и благополучия в любом возрасте. Существенный процент населения Земли пережил условия “локдауна” в связи с пандемией COVID-19. Появляется все больше данных научной литературы, посвященных негативному воздействию социальной изоляции на внимание, память, восприятие, исполнительные функции и другие аспекты когнитивных процессов. Это может усложнять повседневную жизнь людей, снижая качество жизни. В обзоре предпринята попытка систематизации накопленных научных фактов о взаимосвязи социальной изоляции и развития нарушений когнитивных функций у человека, собранных в лонгитюдных популяционных исследованиях, а также проведен анализ данных о влиянии социальной изоляции разной длительности на процессы обучения и памяти, полученных в экспериментальных исследованиях на животных. Затронуты вопросы возможной связи этих нарушений, индуцированных социальной изоляцией, с изменением функционирования одной из систем стресс-реактивности – гипоталамо-гипофизарно-адреналовой оси и иммуновоспалительным ответом.
Издательство
- Издательство
- ИЗДАТЕЛЬСТВО НАУКА
- Регион
- Россия, Москва
- Почтовый адрес
- 121099 г. Москва, Шубинский пер., 6, стр. 1
- Юр. адрес
- 121099 г. Москва, Шубинский пер., 6, стр. 1
- ФИО
- Николай Николаевич Федосеенков (Директор)
- E-mail адрес
- info@naukapublishers.ru
- Контактный телефон
- +7 (495) 2767735