В последние годы прогресс в области микробиологии и генной инженерии создал предпосылки для создания широкого спектра ферментных препаратов (ФП) для использования в животноводстве. Перспективность этого направления несомненна, однако на пути к получению высокоактивных препаратов с заданными свойствами возникает ряд проблем методологического характера. Основная проблема заключается в том, что по результатам изучения экзогенных ферментов in vitro трудно спрогнозировать эффективность их действия в организме животного. Имеются доказательства, что это обусловлено недостаточностью имеющихся данных по составу, концентрации субстратов и их расположению в макромолекулярных комплексах кормов. Обоснованность этого предположения аргументируется в обзоре при рассмотрении особенностей действия различных ФП и их влияния на эффективность использования питательных веществ корма у моногастричных животных (свиньи, бройлеры). Основные разделы обзора: факторы, влияющие на действие карбогидраз; в кормлении животных; фитазы, протеазы, полиферментные препараты; влияние состава полиферментных препаратов на продуктивность. Экзогенные ферменты, потребляемые с кормом, вмешиваются в действие эволюционно сложившейся природной системы пищеварения и не подвержены биологической регуляции в желудочно-кишечном тракте. Под влиянием экзогенных ферментов изменяются секреция пищеварительных ферментов и микробиом кишечника, что оказывает влияние на иммунную систему. Механизмы взаимодействия экзогенных и эндогенных ферментов изучены недостаточно. По аналогии с составом природных ферментов предпринимаются попытки создания полиферментных смесей экзогенных ферментов, однако прогнозировать их действие в организме животных ещё сложнее по сравнению с моноферментными препаратами. Неустойчивость результатов использования ФП в кормлении животных в основном обусловлена уровнем знаний у разработчиков и потребителей, недостаточным для адекватного подбора ферментов с учётом изменчивости субстратного состава кормов. Поэтому принимать решение о применении ферментных препаратов целесообразно после проведения их испытаний на фоне реального состава комбикормов.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
Первая работа по применению кормового фермента была опубликована в 1925 году (Clicker, Follwell, 1925). Вначале научное направление по изучению использования ферментов в кормлении животных развивалось медленно (Hastings, 1946; Fry et al., 1957). Развитие интереса к применению ферментов в кормлении животных долго сдерживалось их высокой стоимостью, в последующем были найдены активные продуценты ферментов и усовершенствована технология их получения, что сделало ферменты доступными для практики. В последнее десятилетие созданы высокоактивные ферментные препараты с заданными свойствами и гарантированным качеством. Они детально изучены в лабораторных условиях, их эффективность подтверждена в ходе производственных испытаний, однако в практических условиях любые ферментные препараты не всегда обеспечивают планируемую отдачу. Потребители, сталкиваясь с отсутствием ожидаемых результатов, делают вывод о том, что использованный ферментный препарат не эффективен, но такое заключение справедливо только для конкретной ситуации, потому что кормовые ферменты ведущих производителей хорошо изучены и их действие доказано. При отсутствии положительного результата разработчики препарата должны провести детальный анализ, установить причины отсутствия ожидаемого улучшения продуктивности или экономии кормов и вносить изменения в рекомендации по применению ферментов. Практики, оценивают ферментные препараты не по механизмам действия и другим заявленным свойствам, а по прибыльности их использования в кормлении животных. Если препарат в ряде случаев работает, а в других не эффективен, то нельзя «винить» фермент, просто ему «не дали работы» или не создали условий для его действия. Часть иследований проводят без достаточного научного обоснования, что ведёт только к пополнению статистики негативных зоотехнических результатов.
Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.
Список литературы
1. Волчок А.А., Короткова О.Г., Кондратьева Е.Г., Крюков В.С., Синицына О.А., Синицын А.П., Шмаков И.А. Активность глюканаз и ксиланаз кормовых ферментных препаратов в ЖКТ птицы. // Птицеводство. 2018,. № 4. С. 39-45.
2. Зиновьев С.В., Крюков В.С. О матрицах кормовых ферментных препаратов. // Эффективное Животноводство. 2021. № 3: С. 111-115.
3. Крюков В., Петрушенко Ю., Глебова И., Зиновьев С. О применении фитаз в кормлении животных. // Эффективное животноводство. 2018. № 12. С. 76-80.
4. Крюков В.С, Глебова И.В., Антипов А.А. Оценка действия фитаз в пищеварительном тракте и использование препаратов фитазы в питании животных (обзор). // Проблемы биологии продуктивных животных. 2019. № 2. С. 19-43.
5. Крюков В.С., Глебова И.В., Зиновьев С.В. Переоценка механизма действия фитазы в питании животных. Успехи биологической химии. 2021. № 61. С. 317-346.
6. Слепнева Е.В., Хамматова Е.В. Влияние химических реагентов на кератин шерстяных волокон. // Вестник Казанского технологического университета. 2014. Т. 17. № 16. С. 73 -75.
7. Adeola O., Cowieson А.J. Board-invited review: Opportunities and challenges in using exogenous enzymes to improve non-ruminant animal production. J. Anim. Sci. 2011. 89: 3189-3218.
8. Aftab U., Bedford M.R. The use of NSP enzymes in poultry nutrition: myths and realities. World’s Poultry Sci. J. 2018. 74: 277-286.
9. Akter M., Iji P.A., Graham H. Increasing zinc levels in phytase-supplemented diets improves the performance and nutrient utilization of broiler chickens. South Afr. J. Anim. Sci. 2017. 47: 648-660.
10. Aman P., Graham H. Chemical evaluation of polysaccharides in animal feeds. In: Feedstuff Evaluation, (Eds: J.Wiseman, D.J.A. Cole). Chapter 9, London, UK. 1990. P: 161-177.
11. Amerah A.M., Romero L.F., Awati A., Ravindran V. Effect of exogenous xylanase, amylase, and protease as single or combined activities on nutrient digestibility and growth performance of broilers fed corn/soy diets. Poultry Science. 2017. 96: 807-814.
12. Azad M.A.K., Sarker M., Li T., Yin J. Probiotic species in the modulation of gut microbiota: an overview. BioMed Res. Internl. 2018. 2: 1-8.
13. Baas T.C., Thacker P.A. Impact of pH on dietary enzyme activity and survivability in swine fed β-glucanase supplemented diets. Canad. J. Anim. Sci. 1996. 76: 245-252.
14. Babatunde O.O., Cowieson A.J., Wilson J.W., Adeola O. The impact of age and feeding length on phytase ef cacy during the starter phase of broiler chickens. Poultry Science. 2019. 98: 6742-6750.
15. Baker J.T., Duarte M.E., Holanda D.M., Kim S.W. Friend or toe? Impacts of dietary xylans, xylooligosaccharides, and xylanases on intestinal health and growth performance of monogastric animals. Animals (Basel). 2021. 11(3): 609. DOI: 10.3390/ani11030609
16. Bao Y.M., Romero L.F., Cowieson A.J. Functional patterns of exogenous enzymes in different feed ingredients. World’s Poultry Sci. J. 2013. 69: 759-774.
17. Bedford M.R. The effect of enzymes on digestion. J. Appl. Poultry Res. 1999. 5: 370-378.
18. Bedford M.R. Pitfalls in digestibility techniques for evaluation of phytases. Proc. 13th Worlds Poult. Congr. 2008. 76-85.
19. Bedford M.R. The evolution and application of enzymes in the animal feed industry: the role of data interpretation. Brit. Poultry Sci. 2018. 59: 486-493.
20. Bedford M.R. Future prospects for non-starch polysaccharide degrading enzymes development in monogastric nutrition. In: (The value of fibre. Engaging the second brain for animal nutrition. (Gonzalez-Ortiz G., Bedford M.R. et al., Eds). Wageningen Academic Press, 2019. P. 2052-2063.
21. Bedford M.R. Exogenous enzymes in monogastric nutrition - their current value and future benefits. Anim. Feed Sci. Techn. 2000. 86: 1-13.
22. Bedford M.R., Cowieson A.J. Matrix values for exogenous enzymes and their application in the real world. J. Appl. Poultry Res. 2020. 29:15-22. EDN: WXHVOW
23. Bedford M.R., Walk C.L., Masey O’Neill H.V. Assessing measurements in feed enzyme research: Phytase evaluations in broilers. J. Appl. Poultry Res. 2016. 25: 305-314.
24. Bello A., Dersjant-Li Y., Korver D R. The efficacy of 2 phytases on inositol phosphate degradation in different segments of the gastrointestinal tract, calcium and phosphorus digestibility, and bone quality of broilers. Poultry Science, 2019. 98: 5789-5800.
25. Berghem L.E.R., Pettersson L.G. The mechanism of enzymatic cellulose degradation. Eur. J. Biochem. 1973. 37: 21-30.
26. Biely P., Vrsanska M., Tenkanen M., Kluepfel D. Endo-beta-1,4-xylanase families: differences in catalytic properties. J. Biotechn. 1997. 57: 151-166.
27. Blouzard J.-C., Bourgeois C., de Philip P. et al. Enzyme diversity of the cellulolytic system produced by clostridium cellulolyticum explored by two-dimensional analysis: identification of seven genes encoding new dockerin-containing proteins. J. Bacteriol. 2007. 189: 2300-2309.
28. Bohacz J., Korniłłowicz-Kowalska T., Kitowski I., Ciesielska A. Degradation of chicken feathers by Aphanoascus keratinophilus and Chrysosporium tropicum strains from pellets of predatory birds and its practical aspect. Int. Biodeter. Biodegrad. 2020. 151:104968. DOI: 10.1016/j.ibiod.2020.104968
29. Brandelli A. Bacterial keratinases: useful enzymes for bioprocessing agroindustrial wastes and beyond. Food Bioproc. Technol. 2008, 1: 105-116.
30. Brandelli A., Daroit D.J., Riffel A. Biochemical features of microbial keratinases and their production and applications. Appl. Microbiol. Biotechn. 2010. 85: 1735-1750.
31. Buksa K., Praznik W., Loeppert R., Nowotna A. Characterization of water and alkali extractable arabinoxylan from wheat and rye under standardized conditions. J. Food Sci. Techn. 2016. 53:1389-1398.
32. Burton R.A., Fincher G.B. (1,3:1,4)-beta-D-glucans in cell walls of the poaceae, lower plants and fungi: a tale of two linkages. Molec. Plant. 2009. 2: 873-882.
33. Cabahung S., Ravindran V., Selle P.H., Bryden W.L. Response of broiler chickens to microbial phytase supplementation as influenced by dietary phytic acid and non-phytate phosphorus contents. I. Effects on bird performance and toe ash. Brit. Poultry Sci. 1999. 40: 660-666.
34. Castanon J.I.R., Marquardt R.R. Effect of enzyme addition, autoclave treatment and fermenting on the nutritive value of field beans (Vicia faba L.). Anim. Feed Sci. Techn. 1989. 26: 71-79.
35. Carr S.N., Alee G.L., Rincker P.J., Fry R.S., Boler D.D. Effects of endo-1,4-β-d-mannanase enzyme (Hemicell HT 1.5) on the growth performance of nursery pigs. Profes. Anim. Sci. 2014. 30: 393-399.
36. Chanliaud E., Saulnier L., Thibault J. Alkaline extraction and characterisation of heteroxylans from maize. J. Cereal Sci. 1995. 21:195-203.
37. Chen J., Wedekind K., Vazquez-Anon M. Trypsin inhibitor and urease activity of soybean meal products from different countries and impact of trypsin inhibitor on ileal amino digestibility in pigs. J. Amer. Oil Chem. Soc. 2020. 97(10): 1151-1160.
38. Choct M. The next big steps for feed enzymes. In: Proceedings of the 21st European Symposium on Poultry Nutrition. 2017. Salou/Vila-seca, Spain. Wageningen Acad. Publ. Р. 108-112.
39. Choct M. Feed non-starch polysaccharides: Chemical structures and nutritional significance. Feed Mill Intern. 1997. 191(6): 13-26.
40. Choct M. Enzmes for the feed industry: past, present and future. World’s Poultry Sci. J. 2006, 62: 5-16.
41. Choct M., Annison G. Anti-nutritive activity of wheat pentosans in poultry diets. Brit. Poult. Sci. 1990. 31: 809-819.
42. Choct M., Kocher A., Waters D.L.E., Pettersson D., Ross G. A comparison of three xylanases on the nutritive value of two wheats for broiler chickens. Bri. J. Nutr. 2004. 92: 53-61.
43. Clemente A., Jimenez E., Marin-Manzano M.C., Rubio L.A. Active Bowman-Birk inhibitors survive gastrointestinal digestion at the terminal ileum of pigs fed chickpea-based diets. J. Sci. Food Agricult. 2008. 88: 513-521.
44. Clicker F.H., Follwell E.H. Application of “protozyme” by Aspergillus Orizae to poultry feeding. Poultry Science. 1925. 5: 241-247.
45. Collins T., Gerday C., Feller G. Xylanases, xylanase families and extremophilic xylanases. FEMS Microbiol. Rev. 2005. 29: 3-23.
46. Cowieson A.J. Strategic selection of exogenous enzymes for corn/soy-based poultry diets. Poultry Science. 2010. 47: 1-7.
47. Cowieson A.J. Factors that affect the nutritional value of maize for broilers. Anim. Feed Sci. Techn. 2005. 119: 293-305.
48. Cowieson A.J, Acamovic T., Bedford M.R. Using the precision-feeding bioassay to determine the efficacy of exogenous enzymes: a new perspective. Anim. Feed Sci. Techn. 2006. 129(1-2): 149-158.
49. Cowieson A.J., Acamovic T., Bedford M.R. The effects of phytase and phytic acid on the loss of endogenous amino acids and minerals from broiler chickens. Brit. Poultry Sci. 2004. 45: 101-108.
50. Cowieson A.J., Adeola O. Carbohydrases, protease, and phytase have an additive beneficial effect in nutritionally marginal diets for broiler chicks. Poultry Science. 2005, 84: 1860-1867.
51. Cowieson A.J., Bedford M.R., Ravindran V. Interactions between xylanase and glucanase in maize-soy-based diets for broilers. British Poultry Science. 2010, 51: 246-257.
52. Cowieson A.J., Bedford M.R. The effect of phytase and carbohydrase on ileal amino acid digestibility in monogastric diets: complimentary mode of action? World’s Poultry Science Journal, 2009. 65: 609-624.
53. Cowieson A.J., Ravindran V. Effect of exogenous enzymes in maize-based diets varying in nutrient density for young broilers: growth performance and digestibility of energy, minerals and amino acids. Brit. Poult. Sci.. 2008, 49: 37-44.
54. Cowieson A.J., Ravindran V. Effect of phytic acid and microbial phytase on the flow and amino acid composition of endogenous protein at the terminal ileum of growing broiler chickens. Brit. J. Nutr. 2007. 98: 745-752.
55. Cowieson A.J., Roos F.F. Toward optimal value creation through the application of exogenous mono-component protease in the diets of non-ruminants. Anim. Feed Sci. Techn. 2016. 221: 331-340.
56. Cowieson A.J., Ruckebusch J.P., Sorbara J.O.B., Wilson J.W., Guggenbuhl P., Roos F.F. A systematic review on the effect of phytase on ileal amino acid digestibility in broilers. Anim. Feed Sci. Techn. 2017. 225: 182-194.
57. Cowieson A.J., Toghyani M., Kheravii S.K., Wu S.-B., Romero L.F., Choct M. A mono-component microbial protease improves performance, net energy, and digestibility of amino acids and starch, and up-regulates jejuna expression of genes responsible for peptide transport in broilers fed corn/wheat-based diets supplemented with xylanase and phytase. Poult. Sci. 2019. 98: 1321-1332.
58. Cozannet P., Neto R.M., Geraert P.-A., Kidd M. Feedase: the new generation of feed enzymes to optimise complete nutrient availability in diets: feed science. AFMA Matrix, 2017. 26(1): 24-25.
59. De La Mare M., Guais O., Bonnin E., Weber J., Francois J.M. Molecular and biochemical characterization of three GH62 a-l-arabinofuranosidases from the soil deuteromycete Penicillium funiculosum. Enzym. Microb. Technol. 2013. 53(5): 351e358.
60. De Oliveira Martinez J.P., Cai G., Nachtschatt M. et al. Opportunities in identifying and characterising keratinases for value-added peptide production. Catalysts. 2020. 10: 184-209. EDN: UZSOCH
61. Debyser W., Peumans W., van Damme E., Delcour J. Triticum aestivum Xylanase Inhibitor (TAXI), a new class of enzyme inhibitor affecting breadmaking performance. J. Cereal Sci. 1999, 30: 39-43.
62. Ebringerovà A., Heinze T. Xylan and xylan derivatives - biopolymers with valuable properties. 1. Naturally occurring xylan structures, isolation procedures and properties. Macromol. Rapid Commun. 2000. 21: 542-556.
63. Elkhalil E.A.I., Männer K., Borriss R., Simon O. In vitro and in vivo characteristics of bacterial phytases and their efficacy in broiler chickens. Brit. Poultry Sci. 2007. 48: 64-70.
64. Fernandez F., Sharma R., Hilton M., Bedford M.R. Diet influences the colonization of Campylobacter jejuni and distribution of mucin carbohydrates in the chick intestinal tract. Cell Molec. Life Sci. 2000. 57: 1793-1801.
65. Fontes C.M.G.A., Gilbert H. J. Cellulosomes: highly efficient nanomachines designed to deconstruct plant cell wall complex carbohydrates. Ann. Rev. Biochem. 2010. 79: 655-681.
66. Francesch M., Pérez-Vendrell A.M., Broz J. Effects of a mono-component endo-xylanase supplementation on the nutritive value of wheat-based broiler diets. Brit. Poultry Sci. 2012. 53(6): 809-816.
67. Fry R.E., Allred J.B., Jensen L.S., McGinnis J. Influence of cereal grain components of the diet on the response of chicks and poults to dietary enzyme supplements. Poultry Science. 1957. 36: 1120.
68. Gao F., JiangY., Zhou G.H., Han Z.K. The effects of xylanase supplementation on performance, characteristics of the gastrointestinal tract, blood parameters and gut microflora in broilers fed on wheat-based diets. Anim. Feed Sci. Technol. 2008. 142: 173-184.
69. Gao X., Yu B., Yu J., Mao X., Huang Z., Luo Y., Luo J., Zheng P., He J., Chen D. Effects of dietary starch structure on growth performance, serum glucose-insulin response, and intestinal health in weaned piglets. Animals. 2020. 10(3): 543. DOI: 10.3390/ani1003054
70. Fukushima D. Soy proteins. In: Handbook of Food Proteins (Eds: Phillips G. Williams P). Woodhead Publ., 2011. 464 p.
71. Gebruers K., Dornez E., Bedõ Z., Rakszegi M., Courtin C.M., Delcour J.A., Rakszegi M. Variability in xylanase and xylanase inhibition activities in different cereals in the HEALTHGRAIN Diversity Screen and contribution of environment and genotype to this variability in common wheat. J. Agric. Food Chem. 2010. 58: 9362-9371.
72. Ghesquiere H. Dietary fibre pleads for multi-component enzyme products. Published on: 2/2/2021. .
73. Goesaert H., Debyser W., Gebruers K., Proost P., van Damme J., Delcour J.A. Purification and partial characterization of an endoxylanase inhibitor from barley. Cereal Chem. J. 2001, 78: 453-457.
74. Goesaert H., Gebruers K., Courtin C., Proost P., van Damme J., Delcour J. A family of ‘TAXI’-like endoxylanase inhibitors in rye. J. Cereal Sci. 2002. 36: 177-185.
75. Goli1 S., Shahryar H.A. Effect of enzymes supplementation (rovabio and kemin) on some blood biochemical parameters, performance and carcass characterizes in broiler chickens. Iran. J. Appl. Anim. Sci. 2015. 1(5): 127-131.
76. Gomes J.E.G., da Silva Nascimento T.C.E., de França Queiroz A.E.S. et al. Production, characterization and evaluation of in vitro digestion of phytases, xylanases and cellulases for feed industry. Afric. J. Microb. Res. 2014. 8: 551-558.
77. Gracia M.I., Aranibar M.J., Lázaro R., Medel P., Mateos G.G. Alfa-amylase supplementation of broiler diets based on corn. Poultry Science. 2003. 82: 436-442.
78. Gutierrez N.A., Kerr B.J., Patience J.F. Effect of insoluble-low fermentable fiber from corn-ethanol distillation origin on energy, fiber, and amino acid digestibility, hindgut degradability of fiber, and growth performance of pigs. J. Anim. Sci. 2013. 91: 5314-5325.
79. Gradišar H., Friedrich J., Krizaj I., Jerala R. Similarities and specificities of fungal keratinolytic proteases: comparison of keratinases of Paecilomyces marquandii and Doratomyces microspores to some known proteases. Appl. Environ. Microbiol. 2005. 71: 3420-3426.
80. Hastings W.H. Enzyme supplements for poultry feeds. Poultry Science. 1946. 25: 584-586.
81. Hessing G.C., van Laarhoven H., Rooke J.A., Morgan A. Quality of soyabean meals (SBM) and effect of microbial enzymes in degrading soya antinutritional compounds (ANC). In: 2nd International Soyabean Processing and Utilization Conference. 1996. Bangkok, Thailand. P. 8-13.
82. Huntley N.F., Nyachoti C.M., Patience J.F. Lipopolysaccharide immune stimulation but not β-mannanase supplementation affects maintenance energy requirements in young weaned pigs. J. Anim. Sci. Biotechn. 2018. 9: 47-63.
83. Ichikawa Sh., Ogawa S., Nishida A., Kobayashi Y., Kurosawa T., Karita Sh. Cellulosomes localise on the surface of membrane vesicles from the cellulolytic bacterium Clostridium thermocellum. FEMS Microb. Lett. 2019. 366(12): fnz145.
84. Jang J.-C., Kim K.H., Jang Y.D., Kim Y.Y. Effects of dietaryβ-mannanase supplementation on growth performance, apparent total tract digestibility, intestinal integrity, and immune responses in weaning pigs. Animals. 2020. 10: 703.
85. Jeremic D., Goacher R.E., Yan R., Karunakaran C., Master E.R. Direct and up-close views of plant cell walls show a leading role for lignin-modifying enzymes on ensuing xylanases. Biotechn. Biofuels. 2014. 7: article 496. DOI: 10.1186/s13068-014-0176-9
86. Jiang Z., Zhou Y., Lu F., Han Z, Wang T. Effects of different levels of supplementary alpha amylase on digestive enzyme activities and pancreatic amylase mRNA expression of young broilers. Asian-Austr. J. Anim. Sci. 2008. 21: 97-102.
87. Juanpere J., Pe’rez-Vendrell A. M., Angulo E., Brufau J. Assessment of potential interactions between phytase and glycosidase enzyme supplementation on nutrient digestibility in broilers. Poultry Science. 2005. 84: 571-580.
88. Kaczmarek S.A., Rogiewicz A., Mogielnicka M., Rutkowski A., Jones R.O., Slominski B.A. The effect of protease, amylase, and nonstarch polysaccharide-degrading enzyme supplementation on nutrient utilization and growth performance of broiler chickens fed corn-soybean meal-based diets. Poultry Science. 2014. 93: 1745-1753.
89. Kocher A., Hower J.M., Moran C.A. A dual-enzyme product containing protease in broiler diet: efficacy and tolerance. J. Appl. Anim. Nutr. 2015. Vol. 3. e6. <>. DOI: 10.1017/jan.2015.4
90. Kolpak F.J., Blackwell J. Determination of the structure of cellulose II. Macromolecules. 1976, 9: 273-278.
91. Knudsen K.E.B. Fiber and nonstarch polysaccharide content and variation in common crops used in broiler diets. Poultry Science. 2014. 93 2380-2393.
92. Kryukov V.S., Glebova I.V., Zinoviev S.V. Monitoring the activity of feed enzymes in vitro and their activity in the system that modulates the git. Ecol. Evolut. Biol. 2019. 4(3): 33-38.
93. Kusakabe I.; Takahashi R. Enzymatic preparation of β-1,4-mannooligosaccharides and β-1,4-glucomannooligosaccharides. Methods Enzymol. 1988. 160: 518-523.
94. Lærke H. N., Arent S., Dalsgaard S., Bach Knudsen K.E. Effect of xylanases on ileal viscosity, intestinal fiber modification, and apparent ileal fiber and nutrient digestibility of rye and wheat in growing pigs. J. Anim. Sci. 2015. 93: 4323-4335.
95. Leske K.L, Coon C.N. Bioassay to determine the effect of phytase on phytate phosphorus hydrolysis and total phosphorus retention of feed ingredients as determined with broilers and laying hens. Poultry Science. 1999. 78: 1151-115.
96. Lee K.W., Choi Y.I., Moon E.J., Oh S.T., Lee H.H., Kang C.W., An B.K. Evaluation of dietary multiple enzyme preparation (natuzyme) in laying hens. Asian-Austral. J. Anim. Sci. 2014. 27(12): 1749-1754.
97. Lee S.A., Wiseman J., Masey O’Neill H.V., Scholey D. Understanding the direct and indirect mechanisms of xylanase action on starch digestion in broilers. J. World’s Poultry Res. 2017. 7(2): 35-47.
98. Lee S.A., Bedford M.R., Walk C.L. Meta-analysis: Explicit value of mono-component proteases in monogastric diets. Poultry Science. 2018. 97: 2078-2085.
99. Len N.T., Ngoc T B., Ogle B., Lindberg J.E. Ileal and total tract digestibility in local (Mong Cai) and exotic (Landrace x Yorkshire) piglets fed low and high-fibre diets, with or without enzyme supplementation. Livest. Sci. 2009 126: 73-79.
100. Leske K.L, Coon C.N. Bioassay to determine the effect of phytase on phytate phosphorus hydrolysis and total phosphorus retention of feed ingredients as determined with broilers and laying hens. Poultry Sci. 1999. 78: 1151-1157.
101. Lewis C.J., Catron D.V., Liu C.H., Speer V.C., Ashton G.C. Enzyme supplementation of baby pig diets. Agric. Food Chem. 1955. 3: 1047-1050.
102. Lin J. S., Tang M.-Y, Fellers J.F. Fractal analysis of cotton cellulose as characterized by small-angle X-ray scattering. ACS Symp. 1987. Ser. 340: 233-254.
103. Lin X., Lee C.-G., Casale E.S., Shih J.C. Purification and characterization of a keratinase from a feather-degrading Bacillus licheniformis strain. Appl. Environ. Microbiol. 1992. 58: 3271-3275.
104. Lin X., Shih J.C.H., Swaisgood H.E. Hydrolysis of feather keratin by immobilized keratinase. Appl. Environ.l Microbiol. 1996. 62: 4273-4275.
105. Lindberg J.E. Fiber effects in nutrition and gut health in pigs. J. Anim Sci. Biotechn. 2014. 5. Article nr 15.
106. Liu, J.; Cao, S.C.; Xie, Y.N.; Zhang, H.F. Effect of probiotics and xylo-oligosaccharide supplementation on nutrient digestibility, intestinal health and noxious gas emission in weanling pigs. Asian-Austral. J. Anim. Sci. 2018. 31: 1660-1669.
107. Liu N., Ru Y.J., Cowieson A.J., Li F.D., Cheng C.H. Effects of phytate and phytase on the performance and immune function of broilers fed nutritionally marginal diets. Poultry Science, 2008. 87: 1105-1111.
108. Liu W.Ch., Kim I.H. Effects of dietary xylanase supplementation on performance and functional digestive parameters in broilers fed wheat-based diets. Poultry Science. 2017. 96: 566-573.
109. López-Otín C., Bond J.S. Proteases: multifunctional enzymes in life and disease. J. Biol. Chem. 2008. 283: 30433-30437.
110. Lu P.Y., Wang J., Wu S.G., Gao J., Dong Y., Zhang H.J., Qi G.H. Standardized ileal digestible amino acid and metabolizable energy content of wheat from different origins and the effect of exogenous xylanase on their determination in broilers. Poultry Science. 2020. 99: 92-100.
111. Ma J., Yang T., Yang M. et al. Effects of dietary amylose/amylopectin ratio and amylase on growth performance, energy and starch digestibility, and digestive enzymes in broilers. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. (Berlin). 2020. 104: 928-935.
112. Madhukumar M.S.; Muralikrishna G. Fermentation of xylo-oligosaccharides obtained from wheat bran and Bengal gram husk by lactic acid bacteria and bifidobacteria. J. Food Sci. Techn. 2011. 49: 745-752.
113. Mahagna M., Nir I., Larbier M., Nitsan Z. Effect of age and exogenous amylase and protease on development of the digestive tract, pancreatic enzyme activities and digestibility of nutrients in young meat-type chicks. Repr. Nutr. Develop. 1995. 35: 201-212.
114. Masey O’Neill H.V., Smith J.A., Bedford M.R. Multicarbohydrase enzymes for non-ruminants. Asian-Austr. J. Anim. Sci. 2014. 27: 290-301.
115. McNeill M., Darvill A.G., Fry S.C., Albersheim P. Structure and function of the primary cell walls of plants. Ann. Rev. Biochem. 1984. 53: 625-663.
116. Meng X., Slominski B., Nyachoti A., Campbell C.M., Guenter L.D. Degradation of cell wall polysaccharides by combinations of carbohydrase enzymes and their effect on nutrient utilization and broiler chicken performance. Poultry Science. 2005. 84: 37-47.
117. Menezes-Blackburn D., Gabler S., Greiner R. Performance of seven commercial phytases in an in vitro simulation of poultry digestive tract. J. Agric. Food Chem. 2015. 63(27): 6142-6149.
118. Miura E.M.Y., Ferreira Da Silva R.S.D.S., Mizubuti I.Y., Ida, E.I. Cinética de inativação de inibidores de tripsina e de insolubilização de proteínas de diferentes cultivares de soja. Rev. Brasil. Zootec. 2005. 34: 1659-1665.
119. Mohiti-Asli M., Ghanaatparast-Rashti M., Akbarian P., Mousavi S. N. Effects of a combination of phytase and multi-carbohydrase enzymes in low-density corn-soybean meal based diets on growth performance and ileal nutrients digestibility of male broilers. Ital. J. Anim. Sci. 2020. 19: 1533-1541.
120. Morana A., Maurelli L., Ionata E., La Cara F., Rossi M. Cellulases from fungi and bacteria and their biotechnological applications. In: Cellulase: types and action, mechanisms and uses. Nova Sci. Publ. New York (US). 2011. P. 1-79.
121. Moreno F.J., Clemente A. 2S albumin storage proteins: what makes them food allergens? Open Biochem. J. 2008. 2: 11-23.
122. Moss A., Chrystal P., Dersjant-Li, Y., Liu S., Selle P. The ranked importance of dietary factors influencing the performance of broiler chickens offered phytase-supplemented diets by the Plackett-Burman screening design. Brit. Poultry Sci. 2019. 60: 439-448.
123. Murashima K., Kosugi A., Doi R.H. Synergistic effects of cellulosomal xylanase and cellulases from clostridium cellulovorans on plant cell wall degradation. J. Bacteriol. 2003. 185: 1518-1524.
124. Mynott T.L., Luke R.K., Chandler D.S. Oral administration of protease inhibits enterotoxigenic Eschericia coli receptor activity in piglet small intestine. Gut. 1996. 38: 28-32.
125. Nahm K.H., Carlson C.W. Effects of cellulase from trichoderma viride on nutrient utilization by broilers. Poultry Science. 1985. 64: 1536-1540.
126. Navone L., Speight R. Understanding the dynamics of keratin weakening and hydrolysis by proteases. PLos One. 2018. 13: 1-21.
127. Ndou S.P., Kiarie E., Agyekum A.K., Heo J.M. et al. Comparative efficacy of xylanases on growth performance and digestibility in growing pigs fed wheat and wheat bran-or corn and corn DDGS-based diets supplemented with phytase. Anim. Feed Sci. Techn. 2015. 209: 230-239.
128. Noy Y., Sklan D. Digestion and absorption in the young chick. Poultry Science. 1995. 74: 366-373.
129. Nørgaard J.V., Malla N., Dionisio G. et al. Exogenous xylanase or protease for pigs fed barley cultivars with high or low enzyme inhibitors. Anim. Feed Sci. Technol. 2019. 248: 59-66.
130. Odetallah N.H., Wang J.J., Garlich J.D., Shih J.C.H. Keratinase in starter diets improves growth of broiler chicks. Poultry Science. 2003. 82: 664-670.
131. Olukosi O.A., Adeola O. Whole body nutrient accretion, growth performance and total tract nutrient retention responses of broilers to supplementation of xylanase and phytase individually or in combination in wheat-soyabean meal based diets. Poultry Science. 2008. 45: 192-198.
132. Olukosi O.A., Bedford M.R. Comparative effects of wheat varieties and xylanase supplementation on growth performance, nutrient utilization, net energy, and whole-body energy and nutrient partitioning in broilers at different ages. Poultry Science. 2019. 98: 2179-2188.
133. Olukosi O.A., Cowieson A.J., Adeola O. Age-related in uence of a cocktail of xylanase, amylase, and protease or phytase individually or in combination in broilers. Poultry Science. 2007. 86: 77-86.
134. Onyango E.M., Bedford M.R., Adeola O. Phytase activity along the digestive tract of the broiler chick: A comparative study of an Escherichia coli-derived and Peniophora lycii phytase. Canad. J. Anim. Sci.. 2005, 85: 61-68.
135. Paës G., Berrin J.-G., Beaugrand J. GH11 xylanases: structure/function/properties relationships and applications. Biotechn. Adv. 2012. 30: 564-592.
136. Parker K.N., Chhabra S.R., Lam D. Galactomannanases Man2 and Man5 from Thermotoga species: growth physiology on galactomannans, gene sequence analysis, and biochemical properties of recombinant enzymes. Biotechn. Bioengin. 2001. 75: 322-333.
137. Penha L.A.O., Fonseca I.C.B., Mandarino J.M., Benassi V.T. A soja como alimento: valor nutricional, benefícios para a saúde e cultivo orgânico. Bolet. Centro Pesq. Proces. Alim. 2007. 25: 91-102.
138. Petry A.L., Patience J.F., Huntley N.F. et al. Xylanase supplementation modulates the microbiota of the large intestine of pigs fed corn-based fiber by means of a stimbiotic mechanism of action. Front. Microbiol. 2021. 24 March. <>. DOI: 10.3389/fmicb.2021.619970
139. Petry A.L., Patience J.F. Xylanase supplementation in corn-based swine diets: a review with emphasis on potential mechanisms of action. J. Anim. Sci. 2020. 98(11): 1-12.
140. Qiu J., Wilkens C., Barrett K., Meyer A. S. Microbial enzymes catalyzing keratin degradation: Classification, structure, function. Biotechn. Adv. 2020. 44: 1-22.
141. Ravindran V. Feed enzymes: the science, practice, and metabolic realities. J. Appl. Poultry Res. 2013. 22: 628-636.
142. Ravindran V., Selle P.H., Bryden W.L. Effects of phytase supplementation, individually and in combination, with glycanase, on the nutritive value of wheat and barley. Poultry Science. 1999. 83: 1588-1595.
143. Ravindran V., Morel P.C., Partridge G.G., Hruby M., Sands J.S. Influence of an Escherichia coli-derived phytase on nutrient utilization in broiler starters fed diets containing varying concentrations of phytic acid. Poultry Science. 2006.85: 82-89.
144. Ravindran V., Adeola O., Rodehutscord M. et al. Determination of ileal digestibility of amino acids in raw materials for broiler chickens - results of collaborative studies and assay recommendations. Anim. Feed Sci. Technol. 2017. 225: 62-72.
145. Rehman Z.U., Aziz T., Bhatti S.A. et al. Effect of β-mannanase on the Performance and Digestibility of Broilers. Asian J. Anim. Veter. Adv. 2016. 11: 393-398.
146. Rao M.B., Tanksale A.M., Ghatge M.S., Deshpande V.V. Molecular and biotechnological aspects of microbial proteases. Microb. Molec. Biol. Rev, 1998. 62: 597-635.
147. Razzaq A., Shamsi S., Ali A., Ali Q., Sajjad M., Malik A., Ashraf M. Microbial proteases applications. Front. Bioeng. Biotechn. 2019, 12(7): Articl No 10. Р. 1-20.
148. Rehman Z.U., Aziz T., Bhatti S.A. et al. Effect of β-mannanase on the performance and digestibility of broilers. Asian J. Anim. Veter. Adv. 2016. 11: 393-398.
149. Romero L.F., Parsons C.M., Utterback P.L., Plumstead P.W., Ravindran V. Comparative effects of dietary carbohydrases without or with protease on the ileal digestibility of energy and amino acids and AMEn in young broilers. Anim. Feed Sci. Technol. 2013. 181: 35-44.
150. Roofchaei A. Rezaeipour V., Vatandour S., Zaefarian F. In uence of dietary carbohydrases, individually or in combination with phytase or an acidi er, on performance, gut morphology and microbial population in broiler chickens fed a wheat-based diet. Anim. Nutr. 2019. 5: 63-67.
151. Ryu D.D., Mandels M. Cellulases: biosynthesis and applications. Enz. Microb. Technol. 1980. 2: 91-102. EDN: XQPJXR
152. Sancho A.I., Faulds C.B., Svensson B., Bartolomé B., Williamson G., Juge N. Cross-inhibitory activity of cereal protein inhibitors against α-amylases and xylanases. Biochim. Biophys.Acta. Prot. Proteom. 2003. 1650: 136-144.
153. Saulnier L., Guillon F., Chateigner-Boutin A.-L. Cell wall deposition and metabolism in wheat grain. J. Cereal Sci. 2012. 56: 91-108.
154. Schutte J. B. de Jong J., Polziehn R., Verstegen W.A. Nutritional implications of D-xylose in pig. Brit. J. Nutr. 1991, 66:83-93.
155. Schramm V.G., Durau J.F., Barrilli L.N.E. et al. Interaction between xylanase and phytase on the digestibility of corn and a corn/soy diet for broiler chickens. Poultry Science, 2017. 96: 1204-1211.
156. Selle P.H., Ravindran V., Ravindran G., Pittolo P.H., Bryden W.L. In uence of phytase and xylanase supplementation on growth performance and nutrient utilisation of broilers offered wheat-based diets. Asian-Austr. J. Anim. Sci. 2003. 16: 394-402.
157. Selle P.H., Ravindran V., Partridge G.G. Bene cial effects of xylanase and/or phytase inclusions on ileal amino acid digestibility, energy utilisation, mineral retention and growth performance in wheat-based broiler diets. Anim. Feed Sci. Technol. 2009. 153: 303-313.
158. Shimada M., Mochizuki K., Goda T. Feeding rats dietary resistant starch shifts the peak of SGLT1 gene expression and histone H3 acetylation on the gene from the upper jejunum toward the ileum. J. Agr. Food Chem. 2009. 57: 8049-8055.
159. Siegert W., Zuber T., Sommerfeld V., Krieg J., Feuerstein D., Kurrle U., Rodehutscord M. Prececal amino acid digestibility and phytate degradation in broiler chickens when using different oilseed meals, phytase and protease supplements in the feed. Poultry Science. 2019. 98: 5700-5713.
160. Simon O. and Igbasan F. In vitro properties of phytases from various microbial origins. Intern. J. Food Sci. Technol. 2002. 37: 813-822.
161. Singh R., Mittal A., Kumar M., Mehta P.K. Microbial Proteases in Commercial Applications. J. Pharmc. Chem. Biol. Sci. 2016. 4: 365-374.
162. Slominski B.A. Recent advances in research on enzymes for poultry diets. Poultry Science. 2011. 90: 2013-2023.
163. Schramm V.G., Durau J.F., Barrilli L.N.E. et al. Interaction between xylanase and phytase on the digestibility of corn and a corn/soy diet for broiler chickens. Poultry Science. 2017. 96: 1204-1210.
164. Stefanello C., Vieira S. L., Santiago G.O. et al. Starch digestibility, energy utilization, and growth performance of broilers fed corn-soybean basal diets supplemented with enzymes. Poultry Science. 2015. 94: 2472-2479.
165. Stein H.H., Connot S.P., Pedersen C. Energy and nutrient digestibility in four sources of distillers dried grains with solubles produced from corn grown within a narrow geographical area and fed to growing pigs. Asian-Austral. J. Anim. Sci. 2009. 22(7): 1016-1025.
166. Suzuki Y., Tsujimoto Y., Matsui H., Watanabe K. Decomposition of extremely hard-to-degrade animal proteins by thermophilic bacteria. J. Biosci. Bioeng. 2006. 102: 73-81.
167. Tang D, Hao S., Liu G., Nian F., Ru Y. Effects of maize source and complex enzymes on performance and nutrient utilization of broiler. Asian-Austr. J. Anim. Sci. 2014. 27: 1755-1762.
168. Tejedor A.A., Albino L.F.T., Rostagno H.S., Lima C.A.R., Vieites F.M. Effect of enzymes supplementation in corn soybean meal broiler diets on ileal digestibility of nutrients. Rev. Bras. Zootec. 2001. 30: 809-816.
169. Theander O., Westerlund E., Aman P., Graham H. Plant cell walls and monogastric diets. Anim. Feed Sci. Technol. 1989. 23: 205-225.
170. Torres-Pitarch A., Manzanilla E.G., Gardiner G.E., O’Doherty J.V., Lawlor P.G. Systematic review and meta-analysis of the effect of feed enzymes on growth and nutrient digestibility in grow-finisher pigs: Effect of enzyme type and cereal source. Anim. Feed Sci. Technol. 2019, 251: 153-165.
171. Vasquez M.V., Glitsoe V. Phytase unit myth! 2012. .
172. Vieira S.L., Stefanello C., Sorbara J.O.B. Formulating poultry diets based on their indigestible components. Poultry Science. 2014. 93: 2411-2416.
173. de Vries R. P., Visser J. Aspergillus enzymes involved in degradation of plant cell wall polysaccharides. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2001. 65: 497-522. EDN: YKROMT
174. Walk C.L., Poernama F. Evaluation of phytase, xylanase, and protease in reduced nutrient diets fed to broilers. J. Appl. Poultry Res. 2019. 28: 85-93.
175. Walk C.L., Pirgozliev V., Juntunen K., Paloheimo M., Ledoux D.R. Evaluation of novel protease enzymes on growth performance and apparent ileal digestibility of amino acids in poultry: enzyme screening. Poultry Science. 2018. 97: 2123-2138.
176. Walk C.L., Olukosi O.A. Influence of graded concentrations of phytase in high-phytate diets on growth performance, apparent ileal amino acid digestibility, and phytate concentration in broilers from hatch to 28 D post-hatch. Poultry Science. 2019. 98: 3884-3893.
177. Ward N.E. Choosing enzyme solution depends on many factors. Feedstuffs. 2014. 86. No. 04, January 27.
178. Wang D., Piao X.S., Zeng Z.K, et al. Effects of keratinase on performance, nutrient utilization, intestinal morphology, intestinal ecology and inflammatory response of weaned piglets fed diets with different levels of crude protein. Asian-Austr. J. Anim. Sci. 2011. 24: 1718-1728.
179. Wang J.J., Garlich J.D., Shih J.C.H. Beneficial effects of versazyme, a keratinase feed additive, on body weight, feed conversion, and breast yield of broiler chickens. J. Appl. Poultry Res. 2006. 15: 544-550.
180. Wealleans A.L., Walsh M.C., Romero L.F., Ravindran V. Comparative effects of two multi-enzyme combinations and a Bacillus probiotic on growth performance, digestibility of energy and nutrients, disappearance of non-starch polysaccharides, and gut microflora in broiler chickens. Poultry Science. 2017. 96: 4287-4297.
181. Wilkie K.C.B., Woo S.L. A heteroxylan and hemicellulosic materials from bamboo leaves, and a reconsideration of the general nature of commonly occurring xylans and other hemicelluloses. Carbohyd. Res. 1977. 57: 145-162.
182. Willamil J., Badiola I., Devillard E., Geraert P.A., Torrallardona D. Wheat-barley-rye- or corn-fed growing pigs respond differently to dietary supplementation with a carbohydrase complex. J. Anim. Sci. 2012, 90: 824-832.
183. Williams M.P., Masey O’Neill H.V, York T., Lee J.T. Effects of nutrient variability in corn and xylanase inclusion on broiler performance, nutrient utilization, and volatile fatty acid profiles. J. Appl. Anim. Nutr. 2018. 6(e1): 1-10.
184. Wood T.M., McCrae S.I. Synergism between enzymes involved in the solubilization of native cellulose. Adv. Chem. Ser. 1979. 181: 181-209.
185. Woyengo T.A., Guenter W., Sands J.S., Nyachoti C.M., Mirza M.A. Nutrient utilisation and performance responses of broilers fed a wheat-based diet supplemented with phytase and xylanase alone or in combination. Anim. Feed Sci. Technol. 2008. 146: 113-123.
186. Woyengo T.A., Slominski B.A. and Jones R.O. Growth performance and nutrient utilization of broiler chickens fed diets supplemented with phytase alone or in combination with citric acid and multicarbohydrase. Poultry Science. 2010. 89: 2221-2229.
187. Woyengo T.A., Nyachoti C.M. Review: Supplementation of phytase and carbohydrases to diets for poultry. Canad. J. Anim. Sci. 2011. 91: 177-192.
188. Wu S. B., Choct M., Pesti G. Historical aws in bioassays used to generate metabolizable energy values for poultry feed formulation: a critical review. Poultry Science. 2019. 98: 7173.
189. Wu Y.B., Ravindran V., Thomas D.G., Birtles M.J., Hendriks W.. In uence of phytase and xylanase, individually or in combination, on performance, apparent metabolisable energy, digestive tract measurements and gut morphology in broilers fed wheat-based diets containing adequate level of phosphorus. Brit. Poultry Sci. 2004. 45: 76-84.
190. Yamamoto K., Tamaru Y. Synergistic properties of cellulases from Clostridium cellulovorans in the presence of cellobiose. AMB Express. 2016. 6(1):1-6.
191. Yamazaki M., Murakami H., Nakashima K., Otsuka M., Takada R., Abe H. Effect of cellulase supplementation in low-crude protein diets on performance, nitrogen excretion, fat deposition, hepatic lipogenic and lipolytic enzyme activity in broilers. Brit. Poultry Sci. 2007. 48: 210-216.
192. Yegani M., Korver D.R. Effects of corn source and exogenous enzymes on growth performance and nutrient digestibility in broiler chickens. Poultry Sci. 2013. 92: 1208-1220.
193. Yi J. Q., Piao X.S., Li Z.C., Zhang H.Y. et al. Тhe effects of enzyme complex on performance, intestinal health and nutrient digestibility of weaned pigs. Asian-Austr. J. Anim. Sci. 2013. 26: 1181-1188.
194. Yu S., Thoegersen J.B., Kragh K.M. Comparative study of protease hydrolysis reaction demonstrating normalized peptide bond cleavage frequency and protease substrate broadness index. Plos One. 2020. September. <>. DOI: 10.1371/journal.pone.0239080 EDN: RDCZOV
195. Yuan J., Wang X., Yin D., Wang M., Yin X., Lei Z, Guo Y. Effect of different amylases on the utilization of corn starch in broiler chickens. Poultry Science. 2017. 96: 1139-1148.
196. Yuan L., Wang M., Zhang X., Wang Z. Effects of protease and non-starch polysaccharide enzyme on performance, digestive function, activity and gene expression of endogenous enzyme of broilers. PLoS One. 2017. 12: e0173941.
197. Yoo J.S., Jang H.D., Lee J.H., Kim I.H. Effect of fermented soy bean protein on nitrogen balance and apparent fecal and ileal digestibility in weaned pigs. Asian-Austr. J. Anim. Sci. 2009. 22: 1167-1173.
198. Zeller E., Schollenberger M., Kühn I., Rodehutscord M. Hydrolysis of phytate and formation of inositol phosphate isomers without or with supplemented phytases in different segments of the digestive tract of broilers. J. Nutr. Sci. 2015. 4: 1-12.
199. Zhang J., Gao Y., Lu Q., Sa R., Zhang H. Proteome changes in the small intestinal mucosa of growing pigs with dietary supplementation of non-starch polysaccharide enzymes. Proteome Science. 2017. 15: 3, 1-14.
200. Zuo J., Ling B., Long L., Li T., Lahaye L., Yang C., Feng D. Effect of dietary supplementation with protease on the growth performance, nutrientutilization, intestinal morphology, digestive enzymes and gene expression of weaned piglets. Anim. Nutr. 2015. 1: 276-282.
201. Zou X.T., Qiao X.J., Xu Z.R. Effect of β-Mannanase (Hemicell) on growth performance and immunity of broilers. Poultry Science. 2006. 85: 2176-2179.
202. Żyła K., Mika M., Stodolak B., Wikiera A., Koreleski J., Świątkiewicz S. Towards complete dephosphorylation and total conversion of phytases in poultry feeds. Poultry Science, 2004. 83: 1175-1186.
203. Żyła K., Duliński R., Pierzchalska M., Grabacka M., Józefiak D., Świątkiewicz S. Phytases and myo-inositol modulate performance, bone mineralization and alter lipid fractions in the serum of broilers. J. Anim. Feed Sci. 2013. 22: 56-62.
Выпуск
Другие статьи выпуска
Цель работы – сравнение двух методов оценки питательности кормов и жировых добавок при нормировании питания высокопродуктивного молочного скота: 1) инкубирование in sacco в рубце и метод мобильных мешочков в кишечнике, и 2) определение переваримости и усвояемости энергии кормового жира на основании дифференциальных балансовых опытах на коровах. Изучение переваримости липидов в рубце и кишечнике показало, что липиды исследованных кормов на 60-86% подвергались перевариванию в рубце и только от 4,3 до 16% липидов корма переваривалось в кишечнике. Установлено, что в сравнении с грубыми кормами, переваримость жира в рубце и в кишечнике выше у зерновых кормов и шротов. Изучение переваримости коммерческих «защищенных» кормовых жиров с использованием двух методов показало, что только небольшая часть исследованных образцов обладают необходимыми характеристиками для этого класса кормовых средств. Результаты определения переваримости, оцененные в опытах на оперированных животных и полученные расчётным путём, существенно не различались.. Разница в показателях общей переваримости жировой добавки, оцененной разными методами, составила 4,1 абс.% и 7 отн.%. Заключили, что оценку питательной и энергетической ценности можно проводить и инкубационным методом, и путём проведения балансовых опытов.
Жирнокислотный состав животноводческой продукции оказывает большое влияние на её качество; в частности, жирные кислоты подкожного жира в значительной степени определяют пищевую и технологическую ценность продуктов из свинины Целью данной работы было исследование проявлений устойчивости и вариабельности взаимосвязей жирнокислотного состава и содержания общих липидов в подкожной жировой ткани у свиней. В течение 3-х лет проводились опыты на свиньях в периоды доращивания и откорма, по обобщённым результатам которых установлены закономерные связи между процентным содержанием индивидуальных жирных кислот и количеством общих липидов в подкожном жире в период откорма. В частности, для четырёх основных жирных кислот: FAΣ = -20,5 + 1,13 × TL (P<0.001); C16 = -6,11 + 0,28 × TL (P<0.001); C18 = -2,63 + 0,17 × TL (P<0.001); C18:1 = -13,2 + 0,56 × TL (P<0.001); C18:2 = 0,28 + 0,06 × TL (P<0.001), где: FAΣ – содержание суммы жирных кислот, г/100 г общих липидов; TL – содержание общих липидов в подкожном жире, г/100 г ткани; C16-C18:2 – содержание индивидуальных жирных кислот, % от суммы ЖК. В дальнейшем предполагается изучить возможности данного способа анализа при исследовании жирнокислотного состава подкожного жира, в том числе для экспрессного анализа его качества.
Целью работы было изучение физиологического состояния, формирования колострального иммунитета и неспецифической резистентности у новорождённых телят, полученных от коров, которым в предотельный период было произведено однократно парентеральное введение раствора нуклеината натрия (НН). Опыт выполнен в осенне-зимний период, объекты исследования – 10 глубокостельных коров чёрно-пестрой породы и полученные от них телята. Коровам опытной группы за 3-9 дней перед отёлом вводили 0,2%-й водный раствор НН в дозе 5 мл внутримышечно, однократно. Коровам контрольной группы вводили 0,9%-ый раствор натрия хлорида в дозе 5 мл внутримышечно, однократно. Определяли уровень общих иммуноглобулинов и титруемую кислотность молозива 1-го и 5-го удоя у коров контрольной и опытной групп, у телят на 2-е и 10-е сутки жизни исследовали клеточный и биохимический состав крови. У новорождённых телят измеряли температуру тела, пульс, частоту дыхательных движений на 2-е, 10-е и 30-е сутки жизни, фиксировали время появления сосательного рефлекса и уверенной позы стояния. Применение 0,2%-го раствора НН глубокостельным коровам способствовало повышенному выделению в составе молозива иммуногенных факторов и повышению титруемой кислотности молозива. В крови новорождённых телят опытной группы отмечено повышение в сравнении с контролем уровня лейкоцитов, общего белка, гамма-глобулинов, альбуминов, а также бета-глобулинов на протяжении всего периода исследования. Показатели бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови, фагоцитарной активности нейтрофилов и фагоцитарного индекса были выше в опытной группе (P<0.05). Телята, родившиеся от коров опытной группы, росли более крепкими и активными, среднесуточный прирост ЖМ за 4 месяца выращивания был выше в опытной группе. Заключили, что однократное парентеральное введение стельным коровам водного раствора НН за 3-9 дней до отёла оказывает положительное влияние на физиологическое состояние, формирование колострального иммунитета и становление неспецифической резистентности у новорождённых телят.
Рутинное использование результатов генотипирования по ДНК-маркерам регламентировано Приказом МСХ Российской Федерации в 2021 г. и осуществляется в ряде племенных свиноводческих предприятий. Одними из наиболее востребованных в практической работе являются ДНК-маркеры генов ESR1 (оказывает влияние на репродуктивные признаки свиней) и IGF2 (ген инсулиноподобного фактора роста – 2, ассоциированный с мясными и откормочными качествами свиней). Оптимизация тест-систем и диагностикумов в части снижения себестоимости и трудоемкости, а также повышения точности за счет нивелирования фактора субъективности характеризуется практической значимостью. Прогресс, достигнутый за последние десятилетия в области детекции полиморфизмов, позволяет использовать альтернативные методы идентификации генетических вариантов. Одним из таких методов является ПЦР с детекцией результатов в режиме реального времени (ПЦР-РВ), который авторы использовали при разработке тест-систем анализа полиморфизма генов ESR и IGF2. В данной статье изложены принципы создания тест-систем детекции полиморфизма вышеизложенных генов методом ПЦР-РВ, причем дизайн системы предусматривает амплификацию и генотипирование ДНК как симплексном, так и в мультиплексном режиме, и продемонстрированы результаты генотипирования с их использованием. Предложенные тест-системы предусматривают использование реактивов отечественных производителей, позволяют снизить временные и материальные затраты, повысить точность генотипирования. Сопоставление результатов исследований с использованием разработанной тест-системы и полученных посредством использования традиционных методов генотипирования (ПЦР-ПДРФ) продемонстрировали 100% совпадение. Таким образом, предложенные тест-системы детекции полиморфизма генов ESR1 и IGF2 методом ПЦР-РВ могут быть с успехом использованы для генотипирования свиней различных пород.
Цель работы – систематизация концептуальных и методических аспектов использования новых информационных технологий в животноводстве, в том числе в плане развития теории и практики донозологического мониторинга физиологических функций и раннего прогнозирования жизнеспособности высокопродуктивных коров. Рассмотрены основные составляющие новых IT в животноводстве – технологии сбора, передачи и хранения данных, использование технологий Big Data в системах физиологического мониторинга, когнитивные технологии, моделирование продукционных процессов. Проанализированы открывающиеся перспективы для оценки и прогнозировании жизнеспособности высокопродуктивных животных. Новые технические средства для сбора физиологически значимой информации позволяют кардинально увеличить объём измерительных данных, получаемых на всей субпоуляции и на протяжении всей жизни животного, что резко повышает возможности для мониторинга, диагностики и оптимизации сложных многофакторных продукционных процессов. Новизна этого подхода состоит в переносе акцентов от борьбы с «болезнями продуктивности» к вопросам их профилактики на основе исключения факторов риска на всех этапах онтогенеза, создания адаптивных систем кормления, внедрения новых методов медицинской интроскопии, дистанционной диагностики и физиологического мониторинга, а также поддержания комфортных условий (welfare) эксплуатации высокопродуктивных животных. Для успешного применения BD-технологий большое значение имеет наличие развитой «аналитики» (статистического анализа, вычислительного моделирования т. д.), поэтому на первых этапах критическим фактором обычно бывает дефицит подготовленных профильных специалистов. Требованием времени стал заказ на организацию системы «Зоофизтеха», по аналогии с существующими в области земледелия/растениеводства институтами агрофизического профиля. В конечном счёте, целью разведения и воспроизводства молочного скота должно быть получение популяций высокоудойных коров со сбалансированным соотношением объёма вымени и функциональных резервов висцеральных систем, обеспечивающим оптимальный уровень синтеза компонентов молока, исключающим возникновение метаболических дисфункций и снижение качества молочной продукции.
Проблема повышения эффективности мясного скотоводства на современном этапе в значительной мере решается на пути совершенствования технологий кормления животных, в частности, за счёт применения биологически активных добавок для повышения эффективности использования кормов. Одним из важнейших факторов повышения мясной продуктивности является оптимизация протеинового питания животных. Белковый обмен является неотъемлемой частью азотистого обмена. Мочевина и аммиак – конечные продукты азотистого обмена, а уровень интермедиатов цикла мочевины (орнитинового цикла) можно регулировать, водействуя на активность ключевых ферментов цикла. N-карбамоилглутамат (NКГ) - неметаболизируемый аналог N-ацетилглутамата, аллостерического активатора первой ферментативной реакции цикла мочевины, является эффективным агонистом и регулятором карбамоилфосфатсинтетазы. Применение кормовой добавки NКГ обеспечивает более полную конверсию азота мочевины и аммиака в эндогенный белок и повышает мясную продуктивность сельскохозяйственных животных, что подтверждено многочисленными работами зарубежных и отечественных ученых. Цель обзора – систематизировать данные о влияние кормовой добавки NКГ воспроизводительную функцию, мясную и молочную продуктивность животных, особенно КРС. В разделах обзора рассмотрены основные направления действия NКГ: 1) активность цикла мочевины; 2) продуктивность животных; 3) рубцовое пищеварения 4) состав и функциональную активность микробиоты рубца у жвачных животных. Сделан вывод о необходимости детальных исследований влияния добавок NКГ на продуктивно-хозяйственные признаки и физиолого-биохимические показатели у жвачных животных, выращиваемых в условиях, характерных для нашей страны,
В последние годы выявлен ряд новых функций незаменимых аминокислот с алифатическими разветвлёнными цепями (АРЦ) при различных состояниях организма у животных и человека. Эти аминокислоты участвуют в регуляции метаболизма не только белков, но также липидов и углеводов, поддерживают здоровье молочных желез и кишечника, повышают качество молока и помогают в ранней имплантации и развитии эмбрионов. АРЦ (особенно лейцин) повышают синтез белков, и в настоящее время они рассматриваются как кормовые добавки для улучшения мясной продуктивности и качества мяса при выращивании и откорме свиней. Основные разделы обзора: метаболические функции лейцина, изолейцина и валина; метаболизм АРЦ; функции АРЦ как сигнальных молекул; значение АРЦ в питании животных. Новые аспекты метаболических и регуляторных функций АРЦ включают в себя ряд закономерностей: 1) недостаточный или чрезмерный уровень их в рационе усиливает липолиз; 2) эти аминокислоты, особенно изолейцин, играют важную роль в утилизации глюкозы за счет активации транспортёров глюкозы в кишечнике и мышцах; 3) эти аминокислоты усиливают развитие кишечника, транспорт аминокислот в кишечнике и производство муцина; 4) лейцин, изолейцин и валин участвуют в регуляции врождённых и адаптивных иммунных ответов. В ближайшей перспективе использование высокопроизводительной функциональной геномики, метаболомики и протеомики позволит в большей мере раскрыть функции АРЦ в экспрессии генов, синтезе белков и регуляции метаболизма.
Статистика статьи
Статистика просмотров за 2026 год.
Издательство
- Издательство
- ВИЖ
- Регион
- Россия, Подольск
- Почтовый адрес
- 142132, Россия, Московская область, Городской округ Подольск, поселок Дубровицы, дом 60
- Юр. адрес
- 142132, Россия, Московская область, Городской округ Подольск, поселок Дубровицы, дом 60
- ФИО
- Зиновьева Наталия Анатольевна (Директор)
- E-mail адрес
- priemnaya-vij@mail.ru
- Контактный телефон
- +7 (496) 7651163
- Сайт
- https://www.vij.ru