ДНК-технологии дают возможность реализовать принципиально новые подходы в селекции животных. Прежде всего это генетическая идентификация конкретных особей с последующим генетико-популяционным анализом, обеспечивающим получение количественных характеристик генофондов исследуемых популяций. Целью исследования было установить физиологические особенности роста и развития поросят разных генотипов по генам FUT1 и MUC4 при добавлении витаминной подкормки. Исследования выполняли с 2023 по 2024 гг. В работе использовали 88 поросят крупной белой породы в период от рождения до отъёма. Животные были разделены на 6 групп. Поросята в каждой группе взвешивались в первый день жизни, на 3 сутки, и затем через каждые 3 суток до возраста 21 день. Наибольшая живая масса была у поросят с генотипом АА/GG (FUT1/MUС4), потом следовали особи с генотипом АG/GС (FUT1/MUС4) кроме третьей группы, и наименьшая живая масса была у поросят с генотипом GG/СС (FUT1/ MUС4). В третьей группе животных максимальная живая масса была более 5860 г у генотипа АА/GG (FUT1/MUС4), что на 352,1 г больше (р<0,05) от генотипа GG/СС (FUT1/MUС4) и на 676,6 г больше (р<0,001) генотипа АG/GС (FUT1/MUС4). В четвертой группе поросят максимальная живая масса была более 5710 г у генотипа АА/GG (FUT1/MUС4), что на 681,53 г больше (р<0,05) от генотипа GG/СС (FUT1/MUС4) и на 153 г больше генотипа АG/GС (FUT1/MUС4). Таким образом, полученные результаты указывают на то, что генотипирование поросят по генам FUT1 и MUС4 может быть использовано не только для определения устойчивости к кишечным инфекциям, но и для прогнозирования физиологических особенностей роста и развития на ранних стадиях онтогенеза.
Исследование посвящено анализу деятельности испытательного центра (ИЦ) государственного бюджетного учреждения «Республиканская ветеринарная лаборатория» Республики Татарстан и его роли в обеспечении биологической безопасности животноводства. Свою деятельность ИЦ осуществляет на основе Положения об ИЦ, в соответствии с требованиями регионального и федерального законодательства, а также международных стандартов. На основе систематического изучения документации, результатов опросов ветеринарных специалистов и статистического анализа установлено, что ИЦ выполняет ключевые функции: аккредитацию лаборатории, методическую поддержку районных ветеринарных лабораторий, контроль качества исследований, расширение областей аккредитации. В структуре ИЦ работают четыре специалиста: руководитель, заместитель руководителя, ветеринарный врач – метролог и ветеринарный врач – менеджер по качеству. Основные направления деятельности ИЦ включают организацию внутрилабораторного контроля, проведение межлабораторных сличительных испытаний, входной контроль реактивов и оборудования, а также подготовку протоколов испытаний. Статистические данные за 2021-2024 годы показывают значительный рост бактериологических (до 147,6%), токсикологических (до 265,8%) и паразитологических (до 406,1%) исследований. Особое внимание уделяется исследованиям особо опасных заболеваний животных – бешенство, бруцеллез, туберкулез, сибирская язва, африканская чума свиней. Установлено, что ИЦ постоянно взаимодействует с заказчиками исследований – крупными агрохолдингами республики и личными подсобными хозяйствами граждан. Такое взаимодействие способствует повышению достоверности проведённых лабораторных исследований. Результаты подтверждают, что деятельность ИЦ на прямую влияет на биологическою безопасность в животноводстве, предотвращая распространение особо опасных болезней животных и тем самым снижая экономические потери в республике. Данное исследование имеет практическую ценность для совершенствования организации работы ветеринарных лабораторий и разработки мер по повышению качества ветеринарного обслуживания.
В работе представлены результаты трансректального ультразвукового исследования и лечения посткоитального эндометрита у кобыл американской рысистой породы. Целью исследования являлось изучение в сравнительном аспекте двух схем лечения посткоитального эндометрита у кобыл американской рысистой породы в условиях ООО «Поворот ВП». Результативность лечения отслеживалась с помощью повторной комплексной репродуктивной оценки, которая включала в себя трансректальное УЗИ, вагиноскопию, мануальное исследование влагалища и исследование гематологических показателей крови. При возникновении посткоитального эндометрита необходимо назначать следующую схему лечения: Лаваж матки раствором натрия хлорида 0,9% 3 л + гентамицина сульфат 4% 4 мл на каждый литр натрия хлорида. После введения в полость матки 3 л раствора вводится гормональный препарат Окситоцин 10МЕ 2,5 мл внутривенно. Далее повторение введения Окситоцина с интервалом 5 ч внутримышечно, комбинированный препарат Гамавит 1 мл на 1 кг раз в 48 часов внутримышечно. Применение схемы лечения с использованием гентамицина сульфата у кобыл опытной группы даёт наилучший результат, поскольку в контрольной группе стали жеребыми 2 кобылы из 3 (66,67%), а в опытной группе 3 кобылы из 3 (100%). Применение предложенной схемы лечения способствовало нормализации гематологических показателей и выздоровлению животных: уменьшение содержания нейтрофилов после лечения говорит о завершении нейтрофильной фазы борьбы с воспалительным процессом, повышение моноцитов является маркером завершения воспалительного процесса и начала периода восстановления организма.
Цель исследований – отобрать высокоиммуногенные штаммы ротавируса свиней. В качестве вируссодержащего материала использованы образцы патоматериала от павших поросят до 10-дневного возраста из неблагополучных по ротавирусной болезни свиней хозяйств Республик Башкортостан и Татарстан. Для выделения возбудителя использовали перевиваемые линии культур клеток РК-15 и SPEV. С этой целью осуществляли слепые пассажи суспензий патологического материала и вышеуказанных культур клеток. За период исследований было проведено 7 пассажей. С целью изучения биологических свойств, полученных изолятов, приведены исследования по оценке одного из важнейших биологических свойств вируса-цитопатического действия на поражаемые им животные клетки. Для этого в качестве биологической модели использовали культуры клеток (PK-15 и SPEV). Установлено, что в 6 из 32 отобранных образцов из тканей легких, селезенки и кишечника регистрировалось цитопатическое действие, которое было более выражено через 48-96 часов в 3 пассаже в виде округления и деструкции клеток, вакуолизации и грануляции цитоплазмы. После 7 пассажа клетки РК-15 и SPEV теряли способность удерживаться на стекле и в поддерживающей среде находились во взвешенном состоянии. Цитопатическое действие было более выражено при выделении вируса из тканей кишечника. Вирусная суспензия была заморожена при температуре – 60℃. Наличие рибонуклеиновой кислоты ротавируса подтверждено в полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией в реальном времени и иммуноферментном анализе.
На базе ООО Научно-производственная фирма «Исследовательский центр», в р. п. Кольцово, НСО и лаборатории кафедры фармакологии и общей патологии факультета ветеринарной медицины Новосибирского ГАУ были проведены научно-практические исследования в области влияния препарата «Ветом-1» и «Ветом-2» на показатели минерального обмена гусей. Изучение биохимических показателей в сыворотке крови гусей проводилась с помощью биохимического анализатора открытого типа iMagic-V7 (версия для ветеринарии), производитель Shenzhen iCubio Biomedical Technology Co., Ltd. Гуси были разделены на 7 опытных групп и 1 контрольную (по 10 голов в каждой группе). Опытные группы принимали препараты с комбикормом в дозах - 50 и 75 мг/кг по разным схемам в течение 15, 30 или 90 суток. После применения препаратов у гусей всех опытных групп были взяты пробы крови на биохимическое исследование. При определении межгрупповых различий пользовались критерием Краскела-Уоллиса, в качестве альтернативного непараметрического аналога критерия Фишера, в рамках однофакторного дисперсионного анализа при сравнении 3-х и более независимых групп. В сыворотке крови определяли кальций, хлориды и сывороточное железо. Препараты не оказали выраженного влияния на уровень кальция (концентрация после применения осталась в пределах физиологической нормы). Уровень хлоридов после применения был снижен, так на 90-е сутки эксперимента в опытных группах № 2, 5, 7 уровень хлоридов снизился на 8,0-10,2% по сравнению с контрольной группой. Концентрация сывороточного железа в опытных группах № 1, 3, 5, 7 снизилась в сравнении с контрольной группой. Наибольший эффект применения препарата отмечался при длительном применении (90-е суток). Препараты в указанных дозах не обладали токсическим эффектом.
В статье представлены результаты исследований по изучению влияния длительного обезвоживания и пищевого хлорида натрия на уровень аргинин-вазотоцина, пролактина, альдостерона и кортикостерона в крови у уток. Исследование проводили на птицах двух групп: контрольной (низкосолевой рацион + вода) и опытной (высокосолевой рацион + 0,5% раствор хлорида натрия). После девяти суток адаптации к рациону были установлены достоверные различия между группами по осмоляльности плазмы, концентрациям натрия и хлора, которые соответствовали уровню потребления хлорида натрия. Длительное обезвоживание вызвало прогрессирующее увеличение осмоляльности плазмы и концентраций натрия и хлора во всех группах, причем у птиц опытной группы эти показатели были достоверно выше. Концентрация калия оставалась относительно стабильной в группе с высоким потреблением натрия в период дегидратации. Исследование выявило значительное повышение уровня аргинин-вазотоцина, который демонстрировал прямую зависимость от уровня потребления хлорида натрия и сильную положительную корреляцию с осмоляльностью плазмы (r=0,958-0,987). Однако при обезвоживании секреция аргинин-вазотоцина достигала плато, несмотря на продолжающийся рост осмоляльности. Уровень пролактина достоверно повышался, демонстрируя тесную корреляцию с осмоляльностью плазмы (r=0,911-0,995) и концентрацией аргинин-вазотоцина (r=0,932-0,957). В отличие от этих гормонов, концентрация альдостерона значительно снижалась на фоне высокого потребления хлорида натрия и демонстрировала слабую отрицательную корреляцию с осмоляльностью и электролитами. Концентрация кортикостерона закономерно увеличивалась в ответ на дегидратацию. Полученные данные свидетельствуют о комплексных изменениях в осморегуляции и гормональном статусе уток при длительном обезвоживании и различном уровне потребления хлорида натрия.
Цирковирусные инфекции свиней (ЦВИС), вызываемые преимущественно цирковирусом свиней 2-го типа (ЦВС-2), представляют собой одну из наиболее значимых проблем в мировом свиноводстве. Ключевым инструментом контроля и профилактики ЦВИС является вакцинация. Рекомбинантные аналоги капсидного белка (rCap) цирковируса свиней 2-го типа (ЦВС-2) являются ключевыми компонентами современных диагностических тест-систем и субъединичных вакцин. Стабильность его антигенной активности - критический параметр, определяющий эффективность и воспроизводимость функционального продукта. Целью настоящего исследования явилась разработка и апробация иммуноферментной тест-системы для межоперационного контроля специфической активности белка rCap. Для получения рекомбинантных аналогов капсидного белка ЦВС-2 использовали ранее сконструированные рекомбинантный штамм-продуцент E. coli BL21(DE3)pLysS-ORF2 (для прокариотического аналога) и стабильно экспрессирующую клеточную линию яичников китайского хомячка CHO-K1/PCV-ORF2 (для эукариотического аналога), очистку белков проводили по ранее разработанным протоколам. Для сенсибилизации твердой фазы (полистироловых планшетов) использовали хроматографически очищенный IgG, выделенный из пула сывороток серопозитивных к ЦВС-2 свиней; специфический пероксидазный конъюгат получали перйодатным методом. В результате исследований получен стабильный пероксидазный конъюгат с плотностью мечения 1,5:1. Разработанная тест-система позволила провести полуколичественный анализ рекомбинантного сырья, демонстрируя хорошую воспроизводимость (коэффициент вариации<7%). Установлено, что тест-система является универсальной и позволяет оценивать активность вариантов rCap, полученных как в прокариотических, так и в эукариотических системах экспрессии, корректно распознавая их антигенные детерминанты. Таким образом, внедрение метода полуколичественного ИФА в производственный цикл позволит стандартизировать процесс межоперационного контроля качества биомассы, полученной при помощи технологий рекомбинантных ДНК, и гарантировать стабильные антигенные характеристики вакцинных и диагностических препаратов.
Наночастицы находят все большее применение в качестве, как компонентов, так и основных действующих веществ лекарственных средств и кормовых добавок, а особое место занимают наночастицы элементов, которые необходимы для жизнедеятельности живых организмов. Селен — это незаменимый микроэлемент, который участвует в различных процессах живых организмов, что подтверждается, как широким спектром гормонов и ферментов в состав которых он входит, так и научных статей, подтверждающих широкий спектр биологической активности и возможностей применения в повседневной ветеринарной практике. Однако в мире в большинстве используют соли селенистой и селеновой кислоты, в частности селенит натрия, который обладает высокой токсичностью, осложняет его использование и не позволяет часто в полной мере быстро восполнить дефицит данного микроэлемента, что в условиях высокой интенсификации промышленного животноводства повышает издержки и, как следствие, себестоимость. В данной работе рассмотрен новый метод синтеза наночастиц с использованием в качестве поставщика селена дихлордиацетофенонилселенида и в качестве стабилизирующего компонента ТВИН-80, который позволил получать наночастицы селена с низкой себестоимостью размером 3-16 нм, что позволяет предполагать высокую усвояемость данных частиц, а растворимость в воде и высокие показатели дзета потенциала позволяют создавать стабильные коллоидные растворы, которые наиболее удобно применять, как перорально при выпаивании, так и инъекционно. Для впервые синтезированных наночастиц были проведены исследования по определению острой токсичности и местно-раздражающего действия, что позволяет вместе с анализом литературных данных говорить о высокой актуальности дальнейших исследований в области применения их в качестве одного или единственного действующего вещества в ветеринарных препаратах и/или кормовых добавках для животных и птиц.
Реферат. Биопленки представляют собой организованные сообщества микроорганизмов. Существование в такой форме опосредует их повышенную устойчивость к антибиотикам, дезинфектантам, иммунной системе. Стандартный метод количественной оценки способности бактерий продуцировать биопленку, включающий определение оптической плотности биомассы в микротитровальном планшете, основан на окрашивании биопленки кристаллическим фиолетовым. Использование данного красителя имеет ряд ограничений, среди которых вариабельность экстракции и требования к технике безопасности. Цель исследования – модифицировать методику оценки биопленкообразующей способности микроорганизмов путем применения сафранина в качестве альтернативного индикаторного красителя и провести сравнительный анализ результатов с классическим методом. Исследование выполнено на клинических изолятах Escherichia coli (n=5) и Staphylococcus aureus (n=5), а также эталонных контрольных штаммах. Определение способности культур к биопленкообразованию проводили количественным методом определения этого показателя в микротитровальных планшетах. В рамках методики осуществляли параллельное сравнение получаемых показателей с использованием сафранина и классическим методом окрашивания кристаллическим фиолетовым, для этого каждый эксперимент выполняли в парных независимых планшетах. Окрашивание сафранином обеспечивало систематически более высокие значения оптической плотности (средний прирост составил 0,09; 10,2%), что было статистически значимо (t=5,16; p=0,00059). Между методами выявлена высокая положительная корреляция (r=0,96; p<0,001). В 90% случаев классификация степени адгезии оставалась согласованной, при этом сафранин продемонстрировал лучшую воспроизводимость для большинства штаммов. Полученные результаты подтверждают перспективность сафранина как альтернативного красителя для количественной оценки биопленок. Модифицированный метод может быть внедрен в рутинные лабораторные исследования после валидации и стандартизации, а также использоваться в скрининге антимикробных и антибиопленочных препаратов.