Гидрогели на основе полисахаридов находят широкое применение, прежде всего, в области пищевых технологий и биомедицине. Для увеличения механической прочности и эластичности биоматериалов на основе полисахаридных гелей проводят сшивку биополимеров с образованием прочной сетчатой структуры. Использование биологически активных фенолов в сочетании с оксидазами обеспечивает не только получение кросс-сшитых биополимеров, но и позволяет создавать функциональные материалы с антиоксидантной активностью. Феруловая кислота является представителем оксикоричных кислот - фенольных компонентов растений. При окислении феруловой кислоты лакказами образуется промежуточный феноксильный радикал, который способен участвовать как в реакциях с функциональными группами биополимеров, так и формировать олиго- и полимерные структуры, что обеспечивает кросс-сшивку полисахаридов при участии этих соединений. В обзоре рассматриваются различные аспекты катализируемого лакказой получения гидрогелей на основе полисахаридов и феруловой кислоты. Мы кратко описали роль феруловой кислоты в природе и лакказ-катализируемых реакциях кросс-сшивки биополимеров. Предполагается, что данный обзор предоставит читателю подробную информацию о различных стратегиях реакций при участии лакказ и природных фенолов (на примере феруловой кислоты), которые могут быть применены для получения различных биоматериалов с индивидуальными свойствами.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
В первой части обзора [1] суммирована информация о разнообразии лакказ, их биологических функциях, природных субстратах, особенностях структурной организации, механизме биокаталитического окисления фенольных субстратов. Во второй части обзора рассматриваются различные аспекты, связанные с ролью лакказ в превращениях феруловой кислоты в природе, и применение этих реакций для получения полисахаридных гидрогелей с повышенной механической прочностью, антиокидантной и антимикробной активностью для разработки материалов, прежде всего, для пищевых и биомедицинских технологий.
Если у вас возникли вопросы или появились предложения по содержанию статьи, пожалуйста, направляйте их в рамках данной темы.
Список литературы
1. Дмитрук А. Р., Понаморева О. Н. Лакказы как катализаторы реакций кросссочетания: I. Природное разнообразие и биологическая роль как основа для их применения // Известия Тульского государственного университета. Естественные науки. 2024. № 4. С. 13-28. EDN: VTSJVM
2. Swatek A., Staszczak M. Effect of ferulic acid, a phenolic inducer of fungal laccase, on 26S proteasome activities in vitro.International Journal of Molecular Sciences. 2020. Т. 21. № 7. С. 2463. EDN: SNKCPI
3. Anticancer potential of Ferula assa-foetida and its constituents, a powerful plant for cancer therapy M.A.G. Sirizi, M. Iranshahi, M. Iranshahy [et al.] // World Journal of Biological Chemistry. 2023. Т. 14. № 2. С. 28.
4. Tzin V., Galili G. The biosynthetic pathways for shikimate and aromatic amino acids in Arabidopsis thaliana // The Arabidopsis Book. - 2010. T. 8. C. e0132.
5. Biotechnological production and applications of microbial phenylalanine ammonia lyase: a recent review / J.D. Cui, J.Q. Qiu, X.W. Fan [et al.] // Critical Reviews in Biotechnology. 2014. Т. 34. №. 3. С. 258-268.
6. Biosynthesis and metabolic actions of simple phenolic acids in plants / R. Marchiosi, M. dos Santos, G. Constantin [et al.] // Phytochemistry Reviews. 2020. Т. 19. С. 865906.
7. The antioxidant properties, metabolism, application and mechanism of ferulic acid in medicine, food, cosmetics, livestock and poultry / M. Zheng, Y. Liu, G. Zhang [et al.] // Antioxidants. 2024. Т. 13. № 7. С. 853. EDN: HWVDIW
8. Kim J.K., Park S.U. A recent overview on the biological and pharmacological activities of ferulic acid // EXCLI Journal. 2019. Т. 18. С. 132.
9. Boz H. Ferulic Acid in Cereals - a Review // Czech Journal of Food Sciences. 2015. Т. 33. №. 1.
10. New and potential properties, characteristics, and analytical methods of ferulic acid: A review / D.C. Marcato, C.M. Spagnol, H.R.N. Salgado [et al.] // Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences. 2022. Т. 58. С. e18747. EDN: PMITHM
11. Theoretical study of radical inactivation, LOX inhibition, and iron chelation: The role of ferulic acid in skin protection against UVA induced oxidative stress / Ana Amić, Jasmina M. Dimitrić Marković, Zoran Marković [et al.] // Antioxidants. 2021. Т. 10. № 8. С. 1303.
12. Batista R. Uses and potential applications of ferulic acid // Ferulic Acid: Antioxidant Properties, Uses, and Potential Health Benefits. 2014. С. 39-70. EDN: WUXYOV
13. Kumar N., Pruthi V. “Potential applications of ferulic acid from natural sources” // Biotechnology Reports. 2014. Т. 4. С. 86-93.
14. Therapeutic potential of ferulic acid in Alzheimer’s disease / Turkez H., Arslan M. E., Barboza J. N. // Current Drug Development. 2022. Т. 19. №. 8. С. 860-873.
15. Phenolic metabolites as therapeutic in inflammation and neoplasms: Molecular pathways explaining their efficacy / Liu W., Ma H., Weng X. [et al.] // Pharmacological Research. 2023. Т. 193. С. 106812. EDN: UEVVFV
16. Antioxidant properties of ferulic acid and its possible application / K. Zduńska, A. Dana, A. Kolodziejczak [et al.] // Skin Pharmacology and Physiology. 2018. Т. 31. №. 6. С. 332-336.
17. Raj N. D., Singh D. A critical appraisal on ferulic acid: Biological profile, biopharmaceutical challenges and nano formulations // Health Sciences Review. 2022. Т. 5. С. 100063. EDN: RJCBSZ
18. Laccase-catalyzed dimerization of ferulic acid amplifies antioxidant activity / O.E. Adelakun, T. Kudanga, I.R. Green [et al.] // Molecules. 2012. Т. 17. № 11. С. 13403-13418.
19. Characteristics and biological properties of ferulic acid / Dędek K., Pukło M., Wiczkowski A. [et al.] // Biotechnology and Food Science. 2019. Т. 83. № 1.
20. Grafting of laccase-catalysed oxidation of butyl paraben and p-coumaric acid onto chitosan to improve its antioxidant and antibacterial activities / Yu C., Liu X., Pei J., Wang Y. // Reactive and Functional Polymers. 2020. Т. 149. С. 104511. EDN: YDXZFM
21. Current progress in the utilization of native and modified legume proteins as emulsifiers and encapsulants-A review / Sharif H. R., Williams P. A., Sharif M. K. [et al.] // Food Hydrocolloids. 2018. Т. 82. С. 364-377.
22. Preparation and comprehensive characterization of chitosan-based films enhanced with ferulic acid / Zasada L., Chmielniak D., Gwizdalska K. [et al.] // Engineering of Biomaterials. 2024. Т. 172. С. 08.
23. Caban M., Lewandowska U. Encapsulation of polyphenolic compounds based on hemicelluloses to enhance treatment of inflammatory bowel diseases and colorectal cancer // Molecules. 2023. Т. 28. № 10. С. 4189. EDN: SMKDVL
24. Jabeen N., Atif M. Polysaccharides based biopolymers for biomedical applications: A review // Polymers for Advanced Technologies. 2024. Т. 35. № 1. С. e6203. EDN: WTYUJT
25. Chemicals from hemicelluloses: A review / Peng F., Ren J., Sun R. // Sustainable Production of Fuels, Chemicals, and Fibers from Forest Biomass. 2011. С. 219-259. EDN: WRQMEN
26. Sequential fractionation of feruloylated hemicelluloses and oligosaccharides from wheat bran using subcritical water and xylanolytic enzymes / Ruthes A. C., Martínez-Abad A., Tan H. T. [et al.] // Green Chemistry. 2017. Т. 19. № 8. С. 1919-1931.
27. Stompor-Gorący M., Machaczka M. Recent advances in biological activity, new formulations and prodrugs of ferulic acid // International Journal of Molecular Sciences. 2021. Т. 22 № 23 С. 12889. EDN: SJEZFN
28. Bounegru A. V., Apetrei C. Laccase and tyrosinase biosensors used in the determination of hydroxycinnamic acids // International Journal of Molecular Sciences. 2021. Т. 22. № 9. С. 4811. EDN: QGNTUC
29. Laccase: Microbial sources, production, purification, and potential biotechnological applications / Shraddha, Shekher R., Sehgal S., Kamthania M. [et al.] // Enzyme Research. 2011. Т. 2011. С. 217861.
30. Autotoxicity mechanism of Oryza sativa: transcriptome response in rice roots exposed to ferulic acid / Chi W. C., Chen C. H., Tseng Y. C. [et al.] // BMC Genomics. 2013. Т. 14. С. 1-18. EDN: NBJEXG
31. OPDA and ABA accumulation in Pb-stressed Zygophyllum fabago can be primed by salicylic acid and coincides with organ-specific differences in accumulation of phenolics / López-Orenes A., Hernández J. M., Calderón M. J. [et al.] // Plant Physiology and Biochemistry. 2020. Т. 154. С. 612-621. EDN: IBDDMU
32. Fungal laccases and their applications in bioremediation / Viswanath B., Rajesh Babu M. V., Pavani A. J. [et al.] // Enzyme Research. 2014. Т. 2014. № 1. С. 163242.
33. Novel cyclized derivatives of ferulic acid as potential antiviral agents through activation of photosynthesis / Gan X., Liu Y., Wang J. [et al.] // Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2023. Т. 71. № 3. С. 1369-1380. EDN: HQNCJB
34. Xie X. G., Dai C. C. Degradation of a model pollutant ferulic acid by the endophytic fungus Phomopsis liquidambari // Bioresource Technology. 2015. Т. 181. С. 303-310.
35. Investigation of Phytochemical Characteristics of Quinoa in an Intercropping Production System with Maize in Response to Mycorrhiza and Phosphorus Fertilizer / Rostami T., Shakiba M. R., Sepaskhah A. R. [et al.] // Journal of Agricultural Science and Technology. 2024.
36. Metabolic engineering of plant secondary metabolites: prospects and its technological challenges / Mipeshwaree Devi A., Devi S. S., Devi N. S. [et al.] // Frontiers in Plant Science. 2023. Т. 14. С. 1171154. EDN: JGKEJQ
37. Oxidation of ferulic acid by laccase: Identification of the products and inhibitory effects of some dipeptides / Carunchio F., Crescenzi C., Girelli A. M. [et al.] // Talanta. 2001. Т. 55. № 4. С. 681-691. EDN: AQVDLD
38. Model Compound Studies of the β-O-4 Linkage in Lignin: Absolute Rate Expressions for β-Scission of Phenoxyl Radical from 1-Phenyl-2-phenoxyethanol-1-yl Radical / P. H. Kandanarachchi, T. Autrey, J. A. Franz // The Journal of Organic Chemistry. 2002. Т. 67. С. 7937-7945.
39. Наночастицы на основе полиферуловых и полигентизиновых кислот как новые носители противоопухолевых препаратов / И. В. Смирнов, А. Б. Иванов, Е. С. Петрова [et al.] // 2022.
40. Recent advances of pectin-based biomedical application: Potential of marine pectin / M. S. Kim, P. Chandika, W. K. Jung // Journal of Marine Bioscience and Biotechnology. 2021. Т. 13. №. 1. С. 28-47.
41. Biological activity and pharmacological application of pectic polysaccharides: A review / S. T. Minzanova, V. F. Mironov, D. M. Arkhipova // Polymers. 2018. Т. 10. № 12. С. 1407. EDN: WUCGCP
42. Chitosan-based blends for biomedical applications / F. Seidi, M. K. Yazdi, M. Jouyandeh // International Journal of Biological Macromolecules. 2021. Т. 183. С. 1818-1850. EDN: JTLDPR
43. Samanta A., Tudu M. Natural polysaccharides: Chemical properties and application in pharmaceutical formulations // European Polymer Journal. 2023. Т. 184. С. 111801.
44. Improving the Properties of Polysaccharide-Based Films by Incorporation of Polyphenols Through Free Radical Grafting: A Review / K. H. Ozuna-Valencia, F. Rodríguez-Félix, F. M. Goycoolea // Polysaccharides. 2024. Т. 5. №. 4. С. 672-697. EDN: TIQLSO
45. Fabrication and biomedical applications of Arabinoxylan, Pectin, Chitosan, soy protein, and silk fibroin hydrogels via laccase-Ferulic acid redox chemistry / B. Robert, D. Chenthamara, S. Subramaniam // International Journal of Biological Macromolecules. 2022. Т. 201. С. 539-556. EDN: QHUPWU
46. Wellington, K. Application of laccases in organic synthesis: a review // Green Chemistry. 2012. С. 167-212.
47. Plant cell wall composition and enzymatic deconstruction / T. R. Mota, D. M. Oliveira, R. Marchiosi // AIMS Bioengineering. 2018. Т. 5. №. 1.
48. Microbial and enzymatic methods for phenolic production / J. A. C. Silva, M. Thomas, C. Wallace // High Performance Plant Phenolics. 2024. С. 59-94.
49. Laccase-catalyzed functionalization of chitosan by ferulic acid and ethyl ferulate: Structure-activity relationships / A. Aljawish, I. Chevalot, J. Jasniewski [et al.] // Carbohydrate Polymers. 2014. Т. 99. С. 241-250.
50. Structural and functional characterization of laccase-induced β-lactoglobulin-ferulic acid-chitosan ternary conjugates / D. Wang, P. Lv, L. Zhang [et al.] // Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2019. Т. 67. №. 43. С. 12054-12060. EDN: UQCEUV
51. Last advances in synthesis of added value compounds and materials by laccase-mediated biocatalysis / A. Piscitelli, A. Amore, V. Faraco // Current Organic Chemistry. 2012. Т. 16. №. 21. С. 2508-2524. EDN: RLMSVF
52. Mohit E., Tabarzad M. Biomedical and pharmaceutical-related applications of laccases // Current Protein and Peptide Science. 2020. Т. 21. № 1. С. 67-78. EDN: SVYAZB
53. Applications of oxidases in modification of food molecules and colloidal systems: Laccase, peroxidase and tyrosinase / X. Liang, S. Li, D. J. McClements [et al.] // Trends in Food Science & Technology. 2020. Т. 103. С. 78-93. EDN: NYEFNF
54. Laccase-assisted surface functionalization of lignocellulosics / S. Kalia, K. Thakur, A. Kumar [et al.] // Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. 2014. Т. 102. С. 48-58.
55. Computational and experimental validation of antioxidant properties of synthesized bioactive ferulic acid derivatives / O. S. Adeyemi, O. Atolani, P. Banerjee [et al.] // International Journal of Food Properties. 2018. Т. 21. № 1. С. 86-98.
56. Laccase-mediated synthesis of bioactive natural products and their analogues / N. Cardullo, V. Muccilli, C. Tringali // RSC Chemical Biology. 2022. Т. 3. №. 6. С. 614-647. EDN: CBZNDX
57. Using tannins as active compounds to develop antioxidant and antimicrobial chitosan and cellulose based films / A. Cano, A. Cháfer, A. Chiralt [et al.] // Carbohydrate Polymer Technologies and Applications. 2021. Т. 2. С. 100156. EDN: PRUPFS
58. Laccase immobilization using polymeric supports for wastewater treatment: a critical review / Iqhrammullah M., Fahrina A., Chiari W. [et al.] // Macromolecular Chemistry and Physics. 2023. Т. 224. № 9. С. 2200461. EDN: VENTQS
59. Marine biomaterials in biomedical nano/micro-systems / Wang Y., Chen L., Wang Y. [et al.] // Journal of Nanobiotechnology. 2023. Т. 21. № 1. С. 408. EDN: RLNIQZ
60. Synergistic effects of laccase and pectin on the color changes and functional properties of meat analogs containing beet red pigment / K. Sakai, Y. Sato, T. Asano [et al.] // Scientific Reports. 2022. Т. 12. № 1. С. 1168. EDN: UHCQTH
61. “Kinetics of enzyme catalyzed cross-linking of feruloylated oligosaccharide” / D. N. Zaidel, J. Holck, A. S. Meyer // Technical University of Denmark. 2011. Т. 59. С. 27.
62. Jung J. Laccase mediated conjugation and improved functional properties of sugar beet pectin and β-lactoglobulin // University of Georgia. 2011.
63. Laccases and tyrosinases in organic synthesis / L. Martínková, B. Křístková, V. Křen // International Journal of Molecular Sciences. 2022. Т. 23. № 7. С. 3462.
64. Chitosan hydrogel formation using laccase activated phenolics as cross-linkers / G. Tegl, E. G. Gorji, M. B. Fischer [et al.] // Carbohydrate Polymers. 2017. Т. 157. С. 175-185.
65. Improving the microstructural and rheological properties of frozen unfermented wheat dough with laccase and ferulic acid / N. He, Z. Pan, L. Li [et al.] // Foods. 2023. Т. 12. №. 14. С. 2772.2023. EDN: MLEKQM
66. How to enjoy laccases / C. Pezzella, L. Guarino, A. Piscitelli // Cellular and Molecular Life Sciences. 2015. Т. 72. № 5. С. 923-940. EDN: UPJZDR
67. Chitosan-based blends for biomedical applications / F. Seidi, M. K. Yazdi, M. Jouyandeh // International Journal of Biological Macromolecules. 2021. Т. 183. С. 1818-1850. EDN: JTLDPR
68. Recent advances in the conjugation approaches for enhancing the bioavailability of polyphenols / S. Sahraeian, A. Rashidinejad [et al.] // Food Hydrocolloids. 2024. Т. 146. С. 109221. EDN: DVQVEX
69. Development of a Multi-enzymatic Approach for the modification of biopolymers with ferulic acid / A. Giannakopoulou, G. Tsapara, A. N. Troganis [et al.] // Biomolecules. 2022. Т. 12. №. 7. С. 992. EDN: WVIGHQ
70. Grabska-Zielińska S., Kaczmarek-Szczepańska B. The Application of Phenolic Acids in The Obtainment of Packaging Materials Based on Polymers-A Review // Foods. 2023. Т. 12. № 6. С. 1343.
71. Structural studies and bioactivity of sodium alginate edible films fabricated through ferulic acid crosslinking mechanism / R.Aluru, B. A. Muniraj, J. Patel [et al.] // Journal of Food Engineering. 2021. Т. 301. С. 110566.
72. Khalid M. Y., Arif Z. U. Novel biopolymer-based sustainable composites for food packaging applications: A narrative review // Food Packaging and Shelf Life. 2022. Т. 33. С. 100892. EDN: WBKZXS
73. Ordóñez Lagos R. A. Use of ferulic and cinnamic acids to obtain active films based on starch and PLA for food packaging applications: дис. - Universitat Politècnica de València, 2022.
74. Seke F. “The effects of laccase and xanthan gum on the quality of gluten-free amadumbe bread”: дис. 2018.
75. Katsimpouras C., Christakopoulos P., Topakas E. Fermentation and enzymes // Food Engineering Handbook. 2014. С. 489.
76. Recent Advancements in Biotechnological Applications of Laccase as a Multifunctional Enzyme / Chaudhary S., Patel R., Sharma A. [et al.] // Journal of Pure & Applied Microbiology. 2022. Т. 16. № 3. EDN: KQGUTI
77. Innovative application of laccase enzyme in food packaging / M. A. Sani, H. Zhang, P. R. Williams [et al.] // Trends in Food Science & Technology. 2024. С. 104623.
78. Stevanović M., Filipović N. A review of recent developments in biopolymer nano-based drug delivery systems with antioxidative properties: Insights into the last five years // Pharmaceutics. 2024. Т. 16. № 5. С. 670.
79. Biological macromolecule-based hydrogels with antibacterial and antioxidant activities for wound dressing: A review / T. Zivari-Ghader, M. R. Rashidi, M. Mehrali // International Journal of Biological Macromolecules. 2024. С. 134578. EDN: BILZVT
80. Lewandowska K., Sionkowska A. Modification of collagen properties with ferulic acid // Materials. 2020. Т. 13. № 15. С. 3419.
81. Insights on some polysaccharide gel type materials and their structural peculiarities / I. A. Duceac, M. C. Stanciu, M. Nechifor [et al.] // Gels. 2022. Т. 8. № 12. С. 771. EDN: BPVLJP
82. Controlled release of tyrosol and ferulic acid encapsulated in chitosan-gelatin films after electron beam irradiation / N. Benbettaïeb, A. Assifaoui, T. Karbowiak [et al.] // Radiation Physics and Chemistry. 2016. Т. 120. С. 54-61.
83. Biopolymer-based solutions for enhanced safety and quality assurance: A review / B. Dey, M. Das, R. Ghosh [et al.] // Food Research International. 2024. С. 114723. EDN: FUNBMG
Выпуск
Другие статьи выпуска
Приведены результаты изучения флоры антпропогенно нарушенной территории накопителя жидких токсичных промышленных отходов «Мазутное озеро, расположенного на участке заброшенных карьеров Молотовского месторождения глины, расположенного в Самарской области, г. Самара, Кировский внутригородской район в 1 км от пос. Зубчаниновка, с западной стороны Орлова оврага, в 1,5 км от р. Самара. В результате инвентаризации флоры территории выявлено 128 видов высших сосудистых растений. Проведен комплексный экологический анализ флоры включающий таксономический, биоморфный, экоценотический, фитоценотический виды анализа. Проведенный анализ позволил установить зональную приуроченность флоры, особенности почвы территории, а также существенную нестабильность условий, свидетельствующих о высокой степени антропогенной нарушенности территории.
Рассмотрены изотермы удельной и молярной электропроводности растворов кислот и их смесей при концентрациях меньше 2 моль/м3. Показано увеличение ошибки измерения электропроводности при переходе от одноосновной кислоты к многоосновной. Доказана линейная зависимость удельной электропроводности от концентрации каждой кислоты в бинарной смеси. Предложены математические функции, описывающие совокупность данных по электропроводности при разных концентрациях каждой кислоты. Установлена уникальная возможность определения концентрации каждой кислоты в бинарной смеси по измеренному значению электропроводности.
Приведены результаты изучения флоры долинно-водосборной геосистемы реки Безенчук (Низменное Заволжье, Самарская область). Исследования растительного покрова провдились в 2019-2024 гг. На территории геосистемы зарегистрирован 281 вид сосудистых растений. Ведущими семействами являются Астровые, Бобовые, Злаки и Розоцветные. Флора нижнего течения Безенчука представлена 213, среднего течения - 150, верхнего течения - 182 видами растений. Сравнительный анализ флоры разных участков указывает на зависимость флоистических показателей от степени увлажненности территории, преобладающих растительных группировок, антропогенного влияния. Данные сравнительного анализа флористических параметров могут быть использованы для определения экологического состояния природно-территориального комплекса. В настоящее время геосистема характеризуется достаточной устойчивостью к антропогенному воздействию, однако в среднем течении необходимо сократить выпас, а в среднем и нижнем течении регламентировать рекреацию.
Рассмотрено влияние концентраций окислителя пероксида водорода, катализаторов и температуры на фотокаталитическое окисление полистирола. Установлено, что после 4-х часового фотохимического окисления полистирола пероксидом водорода в присутствие изученных катализаторов происходит его частичное разрушение полимера. Массовый процент потери колеблется от 2,3 % до 7,2 %. CHN-анализ полистирола после фотокаталитического окисления пероксидом водорода в присутствие катализатора ZnO показал, что наблюдается уменьшение массового содержания углерода при всех условиях проведения процесса. Изучен состав жидкой фазы после 4-х часового фотокаталитического окисления пероксидом водорода полистирола методом ИК-спектроскопии.
Выполнена функциональная аннотация генома штамма Pseudomonas putida BS3701. В аннотированном геноме штамма Pseudomonas putida BS3701 обнаружено две копии гена, кодирующего салицилат-1-монооксигеназу, одна копия расположена на хромосоме (NahU), вторая - плазмиде pBS1141 (NahG). В работе определяли биохимические характеристики рекомбинантного фермента салицилат-1-монооксигеназы NahG - продукта плазмидного гена. Константа Михаэлиса салицилатгидроксилазы NahG составила 18 мкмоль/л, максимальная активность фермента - 5,8 мкмоль/мин·мг белка. Фермент демонстрирует высокую каталитическую активность в реакциях с 4-замещенными салицилатами и гентизатом.
В работе рассмотрены основные этапы развития метода электрохимической эксфолиации графита. Проанализированы особенности образования графитовых интеркаляционных соединений с различными классами химических веществ. Систематизированы обзорные статьи, посвященные процессам электрохимической эксфолиации графита. Выявлены основные параметры электрохимической эксфолиации графита (природа и концентрация электролита, потенциал эксфолиации), влияющие на структуру и свойства оксида графена. Показано, что с ростом потенциала содержание всех типов кислородсодержащих групп в оксиде графена увеличивается. Использование кислотных электролитов приводит к преимущественному образованию карбоксильных групп. Повышение температуры при проведении электрохимической эксфолиации позволяет получить материал с повышенной электропроводностью.
Издательство
- Издательство
- ТулГУ
- Регион
- Россия, Тула
- Почтовый адрес
- 300012, Тульская область, г. Тула, проспект Ленина, д. 92
- Юр. адрес
- 300012, Тульская область, г. Тула, проспект Ленина, д. 92
- ФИО
- Кравченко Олег Александрович (Ректор)
- E-mail адрес
- info@tsu.tula.ru
- Контактный телефон
- +7 (487) 2352155
- Сайт
- https://tulsu.ru/