Адъюванты являются критическим компонентом большинства ветеринарных вакцин, обеспечивая усиление иммунного ответа организма на вакцинный антиген. Приблизительно 87 % коммерческих инактивированных вакцин для животных содержат в своем составе один тип адъюванта, наиболеераспространёнными из которых являются минеральные соли алюминия (48 %), масляные эмульсии (20 %) и сапонины. В настоящей работе систематизирован современный опыт применения пяти основных классов адъювантов: неорганических минеральных соединений, органических масляных композиций, растительных сапонинов, бактериальных производных и наноструктурированных материалов. Каждый класс обладает специфическими механизмами действия, влияющими на формирование гуморального и клеточного иммунитета у различных видов сельскохозяйственных животных. Однако применение адъювантов требует соблюдения баланса между иммуногенностью и реактогенностью. Традиционные адъюванты могут вызывать локальные реакции (гранулёмы, абсцессы) и системные эффекты (лихорадку, снижение продуктивности) особенно у чувствительных видов. Перспективные направления включают разработку биоразлагаемых наносистем, синтетических аналогов растительных сапонинов и комбинированных адъювантных систем, обеспечивающих повышенную специфичность к различным видам животных. Будущие адъюванты должны обеспечивать целенаправленную активацию требуемых компонентов иммунитета приминимизации побочных эффектов, что откроет новые возможности для профилактики и эрадикации опасных инфекционных заболеваний в животноводстве и снижению риска передачи зоонозов человеку.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Ветеринария
Адъюванты, используемые в ветеринарных вакцинах, представляют собой группу веществ, которые можно классифицировать по их химической природе. Исторически развитие адъювантов прошло путь от случайных наблюдений до целенаправленного конструирования молекул с задан‑ ными иммуностимулирующими свойствами [1].
Список литературы
1. O’Hagan D. T., van der Most R., Lodaya R. N. [et al]. “World in motion” - emulsion adjuvants rising to meet the pandemic challenges // NPJ Vaccines. - 2021. - T. 6, № 1. - C. 158. DOI: 10.1038/s41541-021-00418-0 EDN: PMGCDS
2. Zhang Q., Cheng J., Hou J. [et al]. Synthetic biology-inspired development of live attenuated influenza vaccines // NPJ Vaccines. - 2025. - T. 10, № 1. - C. 204. DOI: 10.1038/s41541-025-01255-1 EDN: ZAVXFL
3. Yao Y., Zhang Z., Yang Z. The combination of vaccines and adjuvants to prevent the occurrence of high incidence of infectious diseases in bovine // Front Vet Sci. - 2023. - T. 10. - C. 1243835. DOI: 10.3389/fvets.2023.1243835
4. Trambas I. A., Coughlan M. T., Tan S. M. Therapeutic Potential of Targeting Complement C5a Receptors in Diabetic Kidney Disease // Int J Mol Sci. - 2023. - T. 24, № 10. DOI: 10.3390/ijms24108758
5. Zhao T., Cai Y., Jiang Y. [et al]. Vaccine adjuvants: mechanisms and platforms // Signal Transduct Target Ther. - 2023. - T. 8, № 1. - C. 283. DOI: 10.1038/s41392-023-01557-7
6. Varela-Martinez E., Abendano N. [et al]. Molecular Signature of Aluminum Hydroxide Adjuvant in Ovine PBMCs by Integrated mRNA and microRNA Transcriptome Sequencing // Front Immunol. - 2018. - T. 9. - C. 2406. DOI: 10.3389/fimmu.2018.02406
7. Brewer K. D., Weir G. M., Dude I. [et al]. Unique depot formed by an oil based vaccine facilitates active antigen uptake and provides effective tumour control // J Biomed Sci. - 2018. - T. 25, № 1. - C. 7. DOI: 10.1186/s12929-018-0413-9
8. Chen K., Wang N., Zhang X. [et al]. Potentials of saponins-based adjuvants for nasal vaccines // Front Immunol. - 2023. - T. 14. - C. 1153042. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1153042 EDN: BPKTYT
9. Mata-Haro V., Cekic C., Martin M. [et al]. C. The vaccine adjuvant monophosphoryl lipid A as a TRIF-biased agonist of TLR4 // Science. - 2007. - T. 316, № 5831. - C. 1628-32. DOI: 10.1126/science.1138963
10. HogenEsch H., O’Hagan D. T., Fox C. B. Optimizing the utilization of aluminum adjuvants in vaccines: you might just get what you want // NPJ Vaccines. - 2018. - T. 3. - C. 51. DOI: 10.1038/s41541-018-0089-x EDN: LVUFZI
11. Nooraei S., Sarkar Lotfabadi A., Akbarzadehmoallemkolaei M. [et al]. Immunogenicity of Different Types of Adjuvants and Nano-Adjuvants in Veterinary Vaccines: A Comprehensive Review // Vaccines (Basel). - 2023. - T. 11, № 2. DOI: 10.3390/vaccines11020453
12. HogenEsch H. Mechanism of Immunopotentiation and Safety of Aluminum Adjuvants // Frontiers in Immunology. - 2013. - T. Volume 3-2012. DOI: 10.3389/fimmu.2012.00406 EDN: RNOLUJ
13. Jensen F. C., Savary J. R., Diveley J. P. [et al]. Adjuvant activity of incomplete Freund’s adjuvant // Adv Drug Deliv Rev. - 1998. - T. 32, № 3. - C. 173-186. DOI: 10.1016/s0169-409x(98)00009-x
14. Huang Z., Gong H., Sun Q. [et al]. Research progress on emulsion vaccine adjuvants // Heliyon. - 2024. - T. 10, № 3. - C. e24662. DOI: 10.1016/j.heliyon.2024.e24662 EDN: JEHNCO
15. Heegaard P. M., Dedieu L., Johnson N. [et al]. Adjuvants and delivery systems in veterinary vaccinology: current state and future developments // Arch Virol. - 2011. - T. 156, № 2. - C. 183-202. DOI: 10.1007/s00705-010-0863-1 EDN: JWWNEA
16. Antipov A., Petrovsky N. One Health adjuvant selection for vaccines against zoonotic infections // Explor Med. - 2025. - T. 6. DOI: 10.37349/emed.2025.1001316
17. Vono M., Taccone M., Caccin P. [et al]. The adjuvant MF59 induces ATP release from muscle that potentiates response to vaccination // Proc Natl Acad Sci U S A. - 2013. - T. 110, № 52. - C. 21095-100. DOI: 10.1073/pnas.1319784110
18. Ko E. J., Kang S. M. Immunology and efficacy of MF59-adjuvanted vaccines // Hum Vaccin Immunother. - 2018. - T. 14, № 12. - C. 3041-3045. DOI: 10.1080/21645515.2018.1495301
19. Dalsgaard K., Jensen M. H., Sorensen K. J. Saponin adjuvants. IV. Evaluation of the adjuvant quil A in the vaccination of cattle against foot-and-mouth disease // Acta Vet Scand. - 1977. - T. 18, № 3. - C. 349-60. DOI: 10.1186/BF03548432
20. Ayele G., Getachew B., Bari F. D. [et al].Combined Adjuvant Formulations Enhanced an Immune Response of Trivalent Foot and Mouth Disease Vaccine in Cattle // Vet Med (Auckl). - 2023. - T. 14. - C. 47-62. DOI: 10.2147/vmrr.S397590
21. Cokcaliskan C., Turkoglu T., Uzunlu E. [et al]. Influence of vaccine potency and booster administration of foot-and-mouth disease vaccines on the antibody response in calves with maternal antibodies // J Vet Sci. - 2017. - T. 18, № S1. - C. 315-322. DOI: 10.4142/jvs.2017.18.S1.315
22. Petrovsky N.Comparative Safety of Vaccine Adjuvants: A Summary of Current Evidence and Future Needs // Drug Saf. - 2015. - T. 38, № 11. - C. 1059-74. DOI: 10.1007/s40264-015-0350-4
23. Asin J., Molin J., Perez M. [et al]. Granulomas Following Subcutaneous Injection With Aluminum Adjuvant-Containing Products in Sheep // Vet Pathol. - 2019. - T. 56, № 3. - C. 418-428. DOI: 10.1177/0300985818809142
24. Yeruham I., Yadin H., Haymovich M. [et al]. Adverse reactions to FMD vaccine // Vet Dermatol. - 2001. - T. 12, № 4. - C. 197-201. DOI: 10.1046/j.0959-4493.2001.00221.x
25. Fox C. B. Squalene emulsions for parenteral vaccine and drug delivery // Molecules. - 2009. - T. 14, № 9. - C. 3286-312. DOI: 10.3390/molecules14093286 EDN: NACTNR
26. Filipic B., Pantelic I., Nikolic I. [et al]. Nanoparticle-Based Adjuvants and Delivery Systems for Modern Vaccines // Vaccines (Basel). - 2023. - T. 11, № 7. DOI: 10.3390/vaccines11071172
27. Sparg S. G., Light M. E., van Staden J. Biological activities and distribution of plant saponins // J Ethnopharmacol. - 2004. - T. 94, № 2-3. - C. 219-43. DOI: 10.1016/j.jep.2004.05.016
28. Kensil C. R., Patel U., Lennick M., Marciani D. Separation and characterization of saponins with adjuvant activity from Quillaja saponaria Molina cortex // J Immunol. - 1991. - T. 146, № 2. - C. 431-7. doi.
29. Stertman L., Palm A. E., Zarnegar B. [et al]. The Matrix-M adjuvant: A critical component of vaccines for the 21(st) century // Hum Vaccin Immunother. - 2023. - T. 19, № 1. - C. 2189885. DOI: 10.1080/21645515.2023.2189885
30. Morais V S. N., Silveira F. Methods of saponin purification from Quillaja sp. for vaccine adjuvant production // Front. Nat. Produc. - 2025. - T. 3. - C. 1524624. DOI: 10.3389/fntpr.2024.1524624
31. Ho N. I., Huis In ‘t Veld L. G. M., Raaijmakers T. K. [et al]. Adjuvants Enhancing Cross-Presentation by Dendritic Cells: The Key to More Effective Vaccines? // Front Immunol. - 2018. - T. 9. - C. 2874. DOI: 10.3389/fimmu.2018.02874
32. Rajput Z. I., Hu S. H., Xiao C. W. [et al]. Adjuvant effects of saponins on animal immune responses // J Zhejiang Univ Sci B. - 2007. - T. 8, № 3. - C. 153-61. DOI: 10.1631/jzus.2007.B0153
33. Xiao C., Rajput Z. I., Hu S. Improvement of a commercial foot-and-mouth disease vaccine by supplement of Quil A // Vaccine. - 2007. - T. 25, № 25. - C. 4795-. DOI: 10.1016/j.vaccine.2007.04.027
34. Wang P. Natural and Synthetic Saponins as Vaccine Adjuvants // Vaccines (Basel). - 2021. - T. 9, № 3. DOI: 10.3390/vaccines9030222
35. Bottger S., Melzig M. F. The influence of saponins on cell membrane cholesterol // Bioorg Med Chem. - 2013. - T. 21, № 22. - C. 7118-24. DOI: 10.1016/j.bmc.2013.09.008
36. Huis In ‘t Veld L. G., Cornelissen L. A., van den Bogaard L. [et al]. Saponin-based adjuvant uptake and induction of antigen cross-presentation by CD11b+ dendritic cells and macrophages // NPJ Vaccines. - 2025. - T. 10, № 1. - C. 15. DOI: 10.1038/s41541-024-01056-y EDN: VWBJTS
37. Morais V., Suarez N., Cibulski S. [et al]. Leaf Saponins of Quillaja brasiliensis as Powerful Vaccine Adjuvants // Pharmaceutics. - 2025. - T. 17, № 8. DOI: 10.3390/pharmaceutics17080966 EDN: SXIOML
38. Bigaeva E., Doorn E., Liu H. [et al]. Meta-Analysis on Randomized Controlled Trials of Vaccines with QS-21 or ISCOMATRIX Adjuvant: Safety and Tolerability // PLoS One. - 2016. - T. 11, № 5. - C. e0154757. DOI: 10.1371/journal.pone.0154757
39. Martin L. B. B., Kikuchi S., Rejzek M. [et al].Complete biosynthesis of the potent vaccine adjuvant QS-21 // Nature Chemical Biology. - 2024. - T. 20, № 4. - C. 493-502. DOI: 10.1038/s41589-023-01538-5 EDN: OOQZSX
40. Vinay T. N., Park C. S., Kim H. Y. [et al]. Toxicity and dose determination of quillaja saponin, aluminum hydroxide and squalene in olive flounder (Paralichthys olivaceus) // Vet Immunol Immunopathol. - 2014. - T. 158, № 1-2. - C. 73-85. DOI: 10.1016/j.vetimm.2013.03.007
41. Vassilieva E. V., Li S., Korniychuk H. [et al]. cGAMP/Saponin Adjuvant Combination Improves Protective Response to Influenza Vaccination by Microneedle Patch in an Aged Mouse Model // Front Immunol. - 2020. - T. 11. - C. 583251. DOI: 10.3389/fimmu.2020.583251 EDN: JGBXYC
42. He Y., Wang J., Chi L. [et al].Combination Adjuvants Enhance Recombinant H5 Hemagglutinin Vaccine Protection Against High-Dose Viral Challenge in Chickens // Vaccines (Basel). - 2024. - T. 12, № 12. DOI: 10.3390/vaccines12121448
43. Krieg A. M., Yi A. K., Matson S. [et al]. CpG motifs in bacterial DNA trigger direct B-cell activation // Nature. - 1995. - T. 374, № 6522. - C. 546-9. DOI: 10.1038/374546a0
44. Hemmi H., Takeuchi O., Kawai T. [et al]. A Tolllike receptor recognizes bacterial DNA // Nature. - 2000. - T. 408, № 6813. - C. 740-5. DOI: 10.1038/35047123
45. Poltorak A., He X., Smirnova I. [et al]. Defective LPS signaling in C3H/HeJ and C57BL/10ScCr mice: mutations in Tlr4 gene // Science. - 1998. - T. 282, № 5396. - C. 2085-8. DOI: 10.1126/science.282.5396.2085 EDN: CVTWWN
46. Garcon N., Vaughn D. W., Didierlaurent A. M. Development and evaluation of AS03, an Adjuvant System containing alphatocopherol and squalene in an oil-in-water emulsion // Expert Rev Vaccines. - 2012. - T. 11, № 3. - C. 349-66. DOI: 10.1586/erv.11.192
47. Chu R. S., Targoni O. S., Krieg A. M. [et al]. CpG oligodeoxynucleotides act as adjuvants that switch on T helper 1 (Th1) immunity // J Exp Med. - 1997. - T. 186, № 10. - C. 1623-31. DOI: 10.1084/jem.186.10.1623
48. Lycke N. From toxin to adjuvant: the rational design of a vaccine adjuvant vector, CTA1-DD/ISCOM // Cell Microbiol. - 2004. - T. 6, № 1. - C. 23-32. DOI: 10.1046/j.1462-5822.2003.00338.x
49. Yeh D. W., Lai C. Y., Liu Y. L. [et al]. CpG-oligodeoxynucleotides developed for grouper toll-like receptor (TLR) 21s effectively activate mouse and human TLR9s mediated immune responses // Sci Rep. - 2017. - T. 7, № 1. - C. 17297. DOI: 10.1038/s41598-017-17609-2
50. Fearon K., Marshall J. D., Abbate C. [et al]. A minimal human immunostimulatory CpG motif that potently induces IFN-gamma and IFN-alpha production // Eur J Immunol. - 2003. - T. 33, № 8. - C. 2114-22. DOI: 10.1002/eji.200323948
51. Ko E. J., Lee Y. T., Kim K. H. [et al]. Effects of MF59 Adjuvant on Induction of Isotype-Switched IgG Antibodies and Protection after Immunization with T-Dependent Influenza Virus Vaccine in the Absence of CD4+ T Cells // J Virol. - 2016. - T. 90, № 15. - C. 6976-6988. DOI: 10.1128/jvi.00339-16
52. Rankin R., Pontarollo R., Gomis S. [et al]. CpG-containing oligodeoxynucleotides augment and switch the immune responses of cattle to bovine herpesvirus-1 glycoprotein D // Vaccine. - 2002. - T. 20, № 23-24. - C. 3014-22. DOI: 10.1016/s0264-410x(02)00216-5
53. Tabarsi P., Anjidani N., Shahpari R. [et al]. Evaluating the efficacy and safety of SpikoGen(R), an Advax-CpG55.2-adjuvanted severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 spike protein vaccine: a phase 3 randomized placebo-controlled trial // Clin Microbiol Infect. - 2023. - T. 29, № 2. - C. 215-220. DOI: 10.1016/j.cmi.2022.09.001
54. Klinman D. M., Klaschik S., Sato T. [et al]. CpG oligonucleotides as adjuvants for vaccines targeting infectious diseases // Adv Drug Deliv Rev. - 2009. - T. 61, № 3. - C. 248-55. DOI: 10.1016/j.addr.2008.12.012
55. Milley B., Kiwan R., Ott G. S. [et al]. Optimization, Production, and Characterization of a CpG-Oligonucleotide-Ficoll Conjugate Nanoparticle Adjuvant for Enhanced Immunogenicity of Anthrax Protective Antigen // Bioconjug Chem. - 2016. - T. 27, № 5. - C. 1293-304. DOI: 10.1021/acs.bioconjchem.6b00107
56. Kayraklioglu N., Horuluoglu B., Klinman D. M. CpG Oligonucleotides as Vaccine Adjuvants // Methods Mol Biol. - 2021. - T. 2197. - C. 51-85. DOI: 10.1007/978-1-0716-0872-2_4
57. Nigar S., Shimosato T. Cooperation of Oligodeoxy-nucleotides and Synthetic Molecules as Enhanced Immune Modulators // Front Nutr. - 2019. - T. 6. - C. 140. DOI: 10.3389/fnut.2019.00140
58. Plessers E., Wyns H., Watteyn A. [et al]. Characterization of an intravenous lipopolysaccharide inflammation model in calves with respect to the acute-phase response // Vet Immunol Immunopathol. - 2015. - T. 163, № 1-2. - C. 46-56. DOI: 10.1016/j.vetimm.2014.11.005
59. Scheiermann J., Klinman D. M. Clinical evaluation of CpG oligonucleotides as adjuvants for vaccines targeting infectious diseases and cancer // Vaccine. - 2014. - T. 32, № 48. - C. 6377-89. DOI: 10.1016/j.vaccine.2014.06.065
60. Silva A. L., Soema P. C., Slutter B. [et al]. PLGA particulate delivery systems for subunit vaccines: Linking particle properties to immunogenicity // Hum Vaccin Immunother. - 2016. - T. 12, № 4. - C. 1056-69. DOI: 10.1080/21645515.2015.1117714
61. Agger E. M., Rosenkrands I., Hansen J. [et al]. Cationic liposomes formulated with synthetic mycobacterial cordfactor (CAF01): a versatile adjuvant for vaccines with different immunological requirements // PLoS One. - 2008. - T. 3, № 9. - C. e3116. DOI: 10.1371/journal.pone.0003116
62. Nochi T., Yuki Y., Takahashi H. [et al]. Nanogel antigenic protein-delivery system for adjuvant-free intranasal vaccines // Nat Mater. - 2010. - T. 9, № 7. - C. 572-8. DOI: 10.1038/nmat2784
63. Quan F. S., Huang C., Compans R. W. [et al]. Virus-like particle vaccine induces protective immunity against homologous and heterologous strains of influenza virus // J Virol. - 2007. - T. 81, № 7. - C. 3514-24. 10.1128/ JVI.02052-06. DOI: 10.1128/JVI.02052-06
64. Seubert A., Calabro S., Santini L. [et al]. Adjuvanticity of the oil-in-water emulsion MF59 is independent of Nlrp3 inflammasome but requires the adaptor protein MyD88 // Proc Natl Acad Sci U S A. - 2011. - T. 108, № 27. - C. 11169-74. DOI: 10.1073/pnas.1107941108
65. Sun H. X., Xie Y., Ye Y. P. ISCOMs and ISCOMA- TRIX // Vaccine. - 2009. - T. 27, № 33. - C. 4388-. DOI: 10.1016/j.vaccine.2009.05.032 EDN: MMXWWX
66. Turley J. L., Lavelle E. C. Resolving adjuvant mode of action to enhance vaccine efficacy // Curr Opin Immunol. - 2022. - T. 77. - C. 102229. DOI: 10.1016/j.coi.2022.102229
67. Maji M., Ghosh S., Didwania N. [et al]. Differentially Charged Liposomes Stimulate Dendritic Cells with Varying Effects on Uptake and Processing When Used Alone or in Combination with an Adjuvant // ACS Omega. - 2024. - T. 9, № 27. - C. 29175-29185. DOI: 10.1021/acsomega.3c07814 EDN: EOCQZV
68. Kathaperumal K., Kumanan V., McDonough S. [et al]. Evaluation of immune responses and protective efficacy in a goat model following immunization with a coctail of recombinant antigens and a polyprotein of Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis // Vaccine. - 2009. - T. 27, № 1. - C.123-35. DOI: 10.1016/j.vac-cine.2008.10.019
69. Hayashi M., Aoshi T., Haseda Y. [et al]. Advax, a Delta Inulin Microparticle, Potentiates Inbuilt Adjuvant Property of Coadministered Vaccines // EBioMedicine. - 2017. - T. 15. - C. 127-136. DOI: 10.1016/j.ebiom.2016.11.015
70. Hou X., Zaks T., Langer R. [et al]. Lipid nanoparticles for mRNA delivery // Nat Rev Mater. - 2021. - T. 6, № 12. - C. 1078-1094. DOI: 10.1038/s41578-021-00358-0 EDN: WGZZCB
71. Zhao K., Rong G., Hao Y. [et al]. IgA response and protection following nasal vaccination of chickens with Newcastle disease virus DNA vaccine nanoencapsulated with Ag@SiO2 hollow nanoparticles // Sci Rep. - 2016. - T. 6. - C. 25720. DOI: 10.1038/srep25720
72. Wilson-Welder J. H., Torres M. P., Kipper M. J. [et al]. Vaccine adjuvants: current challenges and future approaches // J Pharm Sci. - 2009. - T. 98, № 4. - C. 1278-316. DOI: 10.1002/jps.21523 EDN: MIOODN
73. Watkinson A. C., Kearney M. C., Quinn H. L. [et al]. Future of the transdermal drug delivery market - have we barely touched the surface? // Expert Opin Drug Deliv. - 2016. - T. 13, № 4. - C. 523-32. DOI: 10.1517/17425247.2016.1130034
Выпуск
Другие статьи выпуска
Заворот большой ободочной кишки у лошадей является одной из самых опасных и тяжелых форм и заболеваний желудочно - кишечного тракта. Заболевание развивается стремительно, требует немедленной госпитализации в профильную клинику и оперативного лечения. Стопроцентная летальность при отсутствии оперативного лечения, а также необходимость начать операцию как можно раньше делают актуальной проблему ранней диагностики заболеваний большой ободочной кишки, требующих хирургического вмешательства. Зачастую невыраженные клинические признаки в начале развития болезни, отсутствие постоянного контроля за животным и слабая информированность по данной проблеме владельцев животных приводят к фатальным последствиям. Развиваются тяжелые вторичные изменения в виде эндотоксемия, сепсиса, перитонита, дыхательной и сердечно - сосудистой недостаточности. Все вышеперечисленное значительно затрудняет как проведение самой операции, так и постоперативное ведение пациентов и приводит к невозможности проведения какого - либо лечения и как следствие, гибели животного или необходимости эвтаназии. Целью данной работы являлось изучение особенностей диагностики острых заболеваний толстого отдела кишечника лошадей, способствующим наиболее эффективному лечению и минимизации случаев летального исхода.
Данное исследование посвящено анализу потенциала азитромицина - 15-членного макролида, обладающего широким спектром антимикробных и иммуномодулирующих свойств, - в лечении цитозооноза у кошек. В работе рассмотрены структурные особенности препарата, его механизмы действияи фармакокинетические преимущества. Особое внимание уделено возможности использования азитромицина в ветеринарии, в частности, в комплексной терапии паразитарных заболеваний, таких как цитозооноз, вызываемый паразитом Cytauxzoon felis. Проанализированы существующие схемы лечения, их эффективность и сравнительные показатели выживаемости животных. Полученные данные свидетельствуют о высокой эффективности комбинации азитромицина с противомалярийными препаратами, что значительно снижает уровень смертности. Исследование подчеркивает актуальность дальнейших клинических и экспериментальных работ по внедрению азитромицина в ветеринарную практику для повышения эффективности борьбы с опасными паразитарными инфекциями у домашних животных.
В статье представлены результаты сравнительнойоценки измененийразмеров фолликулов в яичниках, выполненной с помощью клиническо - эхографического исследования, уровня секреции эстрадиола 17-β, определяемого методом ИФА в сыворотке крови, а также ультрасонографического контроля времени овуляции после действия прогестеронсодержащих внутривлагалищных имплантов с добавлением разных дозировок мелатонина, применяемых в составе схемы синхронизации половой охоты у молочных коров. В группах, где применялись импланты с мелатонином в дозировках 500 и 700 мг, размер предовуляторных фолликулов был на 8,0 и 10,1 % больше по сравнению с контролем. Также, биологическая активность данного пептида повлияла на функцию гранулёзных клеток, на что указывает повышение секреции эстрадиола на 15,0 и 33,7 % относительно группы контроля, в гормонально индуцированную стадию полового возбуждения. Следствием образования более крупных фолликулов и оптимизации стероидогенеза в яичниках стало своевременное наступление овуляции в ответ на инъекцию гонадолиберина.
В настоящее время научные исследования, связанные с разработкой поликомпонентных пробиотиков, состав которых дополнен фитобиотическими или минеральными веществами, относят к актуальным направлениям фармакологии. Кормовая добавка сиолакт представляет собой комплекс лакто - и бифидобактерий с природным алюмосиликатным минералом. Цель работы состояла в оценке влияния сиолакта на продуктивность и биохимические показатели крови цыплят - бройлеров. Исследования проведены на 60 цыплятах - бройлерах кросса Arbor Acres, из которых по принципу параналогов было сформировано две группы по 30 особей (опытная и контрольная) в каждой. Цыплята из опытной группы с 5 по 42 дни жизни получали кормовую добавку сиолакт (0,1 % от массы комбикорма). Контрольная группа находиласьна основном рационе. В результате проведенных исследований установлено, что сиолакт оказывает положительное влияние на метаболизм птицы, проявляющееся улучшением показателей белкового и углеводного обменов, а также маркеров состояния печени. Введение в рацион цыплят кормовой добавки способствует увеличению приростов массы тела птицы при разнице с контролем в 4,57 % (p ≤ 0,05) к 42 дню жизни, а также повышает сохранность поголовья на 6,7 %.
В статье приведены результаты по оценке эффективности средства Эковет-А в профилактике мастита у коров. Эковет-А представляет собой электрохимически активированный раствор хлоркислородных и гидропероксидных соединений. Для исследований сформировали три группы (две опытныеи одну контрольную) условно здоровых лакирующих коров по 20 голов в каждой. В схему обработки вымени коров перед доением включали: в 1 опытной группе средство Эковет-А; во 2 опытной группе - средство для обработки вымени на основе молочной кислоты. Дезинфицирующие средства применяли в течение месяца методом окунания сосков в невозвратный стаканчик на 30 секунд, в контрольной группе использовали воду. В результате проведенных исследований установлено, что за месячный периодприменения дезинфицирующих средств в преддоильной обработке коров в опытных группах количествотрещин сосков вымени и случаев мастита относительно контрольного поголовья снизилось на 10-30 %, с наилучшим результатом в 1 опытной группе. При применении средства Эковет-А относительно контроля в молоке коров зарегистрировано снижение количества соматических клеток - в 1,8 раз и КМАФАнМ -в 1,5 раза. Таким образом, для профилактики мастита у коров средство Эковет-А может эффективно использоваться в схеме обработки вымени перед доением.
В статье представлены результаты исследования аллергенных свойств липосомальной формы гентамицина сульфата на лабораторных животных. В качестве тест - моделей для постановки коньюнктивальной пробы и реакции активной кожной анафилаксии были выбраны морские свинки, для реакциигиперчувствительности замедленного типа - белые мыши. Установлено отсутствие негативных эффектов на конъюнктиву глаз животных при использовании нативного препарата. Анафилактогенного эффекта не выявлено при сенсибилизации низкими дозами (71,3 мг/кг). При этом аллергизирующие свойства проявлялись при введении препарата в дозе 712,7 мг/кг, на что указывает статистически значимое увеличения эозинофилов крови у животных опытной группы в сравнении с контролем (19,0 ± 2,0 и 5,0 ± 1,0 прир < 0,004), а так же разница индекса реакций при постановке ГЗТ (7,3 ± 1,5 и 3,2 ± 0,4 % при р < 0,0001). Такие показатели могут свидетельствовать о возможности возникновения аллергической реакции при использовании высоких доз препарата и возможности развития гиперчувствительности IV типа, что необходимо учитывать в клинической практике.
Действующее вещество препарата «АНАНДИН® 10 % раствор для инъекций» - глюкаминопропилкарбакридон, являющееся комплексным соединением, состоящим из N-акридонуксусной кислоты (АУК) и диметиламинопропилглюкофуранозы (ДМАПГФ). При исследовании фармакокинетики определяли оба компонента. По результатам экспериментов установлено, что АУК и ДМАПГФ активно проникают в системный кровоток КРС и свиней после внутримышечного введения в терапевтической дозе0,02 мл/кг массы тела, распределяясь по всему организму. Для обоих компонентов отмечена быстрая абсорбция из места инъекции и циркуляция в организме свиней в течение 6 ч и 12 ч у КРС. Предлагаемаядозировка и внутримышечный способ введения препарата «АНАНДИН® 10 % раствор для инъекций»обеспечивают хорошую абсорбцию и распределение компонентов действующего вещества в организмеКРС и свиней. По результатам анализа проб органов и тканей КРС и свиней на остаточное содержание АУК и ДМАГПФустановлено, что для получения безопасных продуктов питания убой КРС и свиней следует осуществлятьчерез 1 сутки после курсового внутримышечного применения препарата «АНАНДИН® 10 % раствор дляинъекций».
Целью настоящего исследования явилась оценка фармакокинетического профиля препарата гемовит - плюс, представляющего собой комплекс органического соединения производного этилендиаминдиянтарной кислоты с биологически активными микроэлементами (Fe, Mn, Cu, Zn, Co, Se, I). Для эксперимента было отобрано 13 групп крыс по 3 животных в каждой (12 опытных и одна контрольная). Крысам опытных групп препарат гемовит - плюс вводили внутрижелудочно в дозе 13 мг / 1 кг массы тела животного. Далее через каждые два часа в течение суток проводили гуманную эвтаназию грызунов для отслеживания динамики изменения содержания микроэлементов в органах и тканях их организма. У крыс для исследования брали кровь, сердце, лёгкие, печень, почки, скелетную мускулатуру, толстый и тонкийотделы кишечника. Результаты эксперимента показали, что входящие в гемовит - плюс микроэлементы характеризуются высокой степенью биодоступности, достигая максимальных значений к 6-8 часу послевведения, что доказывает высокий уровень усвоения хелатной формы препарата.
В статье приведены результаты по оценке актопротекторных свойств препарата рутацирин на лабораторных животных. Для эксперимента из половозрелых нелинейных самцов крыс сформировали2 группы (опытную и контрольную) по 10 грызунов в каждой. Крысам опытной группы течение 7 дней(1 раз в сутки) внутрижелудочно вводили препарат рутацирин из расчета 1,2 г/кг массы тела в форме30%-ной суспензии. В контрольной группе животные получали эквиобъемное количество дистиллированной воды. Через неделю от начала введения препарата определяли общую физическую выносливость грызунов с помощью теста «вынужденное плавание с грузом». Сразу после тестирования у 5 животных из каждой группы отбирали кровь для лабораторных исследований. В результате установлено, что у лабораторных крыс опытной группы продолжительность плавания с грузом при дополнительной гипертермической нагрузке была больше контрольных значений на 19,78 % (р ≤ 0,05). Биохимические исследования крови крыс подтвердили адаптивное действие препарата, что проявилось улучшением маркеров энергетического обмена, состояния печени и окислительного стресса.
Издательство
- Издательство
- ВНИВИПФИТ
- Регион
- Россия, Воронеж
- Почтовый адрес
- ул. Ломоносова, 114Б
- Юр. адрес
- ул. Ломоносова, 114Б
- ФИО
- Паршин Павел Андреевич (Руководитель)
- E-mail адрес
- ermakova53@list.ru
- Контактный телефон
- +7 (908) 1376923
- Сайт
- https://nivipat.ru