Введение. Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС), вызываемый вирусом из семейства Arteriviridae, является одной из наиболее экономически значимых болезней свиней во многих странах мира. Основные проявления заболевания включают репродуктивную дисфункцию у свиноматок, которая проявляется абортами на поздних сроках беременности, ранними или отсроченными опоросами, рождением слабых или нежизнеспособных поросят, нерегулярным эструсом; реже сообщается о патологиях на ранних и средних сроках беременности. У поросят и откормочных свиней наблюдается респираторный дистресс-синдром: кашель, чихание, одышка, задержка роста. Кроме того, заражение вирусом РРСС приводит к снижению респираторного иммунитета, что делает инфицированных свиней более восприимчивыми к вторичным инфекциям и повышает смертность среди поголовья. В настоящем обзоре представлена актуальная информация о текущем состоянии лабораторной диагностики и специфической профилактики РРСС, а также рассмотрены перспективные биотехнологические платформы для конструирования вакцин нового поколения.
Цель исследования. Рассмотреть и обобщить современные подходы к диагностике и профилактике репродуктивно-респираторного синдрома свиней.
Материалы и методы. Материалом для аналитического исследования послужили научные публикации зарубежных и отечественных авторов.
Результаты. Приведена нозологическая характеристика заболевания, рассмотрены особенности клинических проявлений, эпизоотологии, организации генома возбудителя. Описаны и обсуждены применяемые в ветеринарной практике классические и современные методы лабораторной диагностики, а также коммерчески доступные препараты для специфической профилактики РРСС и перспективные биотехнологические платформы для создания вакцин нового поколения, которые позволят достичь оптимального баланса между безопасностью и эффективностью. На текущем этапе изучения патогенеза РРСС существуют три основные проблемы в разработке вакцин: недостаточность сведений о механизмах иммунной защиты, способность вируса индуцировать негативные регуляторные сигналы для иммунной системы и значительная антигенная изменчивость возбудителя.
Заключение. Штаммы вируса РРСС демонстрируют значительную генетическую и антигенную гетерогенность и часто подвергаются рекомбинациям, что усугубляет проблемы эпизоотологии, профилактики и контроля заболевания. Дальнейшее углубленное изучение особенностей иммунного ответа организма-хозяина, а также идентификация Т- и B-клеточных эпитопов в структуре возбудителя позволит обеспечить рациональный дизайн генно-инженерных вакцин.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС, porcine reproductive and respiratory syndrome, PRRS), вызываемый вирусом РРСС (Betaarterivirus 1-го и 2-го типов), является одной из наиболее экономически значимых болезней свиней во многих странах мира: глобальный ущерб, связанный с данной инфекцией, оценивается более чем в 600 млн долларов США ежегодно. Впервые вспышки заболевания неизвестной этиологии были зарегистрированы в США и Западной Европе в конце 1980-х – начале 1990-х гг., несколько лет спустя превратившись в пандемию [1, 2]. У свиноматок наблюдались репродуктивные нарушения в виде абортов, мумификации плодов, мертворождения либо рождения нежизнеспособного потомства; у растущих поросят – респираторные симптомы (одышка, кашель и лихорадка) [3].
Список литературы
1. Глазунова А. А., Корогодина Е. В., Севских Т. А., Краснова Е. А., Кукушкин С. А., Блохин А. А. Репродуктивно-респираторный синдром свиней в свиноводческих предприятиях (обзор). Аграрная наука ЕвроСеверо-Востока. 2022; 23 (5): 600-610. DOI: 10.30766/2072-9081.2022.23.5.600-610
2. Butler J. E., Lager K. M., Golde W., Faaberg K. S., Sinkora M., Loving C., Zhang Y. I. Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS): an immune dysregulatory pandemic. Immunologic Research. 2014; 59: 81-108. DOI: 10.1007/s12026-014-8549-5
3. Raev S., Yuzhakov A., Bulgakov A., Kostina L., Gerasianinov A., Verkhovsky O., et al. An outbreak of a respiratory disorder at a Russian swine farm associated with the co-circulation of PRRSV1 and PRRSV2. Viruses. 2020; 12 (10):1169. DOI: 10.3390/v12101169
4. Мананов М. Репродуктивно-респираторный синдром свиней. Животноводство России. 2022; (1): 34-35.
5. Nan Y., Wu C., Gu G., Sun W., Zhang Y.-J., Zhou E.-M. Improved vaccine against PRRSV: current progress and future perspective. Frontiers in Microbiology. 2017; 8:1635. DOI: 10.3389/fmicb.2017.01635
6. Wang Y., Liang Y., Han J., Burkhart K. M., Vaughn E. M., Roof M. B., Faaberg K. S. Attenuation of porcine reproductive and respiratory syndrome virus strain MN184 using chimeric construction with vaccine sequence. Virology. 2008; 371 (2): 418-429. https://doi.org/10.1016Zj.virol.2007.09.032.
7. Snijder E. J., Kikkert M., Fang Y. Arterivirus molecular biology and pathogenesis. Journal of General Virology. 2013; 94 (10): 2141-2163. DOI: 10.1099/vir.0.056341-0
8. Fang K., Liu S., Li X., Chen H., Qian P. Epidemiological and genetic characteristics of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in South China between 2017 and 2021. Frontiers in Veterinary Science. 2022; 9:853044. DOI: 10.3389/fvets.2022.853044
9. Южаков А. Г., Жукова Е. В., Алипер Т. И., Гулюкин А. М. Репродуктивно-респираторный синдром свиней: ситуация в России. Свиноводство. 2022; (5): 32-35. DOI: 10.37925/0039-713X-2022-5-32-35
10. Стаффорд В. В., Раев С. А., Алексеев К. П., Южаков А. Г., Алипер Т. И., Забережный А. Д. и др. Иммуногистохимическая диагностика репродуктивного и респираторного синдрома свиней. Ветеринария. 2017; (2): 26-30.
11. Du Y., Lu Y., Qi J., Wu J., Wang G., Wang J.Complete genome sequence of a moderately pathogenic porcine reproductive and respiratory syndrome virus variant strain. Journal of Virology. 2012; 86 (24): 1388313884. DOI: 10.1128/JVI.02731-12
12. Sandri G. PRRSV sequencing and its use in practice. Pig333.com: Professional Pig Community. 5 March 2018. https://www.pig333.com/articles/prrsv-sequencing-and-its-use-in-practice_13422.
13. Guo C., Liu X. Editorial: Porcine reproductive and respiratory syndrome virus - animal virology, immunology, and pathogenesis. Frontiers in Immunology. 2023; 14: 1194386. DOI: 10.3389/fimmu.2023.1194386
14. Zheng Y., Li G., Luo Q., Sha H., Zhang H., Wang R., et al. Research progress on the N protein of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Frontiers in Microbiology. 2024; 15:1391697. DOI: 10.3389/fmicb.2024.1391697
15. Brinton M. A., Gulyaeva A. A., Balasuriya U. B. R., Dunowska M., Faaberg K. S., Goldberg T., et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Arteriviridae 2021. Journal of General Virology. 2021; 102 (8):001632. DOI: 10.1099/jgv.0.001632
16. Thi Dieu Thuy N., Thi Thu N., Son N. G., Ha L. T. T., Hung V. K., Nguyen N. T., Khoa D. V. A. Genetic analysis of ORF5 porcine reproductive and respiratory syndrome virus isolated in Vietnam. Microbiology and Immunology. 2013; 57 (7): 518-526. DOI: 10.1111/1348-0421.12067
17. Yim-im W., Anderson T. K., Paploski I. A. D., VanderWaal K., Gauger P., Krueger K., et al. Refining PRRSV-2 genetic classification based on global ORF5 sequences and investigation of their geographic distributions and temporal changes. Microbiology Spectrum. 2023; 11 (6): e02916-23. DOI: 10.1128/spectrum.02916-23
18. Evans A. B., Loyd H., Dunkelberger J. R., van Tol S., Bolton M. J., Dorman K. S., et al. Antigenic and biological characterization of ORF2-6 variants at early times following PRRSV infection. Viruses. 2017; 9 (5):113. DOI: 10.3390/v9050113
19. Kappes M. A., Faaberg K. S. PRRSV structure, replication and recombination: Origin of phenotype and genotype diversity. Virology. 2015; 479-480: 475-486. DOI: 10.1016/j.virol.2015.02.012
20. Zhang H., Xiang L., Xu H., Li C., Tang Y.-D., Gong B., et al. Lineage 1 porcine reproductive and respiratory syndrome virus attenuated live vaccine provides broad cross-protection against homologous and heterologous NADC30-like virus challenge in piglets. Vaccines. 2022; 10 (5):752. DOI: 10.3390/vaccines10050752
21. Shi M., Lam T. T.-Y., Hon C.-C., Hui R. K.-H., Faaberg K. S., Wennblom T., et al. Molecular epidemiology of PRRSV: A phylogenetic perspective. Virus Research. 2010; 154 (1-2): 7-17. DOI: 10.1016/j.virus-res.2010.08.014
22. Pileri E., Mateu E. Review on the transmission porcine reproductive and respiratory syndrome virus between pigs and farms and impact on vaccination. Veterinary Research. 2016; 47 (1):108. DOI: 10.1186/s13567-016-0391-4
23. Щербаков А. В., Тимина A. M., Челышева М. В., Каньшина А. В. Филогенетическая характеристика вируса, вызвавшего вспышку атипичного репродуктивно-респираторного синдрома свиней в Иркутской области Российской Федерации. Труды Федерального центра охраны здоровья животных. 2009; 7: 55-63.
24. Shi M., Lemey P., Singh Brar M., Suchard M. A., Murtaugh M. P., Carman S., et al. The spread of type 2 porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) in North America: A phylogeographic approach. Virology. 2013; 447 (1-2); 146-154. DOI: 10.1016/j.virol.2013.08.028
25. Zhou L., Kang R., Zhang Y., Ding M., Xie B., Tian Y., et al. Whole genome analysis of two novel type 2 porcine reproductive and respiratory syndrome viruses with complex genome recombination between lineage 8, 3, and 1 strains identified in Southwestern China. Viruses. 2018; 10 (6):328. DOI: 10.3390/v10060328
26. Luo Q., Zheng Y., He Y., Li G., Zhang H., Sha H., et al. Genetic variation and recombination analysis of the GP5 (GP5a) gene of PRRSV-2 strains in China from 1996 to 2022. Frontiers in Microbiology. 2023; 14:1238766. DOI: 10.3389/fmicb.2023.1238766
27. Fan Y.-F., Bai J., Jiang P. Analysis on GP5 genetic variation of porcine reproductive and respiratory syndrome virus from Shandong Province. Journal of Domestic Animal Ecology. 2017; 38 (4): 63-67. http://jcst.magtech.com.cn/EN/Y2017/V38/I4/63.
28. Murtaugh M. P., Stadejek T., Abrahante J. E., Lam T. T.-Y., Leung F. C.-C. The ever-expanding diversity of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Virus Research. 2010; 154 (1-2): 18-30. DOI: 10.1016/j.virusres.2010.08.015
29. Кукушкин С. А. Эпизоотология и меры борьбы с репродуктивно-респираторным синдромом свиней в мире и в Российской Федерации. Ветеринарная патология. 2006; (4): 89-95.
30. Stadejek T., Oleksiewicz M. B., Scherbakov A. V., Timina A. M., Krabbe J. S., Chabros K., Potapchuk D. Definition of subtypes in the European genotype of porcine reproductive and respiratory syndrome virus: nucleocapsid characteristics and geographical distribution in Europe. Archives of Virology. 2008; 153 (8): 1479-1488. DOI: 10.1007/s00705-008-0146-2
31. Frydas I. S., Verbeeck M., Cao J., Nauwynck H. J. Replication characteristics of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) European subtype 1 (Lelystad) and subtype 3 (Lena) strains in nasal mucosa and cells of the monocytic lineage: indications for the use of new receptors of PRRSV (Lena). Veterinary Research. 2013; 44 (1):73. DOI: 10.1186/1297-9716-44-73
32. Balka G., Podgörska K., Brar M. S., Balint A., Cadar D., Celer V., et al. Genetic diversity of PRRSV 1 in Central Eastern Europe in 1994-2014: origin and evolution of the virus in the region. Scientific Reports. 2018; 8 (1):7811. DOI: 10.1038/s41598-018-26036-w EDN: YHDZGX ▼ Контекст
33. Орлянкин Б. Г., Алипер Т. И., Мишин А. М. Инфекционные респираторные болезни свиней: этиология, диагностика и профилактика. Свиноводство. 2010; (3): 67-69.
34. Гречухин А. Н., Зеленуха Е. А. Анализ противоэпизоотических мероприятий при репродуктивно-респираторном синдроме свиней (PRRS) на крупном свинокомплексе. Свиноводство. 2011; (4): 54-55.
35. Lunney J. K., Fang Y., Ladinig A., Chen N., Li Y., Rowland B., Renukaradhya G. J. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV): pathogenesis and interaction with the immune system. Annual Review of Animal Biosciences. 2016; 4: 129-154. DOI: 10.1146/annurev-an-imal-022114-111025
36. Fiers J., Maes D., Cay A.-B., Vandenbussche F., Mostin L., Parys A., Tignon M. PRRSV-vaccinated, seronegative sows and maternally derived antibodies (II): impact on PRRSV-1 vaccine effectiveness and challenge outcomes in piglets. Vaccines. 2024; 12 (3):257. DOI: 10.3390/vaccines12030257
37. Rowland R. R. R., Lawson S., Rossow K., Benfield D. A. Lymphoid tissue tropism of porcine reproductive and respiratory syndrome virus replication during persistent infection of pigs originally exposed to virus in utero. Veterinary Microbiology. 2003; 96 (3): 219-235. DOI: 10.1016/j.vetmic.2003.07.006
38. Zimmerman J., Benfield D., Christopher-Hennings J., Dee S., Stevenson G. Porcine reproductive and respiratory syndrome (PRRS). Hogs, Pigs, and Pork. August 28, 2019. https://swine.extension.org/porcine-reproductive-and-respiratory-syndrome-prrs.
39. Rodriguez-Gömez I. M., Käser T., Gömez-Laguna J., Lamp B., Sinn L., Rümenapf T., et al. PRRSV-infected monocyte-derived dendritic cells express high levels of SLA-DR and CD80/86 but do not stimulate PRRSV-naïve regulatory T cells to proliferate. Veterinary Research. 2015; 46 (1):54. DOI: 10.1186/s13567-015-0186-z
40. Каньшина А. В., Щербаков А. В. Серодиагностика РРСС: результаты участия в международных сравнительных испытаниях. Ветеринария сегодня. 2012; (2): 22-25.
41. Teifke J. P., Dauber M., Fichtner D., Lenk M., Polster U., Weiland E., Beyer J. Detection of European porcine reproductive and respiratory syndrome virus in porcine alveolar macrophages by two-colour immunofluorescence and in-situ hybridization-immunohistochemistry double labelling. Journal of Comparative Pathology. 2001; 124 (4): 238-245. DOI: 10.1053/jcpa.2000.0458
42. Pan J., Zeng M., Zhao M., Huang L. Research progress on the detection methods of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Frontiers in Microbiology. 2023; 14:1097905. DOI: 10.3389/fmicb.2023.1097905
43. Montaner-Tarbes S., del Portillo H. A., Montoya M., Fraile L. Key gaps in the knowledge of the porcine respiratory reproductive syndrome virus (PRRSV). Frontiers in Veterinary Science. 2019; 6:38. DOI: 10.3389/fvets.2019.00038
44. Park C., Choi K., Jeong J., Chae C. Cross-protection of a new type 2 porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) modified live vaccine (Fostera PRRS) against heterologous type 1 PRRSV challenge in growing pigs. Veterinary Microbiology. 2015; 177 (1-2): 87-94. DOI: 10.1016/j.vetmic.2015.02.020
45. Chen N., Li S., Tian Y., Li X., Li S., Li J., et al. Chimeric HP-BPPCC2 containing an ORF2-6 consensus sequence induces antibodies with broadly neutralizing activity and confers cross protection against virulent NADC30-like isolate. Veterinary Research. 2021; 52 (1):74. DOI: 10.1186/s13567-021-00944-8
46. Renukaradhya G. J., Meng X.-J., Calvert J. G., Roof M., Lager K. M. Live porcine reproductive and respiratory syndrome virus vaccines: Current status and future direction. Vaccine. 2015; 33 (33): 4069-4080. DOI: 10.1016/j.vaccine.2015.06.092
47. Li J., Miller L. C., Sang Y. Current status of vaccines for porcine reproductive and respiratory syndrome: interferon response, immunological overview, and future prospects. Vaccines. 2024; 12 (6):606. DOI: 10.3390/vaccines12060606
48. Байбиков Т. З., Гусев А. А., Дудникова Н. С., Дудников С. А., Гаврилова В. Л., Курман И. Я. и др. Штамм “БД” вируса репродуктивно-респираторного синдрома свиней для изготовления диагностических и вакцинных препаратов. Патент № 2220202 C1 Российская Федерация, МПК C12N 7/00, A61K 39/12. ФГУ “Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных”. № 2002110976/13. Заявл. 25.04.2002. Опубл. 27.12.2003.
49. Байбиков Т. З., Кукушкин С. А., Баборенко Е. П., Долганова Е. К., Гаврилова В. Л., Тетерин И. А. Вакцина против репродуктивно-респираторного синдрома свиней эмульсионная инактивированная. Патент № 2316346 C2 Российская Федерация, МПК A61K 39/12, A61P 31/12, C12N 7/00. ФГУ “Федеральный центр охраны здоровья животных”. № 2006105369/13. Заявл. 20.02.2006. Опубл. 10.02.2008. Бюл. № 4.
50. Баборенко Е. П., Долганова Е. К., Груздев К. Н. Изучение антигенной активности ассоциированных вакцин против болезни Ауески, репродуктивно-респираторного синдрома и парвовирусной инфекции свиней. Ветеринария сегодня. 2018; (2): 13-17. DOI: 10.29326/2304-196X-2018-2-25-13-17
51. Madapong A., Saeng-chuto K., Tantituvanont A., Nilubol D. Safety of PRRSV-2 MLV vaccines administrated via the intramuscular or intradermal route and evaluation of PRRSV transmission upon needle-free and needle delivery. Scientific Reports. 2021; 11 (1):23107. DOI: 10.1038/s41598-021-02444-3
52. Галеева А. Г., Усольцев К. В., Хаммадов Н. И., Насыров Ш. М. Дизайн антигенной композиции на основе фрагмента гликопротеина Е2 вируса классической чумы свиней. Ветеринарный врач. 2024; (1): 28-33.
53. Ахунова А. Р., Насыров Ш. М., Галеева А. Г., Арутюнян Г. С., Ефимова М. А., Гулюкин М. И. Применение прямой реакции иммунофлуоресценции в технологическом контроле матричных расплодок вируса классической чумы свиней. Ветеринарный врач. 2024; (3): 27-33.
54. Choi J.-C., Kim M.-S., Choi H.-Y., Kang Y.-L., Choi I.-Y., Jung S.-W., et al. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus engineered by serine substitution on the 44th amino acid of GP5 resulted in a potential vaccine candidate with the ability to produce high levels of neutralizing antibody. Veterinary Sciences. 2023; 10 (3):191. DOI: 10.3390/vetsci10030191
55. Li Y., Li J., He S., Zhang W., Cao J., Pan X., et al.Interferon inducing porcine reproductive and respiratory syndrome virus vaccine candidate protected piglets from HP-PRRSV challenge and evoke a higher level of neutralizing antibodies response. Vaccines. 2020; 8 (3):490. DOI: 10.3390/vaccines8030490
56. Choi H.-Y., Kim M.-S., Kang Y.-L., Choi J.-C., Choi I.-Y., Jung S.-W., et al. Development of a chimeric porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV)-2 vaccine candidate expressing hypo-glycosylated glycoprotein-5 ectodomain of Korean lineage-1 strain. Veterinary Sciences. 2022: 9 (4):165. DOI: 10.3390/vetsci9040165
57. Tian D., Cao D., Lynn Heffron C., Yugo D. M., Rogers A. J., Overend C., et al. Enhancing heterologous protection in pigs vaccinated with chimeric porcine reproductive and respiratory syndrome virus containing the full-length sequences of shuffled structural genes of multiple heterologous strains. Vaccine. 2017; 35 (18): 2427-2434. DOI: 10.1016/j.vaccine.2017.03.046
58. Choi H.-Y., Lee S.-H., Ahn S.-H., Choi J.-C., Jeong J.-Y., Lee B.-J., et al. A chimeric porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV)-2 vaccine is safe under international guidelines and effective both in experimental and field conditions. Research in Veterinary Science. 2021; 135: 143-152. DOI: 10.1016/j.rvsc.2021.01.012
59. Cruz J. L. G., Zuniga S., Bécares M., Sola I., Ceriani J. E., Juanola S., et al. Vectored vaccines to protect against PRRSV. Virus Research. 2010; 154 (1 -2): 150-160. https://doi.org/10.1016Zj.virusres.2010.06.017.
Выпуск
Другие статьи выпуска
Введение. Микотоксины – вторичные метаболиты плесневых грибов, являются контаминантами, подлежат контролю. Согласно принятой классификации, по требованиям Директивы Совета Европейского союза 96/23ЕС, относятся к группе В3: «Прочие вещества и загрязнители окружающей среды». Информация о выявлении превышения предельно допустимых концентраций в кормах и пищевых продуктах вносится в информационную систему RASFF и ACN, функционирующую на территории стран Европейского союза.
Цель исследования. Анализ сведений о контаминации микотоксинами пищевой продукции и кормов за период с 2020 по 2022 г., зарегистрированных в информационной системе RASFF и ACN.
Материалы и методы. Объектом анализа были 1335 сообщений о превышении предельно допустимых концентраций микотоксинов (афлатоксинов, охратоксина А, дезоксиниваленола, зеараленона и патулина) в пищевых продуктах и кормах.
Результаты. Распределение случаев выявления микотоксинов в анализируемый период: афлатоксины – 87,1%, охратоксин А – 11,6%, патулин – 0,6%, дезоксиниваленол – 0,5%, зеараленон – 0,2%. Превышение предельно допустимой концентрации афлатоксинов чаще всего обнаруживали в арахисе (764 сообщения), охратоксина А – в сушеном инжире (43 сообщения), патулина – в яблочном соке (6 сообщений), зеараленона и дезоксиниваленола – в продукции из категории «крупы и хлебобулочные изделия». В кормах и кормовом сырье были выявлены несоответствия по содержанию исключительно афлатоксинов (33 сообщения), которые в 66,7% случаев обнаруживали в арахисе, предназначенном для кормовых целей. Анализ динамики контаминации продукции микотоксинами показал, что в 2021 и 2022 гг. наблюдали рост количества регистрируемых сообщений об их детекции.
Заключение. Согласно отчетам RASFF и ACN за 2020–2022 гг., микотоксины представляли третью по распространенности категорию опасности. Нарушение законодательства в части превышения предельно допустимых концентраций микотоксинов выявлено исключительно в продукции растительного происхождения.
Введение. Клостридиозы, несмотря на относительно спорадические случаи их возникновения, имеют повсеместное распространение и характеризуются высокой летальностью, что наносит экономический ущерб сельскому хозяйству. У крупного рогатого скота патогенные клостридии вызывают такие заболевания, как энтеротоксемия, злокачественный отек, столбняк, ботулизм. Этиологически значимыми видами клостридий являются Clostridium septicum, Clostridium perfringens, Clostridium chauvoei, Clostridium novyi, Clostridium sordellii.
Цель работы. Изучение видового разнообразия клостридий на основании исследований патолого-анатомического и секционного материала крупного рогатого скота из различных регионов России, определение мест их локализации в организме животных, а также антибактериальной устойчивости Clostridium perfringens к наиболее распространенным группам антибиотиков.
Материалы и методы. В период проведения исследования руководствовались общепринятыми нормативно-правовыми документами, методическими указаниями, рекомендациями, инструкциями; применяли микробиологические, масс-спектрометрические методы. Для определения антибактериальной устойчивости использовались различные группы препаратов: макролиды, монобактамы, пенициллины, полипептиды, гликопептиды, аминогликозиды, карбапенемы, линкозамиды, тетрациклины, ансамицины, диаминопиримидины, фузидины и др. Изоляты клостридий выделяли, используя рутинные бактериологические методы, видовую идентификацию выполняли с помощью времяпролетной масс-спектрометрии MALDI-ToF.
Результаты. При исследовании 359 образцов биоматериала было выделено и идентифицировано 137 изолятов клостридий (Paraclostridium bifermentans, Clostridium perfringens, Clostridium tertium, Clostridium butyricum, Clostridium septicum, Clostridium sporogenes, Clostridium cadaveris, Clostridium sphenoides, Clostridium cochlearium, Clostridium sartagoforme, Clostridium chauvoei, Clostridium novyi, Clostridium sordellii, Clostridium paraputrificum, Clostridium spp.), из которых 25 обладали патогенными и 17 – токсигенными свойствами. Чаще всего клостридии обнаруживали в печени, тонком и толстом отделах кишечника, мышцах. При этом выявлено превалирование Clostridium perfringens (17,5%). Установлена полирезистентность изолятов данного вида бактерии к цефиксиму, фузидиевой кислоте, цефотаксиму, цефаклору, спектиномицину, пиперациллину, кларитромицину, дорипенему, доксициклину.
Заключение. Полученные результаты могут быть использованы для модификации существующих протоколов лечения клостридиозов, корректировки состава иммунобиологических препаратов, разработки рекомендаций по использованию антибиотиков в животноводстве для снижения рисков развития антимикробной резистентности.
Введение. При снижении компенсаторных механизмов резистентности организма, изменении состава эволюционно сложившихся микробиоценозов избыточному росту патогенных микроорганизмов способствует репрезентация сигнальных молекул quorum sensing. Антибактериальный потенциал ингибиторов синтеза молекул межклеточных коммуникаций достигается за счет снижения адгезии микроорганизмов, а соответственно, и степени контаминации in vivo и in vitro.
Цель исследования. Изучение динамики изменений морфометрических и денситометрических показателей биопленок изолятов Escherichia coli, Escherichia albertii, Proteus vulgaris, идентифицированных при болезнях органов дыхания и пищеварения птиц.
Материалы и методы. Исследовали динамику развития биопленок референтных штаммов и изолятов, выделенных из патматериала птицы: куры кросса ROSS-308 40–42-недельного возраста (n = 20). Оптическую плотность исследуемых образцов определяли с применением фотометрического анализатора Immunochem-2100 (HTI, США), длина волны 580 нм (OD580). Морфометрические показатели учитывали при достоверной частоте встречаемости ≥ 90,0% поля зрения оптического микроскопа H604 Trinocular Unico (United Рroducts & Instruments Inc., США) и сканирующего электронного микроскопа Hitachi TM3030 Plus (Hitachi, Япония).
Результаты. Из патматериала птиц с признаками катарально-геморрагического аэросаккулита, геморрагического энтерита, фибринозного полисерозита и спленомегалии были выделены и идентифицированы Escherichia coli, Escherichia albertii, Proteus vulgaris. В зависимости от времени культивирования установлены прямые коррелятивные зависимости (r = 0,91) между морфометрическими и денситометрическими показателями. При дисперсии гетерогенной популяции доминируют клетки с дефектной клеточной стенкой, сферопласты, игольчатые и гигантские структуры, а также клетки-ревертанты.
Заключение. Общие закономерности динамики развития гетерогенной популяции микроорганизмов опосредованы адгезией, синтезом экзоцеллюлярных молекул, интенсивной пролиферацией и дифференциацией клеток в зависимости от стадии клеточного цикла.
Введение. В настоящий момент на базе подведомственного Россельхознадзору Федерального центра охраны здоровья животных (ФГБУ «ВНИИЗЖ», г. Владимир) разработана в соответствии с требованиями законодательства Российской Федерации вакцина против чумы плотоядных, парвовирусного и коронавирусного энтеритов, аденовирусной инфекции и бешенства собак «Карникан-5R». Для ее создания были использованы штаммы вирусов, циркулирующие на территории страны и актуальные в настоящее время.
Цель исследования. Изучение антигенных свойств вакцины «Карникан-5R» на целевых животных: определение срока формирования гуморального иммунитета и продолжительности иммунитета на протяжении периода наблюдения.
Материалы и методы. В исследовании использовали ассоциированную вакцину «Карникан-5R», состоящую из двух компонентов: лиофилизированного и жидкого. В качестве животных моделей для изучения антигенных свойств препарата служили собаки 10–12-недельного возраста. Уровень антител оценивали в реакции нейтрализации, реакции торможения гемагглютинации и реакции нейтрализации методом FAVN (Fluorescent Antibody Virus Neutralization).
Результаты. Установлено, что вакцинация собак индуцировала выработку антител к возбудителям указанных инфекций. Двукратное введение вакцины «Карникан-5R» с интервалом 21 сут стимулировало формирование напряженного гуморального ответа к 35-м сут после первого введения и прирост титра антител к вирусу чумы плотоядных в 8,6 раза, к парвовирусу собак типа 2 – в 2,1 раза, к коронавирусу собак – в 5,0 раза, к аденовирусу собак серотипа 2 – в 5,36 раза, к вирусу бешенства – в 5,72 раза. Продолжительность специфического иммунитета составила не менее 12 мес. с сохранением протективного уровня титра вирусспецифических антител к указанным возбудителям.
Заключение. Вакцина «Карникан-5R» безвредна и ареактогенна для целевых животных, способствует формированию у собак напряженного иммунитета продолжительностью не менее 12 мес. с момента бустерной вакцинации.
Введение. Мастит крупного рогатого скота является одним из наиболее распространенных и экономически значимых заболеваний в молочном животноводстве. Для его диагностики предложены три хромогенные среды, каждая из которых предназначена для выделения и дифференциации определенных групп возбудителей мастита: среда I – для бактерий семейства Enterobacteriaceae, среда II – для микроорганизмов рода Staphylococcus, среда III – для бактерий рода Streptococcus. Цель исследования. Оценка чувствительности, специфичности, дифференцирующих и ингибирующих свойств хромогенных сред, а также их апробация на образцах молока от коров с маститом.
Материалы и методы. Для оценки чувствительности использовали контрольные штаммы Streptococcus agalactiae, Staphylococcus aureus и Escherichia coli в различных концентрациях (1 × 100, 1 × 101, 1 × 102 КОЕ/мл). Рост микроорганизмов оценивали через 24 ч инкубации при 37 °C. Специфичность и дифференцирующие свойства изучали на 22 штаммах микроорганизмов, сравнивая их рост и цвет колоний на хромогенных и контрольной средах. Ингибирующие свойства оценивали по наличию или отсутствию роста культур. Апробацию сред проводили с использованием образцов молока от коров с маститом, используя стандартизированные методы посева и культивирования.
Результаты. Хромогенные среды показали сопоставимую с контрольной средой (колумбийский агар с добавлением 5% дефибринированной крови барана) чувствительность (p > 0,05). Среда I обеспечила дифференциацию микроорганизмов по цвету колоний, но имела низкие ингибирующие свойства. Среда II избирательно выделяла стафилококки, подавляя рост других бактерий. Среда III поддерживала рост энтерококков и стрептококков, в том числе Streptococcus agalactiae. Апробация на образцах молока подтвердила возможность дифференциации культур до вида.
Заключение. Разработанные хромогенные среды обеспечивают высокую точность диагностики мастита, сочетая чувствительность, специфичность и дифференцирующие свойства. Их комплексное использование позволяет охватить широкий спектр микроорганизмов и избирательно выделить целевые группы бактерий. Дальнейшая работа будет направлена на улучшение сред для подавления роста грибов и повышения точности диагностики.
Введение. При диагностике туберкулеза неспецифические реакции на туберкулин являются одной из наиболее важных проблем, увеличивающихся с каждым годом. Учитывая сложную ситуацию, в том числе и эпидемиологическую, совершенствование методов диагностики туберкулеза крупного рогатого скота является весьма актуальным.
Цель исследования. Разработка эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота и внедрение усовершенствованной схемы выявления инфекции в хозяйствах с различным эпизоотическим состоянием в условиях Республики Дагестан.
Материалы и методы. Аллергическим исследованиям подвергли 1670 гол. крупного рогатого скота, серологическим – 3502 образца сывороток крови, иммунологическим – 112 проб, бактериологическим – 57 проб патматериала, отобранного от животных, и 76 проб – из объектов внешней среды. В исследовании использовали штаммы культур Mycobacterium bovis, Mycobacterium bovis БЦЖ, Mycobacterium avium, Mycobacterium scrofulaceum.
Результаты. Установлено широкое распространение неспецифических реакций во всех категориях хозяйств республики. Определена диагностическая ценность внутрикожной и внутривенной проб в неблагополучных по туберкулезу стадах, где число дополнительно выявляемых больных составило 9,4%. Реакция связывания комплемента имеет низкую чувствительность и высокую специфичность. Результаты реакции непрямой гемагглютинации в большинстве случаев не подтверждаются классическими методами, что определяет ее низкую специфичность. Из 57 проб биоматериала было изолировано и идентифицировано 39 культур микобактерий: 8 (20,5%) – M. bovis; 31 (79,5%) – нетуберкулезные кислотоустойчивые виды, из которых 29 (93,5%) относятся к II группе по классификации Раньона, 2 (6,5%) – к III группе. Из 76 проб объектов внешней среды изолированы 43 культуры, из которых 2 (4,6%) отнесены к Mycobacterium bovis, 23 (53,5%) – ко II группе и 18 (41,9%) – к III группе по классификации Раньона. Наилучшими ростовыми и ингибирующими постороннюю микрофлору свойствами обладает яичная среда Левенштейна – Йенсена.
Заключение. Полученные данные являются базисной основой для разработки эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота.
Введение. Наиболее эффективной стратегией борьбы с африканской чумой свиней остается проведение комплекса противоэпизоотических мероприятий, направленных на предотвращение заноса и распространение возбудителя данной болезни. В настоящее время существует широкий спектр коммерческих дезинфицирующих средств, применяемых на объектах ветеринарного надзора, эффективность которых в отношении вируса африканской чумы свиней неизвестна и подтверждается только заверениями производителей, которые не всегда предоставляют обоснованные доказательства.
Цель исследования. Лабораторные испытания вирулицидной активности различных дезинфицирующих препаратов в отношении возбудителя африканской чумы свиней.
Материалы и методы. Исследовано 12 образцов дезинфицирующих средств с различным химическим составом. Первый этап по оценке свойств in vitro проводили суспензионным методом путем добавления к жидкофазному вируссодержащему материалу рабочих растворов испытуемых препаратов в экспериментальных концентрациях и при различном времени экспозиции. Второй этап осуществлялся посредством тестирования смывов с контаминированных вирусом африканской чумы свиней тест-пластин из бетона после их обработки рабочими растворами дезсредств. Каждый этап проводили в двух вариантах: без органического загрязнения и с его имитацией (экспозиция инактивированной сыворотки крови крупного рогатого скота на тест-поверхности). Образцы исследовали методом вирусовыделения в чувствительной культуре клеток селезенки свиньи. Учет и интерпретацию результатов проводили в реакции гемадсорбции. Считали, что образец препарата обладал вирулицидной активностью при отсутствии репродукции вируса африканской чумы свиней.
Результаты. Вирулицидным эффектом в отношении референтного штамма Arm 07 вируса африканской чумы свиней (II генотип) при испытаниях на тест-поверхностях обладали 9 из 12 испытуемых препаратов, что свидетельствует о необходимости проведения дальнейших исследований по оценке действенности различных дезинфицирующих средств в отношении данного возбудителя.
Заключение. Возможность присутствия в коммерческом обороте дезсредств, неспособных при заявленных в инструкции условиях инактивировать вирус африканской чумы свиней, подчеркивает необходимость совершенствования нормативно-правовых актов в целях обеспечения эффективности мер общей профилактики и борьбы с болезнью.
Введение. В Бурунди, где 80% жителей занимается животноводством, преобладают отрасли с коротким циклом воспроизводства (свиноводство, птицеводство). Несмотря на государственные меры поддержки и ежегодный прирост численности поголовья свиней, в стране не удается обеспечить население животноводческой продукцией в полной мере. Это связано с тем, что в отрасли существует немало проблем, среди которых первое место занимают заразные болезни животных. Вспышки инфекционных заболеваний могут иметь катастрофические последствия для населения страны, связанные с подрывом продовольственной безопасности, потерей доступа к животному белку, повышением себестоимости животноводческого производства из-за необходимости применения дорогостоящих мер по борьбе с заболеваниями, последствиями для здоровья человека в случае возникновения зоонозов.
Цель исследования. Изучение нозологического профиля заразной патологии свиней, выявление причин, способствующих инфицированию животных, и оценка эпизоотической ситуации по роже свиней в Республике Бурунди за период с 2018 по 2023 г.
Материалы и методы. Для анализа эпизоотической обстановки по заразным болезням свиней использовали данные ежегодных отчетов Генерального управления животноводства, а также результаты исследований Национальной ветеринарной лаборатории Республики Бурунди за 2018–2023 гг. В процессе работы выполняли ретроспективный и эпизоотологический анализ, применяли методы вариационной статистики.
Результаты. Проведенный анализ показал широкое распространение паразитарных болезней свиней, что связано с особенностями экваториального климата. В общей структуре заразных болезней инвазии занимают лидирующее место с ростом от 81,2% в 2018 г. до 92,8% в 2023 г. На втором месте по распространению находятся инфекционные болезни бактериальной этиологии – от 3,6% в 2018 г. до 6,3% в 2023 г. Выявлено стабильно растущее число случаев рожи свиней: в 2023 г. зарегистрировано в 1,7 раза больше случаев по сравнению с 2022 г. и в 7 раз больше по сравнению с 2020 г. При этом с каждым годом возрастает количество провинций, где выявляют данное заболевание. В настоящее время в 12 из 18 провинций Бурунди регистрируется рожа свиней.
Заключение. Республика Бурунди ежегодно несет большие убытки от гибели животных в результате вспышек заболеваний инфекционной природы. При отсутствии в стране специфической профилактики заразных болезней, в частности рожи, слабом контроле со стороны ветеринарной службы за перемещениями животных между домовладениями инфекции быстро распространяются. Поэтому изучение эпизоотической ситуации и разработка мер для ее стабилизации в конкретных условиях является важной научной и практической задачей для обеспечения биологической и продовольственной безопасности.
Введение. При сокращении промышленных уловов лососевых огромное значение принадлежит рыбоводным заводам по воспроизводству запасов этих видов промысловых рыб. В условиях искусственного выращивания лососевых часто отмечают поражения глаз, которые приводят к снижению уровня адаптации рыб в естественных условиях. Диагностика патологий позволяет классифицировать их по воздействующему фактору и разработать лечебные и профилактические мероприятия.
Цель исследования. Поиск и обобщение научных публикаций по проблеме патологии глаз у лососевых на предприятиях, занимающихся промышленным разведением и их товарным выращиванием или воспроизводством, в странах Азии, Америки, Европы и в Российской Федерации.
Материалы и методы. Проведен поиск русско- и англоязычных статей в наукометрических базах данных PubMed, Scopus, Web of Science, eLIBRARY. RU. Для подготовки обзора была использована информация из 44 научно-исследовательских работ, опубликованных в период с 1975 по 2024 г.
Результаты. Показано, что поражение глаз у атлантического лосося, кумжи, радужной форели в виде непаразитарной катаракты (помутнение хрусталика), кератопатии (помутнение роговицы), одно- или двухстороннего выпадения глазного яблока регистрируется на заводах по воспроизводству водных биологических ресурсов и на объектах аквакультуры в Северо-Западном регионе Российской Федерации, а также в ряде зарубежных стран. Отмечено, что поражение глаз влечет за собой снижение иммунофизиологического статуса и темпов роста в условиях аквакультуры, уменьшение количества полноценной рыбы, увеличение кормовых затрат и выпуск неполноценной рыбы в естественные водоемы с рыбоводных заводов, а иногда ее гибель. Представлена основная информация о факторах, способствующих развитию глазных патологий у лососевых. Проведен анализ лечебно-профилактических мероприятий, применяемых при поражении глаз, показана значимость дифференцированного подхода к данной проблеме в зависимости от действующего фактора.
Заключение. В мировой ветеринарной и ихтиопатологической практике проблема выпадения глаз у рыбы недостаточно изучена, количество исследований на эту тему ограниченно. В данном обзоре проанализированы и дифференцированно представлены основные факторы, способствующие развитию глазных патологий у лососевых, выявление которых позволит осуществить раннюю диагностику, определить и разработать меры профилактики или эффективные схемы лечения, что, в свою очередь, приведет к сохранению здоровья рыб, повышению продуктивности рыбоводных предприятий и снижению экономических потерь.
Введение. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота широко распространена во всех странах мира, в том числе и в Российской Федерации. Этиологический агент – Orthopneumovirus bovis, относящийся к семейству Pneumoviridae, роду Orthopneumovirus. Крупный рогатый скот – основной резервуар вируса. Цель исследования. Целью данного обзора литературы являлось обобщение и анализ опубликованных данных об особенностях клинического проявления, патогенеза и молекулярной эпизоотологии возбудителя респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.
Материалы и методы. Информационной базой для проведения исследования служили публикации из наиболее авторитетных отечественных (eLIBRARY. RU) и иностранных (Web of Science, Scopus, PubMed) источников, а также результаты собственных исследований, опубликованных в литературе.
Результаты. Заболеванию подвержены животные всех возрастов, наиболее тяжело протекает инфекция у телят в возрасте до 6 месяцев. Заболеваемость поголовья составляет в среднем 60–80%. Характер течения инфекции варьирует от бессимптомного и легкого до тяжелого заболевания нижних дыхательных путей, включая эмфизему, отек легкого, интерстициальную пневмонию и бронхопневмонию, при этом уровень смертности среди телят может достигать 20%, а у взрослых животных чаще регистрируют субклиническую форму. Вирус оказывает мощное иммуномодулирующее действие. Тяжелые повреждения дыхательных путей опосредованы в основном гиперактивностью иммунного ответа, а не самой репликацией вируса. Вирус повышает восприимчивость телят к вторичным инфекциям и способствует колонизации нижних дыхательных путей бактериями. В настоящее время с помощью филогенетического анализа нуклеотидных последовательностей генов G и N выявлено десять генетических подгрупп вируса (I–X), между которыми существует географическая корреляция. В таких регионах, как Урал, Сибирь, а также в Республике Казахстан среди крупного рогатого скота циркулируют изоляты вируса генетических подгрупп II и III.
Заключение. В обзоре представлены актуальные данные об этиологии, особенностях патогенеза и клинического проявления респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота, а также генетическом разнообразии возбудителя в мире, Российской Федерации и Республике Казахстан.
Введение. Глобальное распространение африканской чумы свиней, смертельно опасного вирусного геморрагического заболевания домашних свиней и диких кабанов, диктует необходимость применения эффективных мер предупреждения и раннего выявления вспышек. Контроль численности популяции, а также поиск туш диких кабанов, погибших от африканской чумы свиней и являющихся источником передачи вируса, считаются приоритетными мерами в управлении заболеванием в дикой природе.
Цель исследования. Обобщение имеющихся в настоящее время знаний о передовых технологиях применения беспилотных летательных аппаратов (дронов) в условиях дикой природы в сочетании с методами искусственного интеллекта. Материалы и методы. При выполнении работы применялись аналитические методы исследований с использованием баз данных PubMed, Springer, Wiley Online Library, Google Scholar, CrossRef, РИНЦ, еLIBRARY, CyberLeninka.
Результаты. В данном обзоре рассматривается возможность применения беспилотных летательных аппаратов (дронов) и искусственного интеллекта (нейронных сетей) для обнаружения диких кабанов и их останков в контексте борьбы с африканской чумой свиней. Подробно обсуждается роль диких кабанов в распространении заболевания и необходимость контроля их популяции, значение своевременного удаления трупов кабанов, при этом подчеркивается важность использования современных технологий для учета численности и плотности популяции дикого кабана. Проанализирована информация о применении дронов, оснащенных различными техническими средствами, при изучении популяций крупных видов животных в условиях дикой природы, отмечены преимущества и особенности использования беспилотных летательных аппаратов. Также обобщен опыт применения нейронных сетей в контексте автоматической обработки полученных с помощью дронов изображений животных.
Заключение. Интеграция беспилотных летательных аппаратов и искусственного интеллекта, вероятно, может стать ключевым инструментом в контроле популяции дикого кабана и быстром обнаружении туш кабанов, погибших вследствие африканской чумы свиней, что в целом позволит повысить эффективность мер, направленных на борьбу с данным заболеванием.
Издательство
- Издательство
- ФГБУ «ВНИИЗЖ»
- Регион
- Россия, Владимир
- Почтовый адрес
- Россия, 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец
- Юр. адрес
- 600901, ВЛАДИМИРСКАЯ ОБЛАСТЬ, Г. ВЛАДИМИР, МКР ЮРЬЕВЕЦ, МКР. ЮРЬЕВЕЦ
- ФИО
- Рыбин Роман Николаевич (Руководитель)
- E-mail адрес
- arriah@fsvps.gov.ru
- Контактный телефон
- +7 (903) 8991501
- Сайт
- https://arriah.ru