В последнее время всё больше внимания уделяется проблеме поселения на раковинах моллюсков таких эпибионтов-вредителей, как губки семейства Clionaidae. Это связано с их негативным воздействием на массовые объекты марикультуры, в частности на тихоокеанских устриц Magallana gigas (Thunberg, 1793). Заражённые особи изымаются из товарооборота, что приводит к коммерческим потерям в марикультурных хозяйствах. У заражённых устриц наблюдается снижение скорости роста, уменьшение массы мягких тканей, а также увеличивается процент смертности особей в популяции. Кроме того, у заражённых особей фиксируется обсеменённость патогенной для человека микрофлорой. Несмотря на очевидную фундаментальную и практическую актуальность, информация о механизмах влияния сверлящих губок на функциональное состояние двустворчатых моллюсков довольно ограничена, фрагментарна и не структурирована. Анализ и обобщение данных могут способствовать разработке комплексных мероприятий, направленных на предотвращение заражения, смягчение негативных последствий и разработку методов лечения двустворчатых моллюсков при инвазии сверлящими губками. Данная обзорная работа посвящена обновлению и систематизации информации о распространении сверлящих губок семейства Clionaidae, их влиянии на организм двустворчатых моллюсков на примере тихоокеанских устриц, а также экономических последствиях распространения инвазии губок среди объектов марикультуры.
Предпросмотр статьи
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
Двустворчатые моллюски — Magallana gigas (Thunberg, 1793) (тихоокеанская устрица), Saccostrea glomerata (A. Gould, 1850) (ранее Saccostrea commerceis, известная также как сиднейская каменная устрица), Ostrea edulis (Linnaeus, 1758) (европейская плоская устрица) и Crassostrea virginica (Gmelin, 1791) (восточная устрица или американская чашевидная устрица) относятся к числу наиболее интенсивно культивируемых видов двустворчатых моллюсков в разных регионах мира [Molnar et al., 2008; Gosling, 2015; Van In et al., 2016; Šegvić-Bubić et al., 2020; Botta et al., 2020]. В связи с тем, что марикультурные хозяйства часто располагаются в динамических прибрежных участках акватории, основной проблемой для них являются вспышки инфекционных заболеваний и паразитарных инвазий, приводящих к сокращению популяций на фермах [Behringer et al., 2020; Botta et al., 2020]. Эпизоотии часто приводят к массовой гибели моллюсков и, как следствие, большим экономическим потерям на фермах [Pernet et al., 2016; Moor et al., 2022].
Список литературы
1. Гаевская А. В. Паразиты, болезни и вредители мидий (Mytilus, Mytilidae). II. Моллюски (Mollusca). - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2006. - 100 с. - https://repository.marine-research.ru/handle/299011/7876.
2. Гаевская А. В., Лебедовская М. В. Гигантская устрица (Crassostrea gigas) (Thunberg, 1793) - общая характеристика // Паразиты и болезни гигантской устрицы (Crassostrea gigas) в условиях культивирования / НАН Украины, Ин-т биологии юж. морей им. А. О. Ковалевского. - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2010. - Гл. 2. - С. 15-22. - https://repository.marine-research.ru/ handle/299011/2578.
3. Гаевская А. В., Лебедовская М. В. Микробиологические и паразитологические аспекты биотехнологии культивирования гигантской устрицы (Crassostrea gigas) в Чёрном море // Промысловые биоресурсы Чёрного и Азовского морей / НАН Украины, Ин-т биологии юж. морей им. А. О. Ковалевского. - Севастополь: ЭКОСИ-Гидрофизика, 2011. - Гл. 6.2. - С. 193-209. - https://repository.marine-research.ru/handle/299011/1363.
4. Копытина Н. И., Лебедовская М. В. Микромицеты-эпибионты гигантской устрицы Crassostrea gigas, культивируемой в Чёрном море // Морской экологический журнал. - 2014. - Т. 13, № 2. - С. 41-44. - https://repository.marine-research.ru/handle/299011/1341.
5. Кракатица Т. Ф. Сокращение ареала и уменьшение численности устриц в Егорлыцком заливе // Моллюски. Основные результаты их изучения: автореф. докл., сб. 6 / АН СССР, Зоол. ин-т. - Ленинград: Наука, 1979. - С. 112-114.
6. Лебедовская М. В. Морфометрические и микробиологические показатели гигантской устрицы Crassostrea gigas при поражении сверлящей губкой Pione vastifica // Морской экологический журнал. - 2013. - Т. 12, № 1. - С. 48-51. - https://repository.marine-research.ru/handle/299011/1262.
7. Шубникова Е. А. Технические средства выращивания гигантской устрицы // Биологическое разнообразие: изучение, сохранение, восстановление, рациональное использование: материалы II Междунар. науч.-практ. конф., Керчь, 27-30 мая 2020 г. / Керчен. гос. мор. технол. ун-т [и др.]. - Симферополь: АРИАЛ, 2020. - С. 518-523. -.
8. Alderman D. J. Epizootiology of Marteilia refringens in Europe // Marine Fisheries Review. - 1979. - Vol. 41, no. 1/2. - P. 67-69.
9. Allam B., Espinosa E. P. Bivalve immunity and response to infections: are we looking at the right place? // Fish & Shellfish Immunology. - 2016. - Vol. 53. - P. 4-12. -. DOI: 10.1016/j.fsi.2016.03.037
10. Allam B., Espinosa E. P. Mucosal immunity in mollusks // Mucosal Health in Aquaculture / Eds: B. H. Beck, E. Peatman. - Amsterdam [et. al.]: Acad. Press, 2015. - P. 325-370. -. DOI: 10.1016/B978-0-12-417186-2.00012-1
11. Allam B., Raftos D. Immune responses to infectious diseases in bivalves // Journal of Invertebrate Pathology. - 2015. - Vol. 131. - P. 121-136. -. DOI: 10.1016/j.jip.2015.05.005
12. Allen S. M., Burnett L. E. The effects of intertidal air exposure on the respiratory physiology and the killing activity of hemocytes in the pacific oyster, Crassostrea gigas (Thunberg) // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. - 2008. - Vol. 357, iss. 2. - P. 165-171. -. DOI: 10.1016/j.jembe.2008.01.013
13. Andreyeva A. Y., Kladchenko E. S., Kukhareva T. A. Shift in functional and morphological parameters of the Pacific oyster hemocytes after exposure to hypoxia // Regional Studies in Marine Science. - 2021. - Vol. 48. - Art. no. 102062. -. DOI: 10.1016/j.rsma.2021.102062
14. Balouet G., Poder M., Cahour A. Haemocytic parasitosis: morphology and pathology of lesions in the French flat oyster, Ostrea edulis L. // Aquaculture. - 1983. - Vol. 34, iss. 1-2. - P. 1-14. -. DOI: 10.1016/0044-8486(83)90287-9
15. Bautista-Guerrero E., Carballo J. L., Maldonado M. Abundance and reproductive patterns of the excavating sponge Cliona vermifera: a threat to Pacific coral reefs? // Coral Reefs. - 2014. - Vol. 33. - P. 259-266. -. DOI: 10.1007/s00338-013-1094-1
16. Behringer D. C., Wood C. L., Krkošek M., Bushek D. Disease in fisheries and aquaculture // Marine Disease Ecology / Eds: B. R. Silliman [et al.]. - Oxford: Oxford Univ. Press, 2020. - P. 183-212.
17. Böök I. M. Boring sponges and bored oysters-interactions between the bioeroding sponge Cliona sp. and the New Zealand flat oyster Ostrea chilensis: Thesis / Victoria Univ. of Wellington. - Wellington, New Zealand, 2024. - 183 p.
18. Borchiellini C., Chombard C., Manuel M., Alivon E., Vacelet J., Boury-Esnault N. Molecular phylogeny of Demospongiae: implications for classification and scenarios of character evolution // Molecular Phylogenetics and Evolution. - 2004. - Vol. 32, iss. 3. - P. 823-837. -. DOI: 10.1016/j.ympev.2004.02.021
19. Borchiellini C., de Pao Mendonca K., Vernale A., Rocher C., Ereskovsky A., Vacelet J., Renard E. Porifera (sponges): recent knowledge and new perspectives // eLS [Encyclopedia of Life Sciences]. - Chichester: John Wiley & Sons, 2021. - Vol. 2. - P. 1-10. -. DOI: 10.1002/9780470015902.a0029283
20. Botta R., Asche F., Borsum J. S., Camp E. V. A review of global oyster aquaculture production and consumption // Marine Policy. - 2020. - Vol. 117. - Art. no. 103952. -. DOI: 10.1016/j.marpol.2020.103952
21. Boury-Esnault N., Klautau M., Bezac C., Wulff J., Sole-Cava A. M. Comparative study of putative conspecific sponge populations from both sides of the Isthmus of Panama // Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. - 1999. - Vol. 79, iss. 1. - P. 39-50. -. DOI: 10.1017/S0025315498000046
22. Calcinai B., Bavestrello G., Cerrano C. Bioerosion micro-patterns as diagnostic characteristics in boring sponges // Bollettino dei Musei e degli Istituti Biologici dell’Universitá di Genova. - 2004. - Vol. 68. - P. 229-238.
23. Canesi L., Gallo G., Gavioli M., Pruzzo C. Bacteria-hemocyte interactions and phagocytosis in marine bivalves // Microscopy Research and Technique. - 2002. - Vol. 57, no. 6. - P. 469-476. -. DOI: 10.1002/jemt.10100
24. Carballo J. L., Bautista E., Nava H., Cruz-Barraza J. A., Chávez J. A. Boring sponges, an increasing threat for coral reefs affected by bleaching events // Ecology and Evolution. - 2013. - Vol. 3, iss. 4. - P. 872-886. -. DOI: 10.1002/ece3.452
25. Carballo J. L., Bell J. J. Climate change and sponges: an introduction // Climate Change, Ocean Acidification and Sponges: Impacts Across Multiple Levels of Organization / eds: J. L. Carballo, J. J. Bell. - Cham, Switzerland: Springer, 2017. - P. 1-11. -. DOI: 10.1007/978-3-319-59008-0_1
26. Carballo J. L., Cruz-Barraza J. A., Vega C., Nava H., Chávez-Fuentes M. D. C. Sponge diversity in eastern tropical Pacific coral reefs: an interoceanic comparison // Scientific Reports. - 2019. - Vol. 9, no. 1. - Art. no. 9409. -. DOI: 10.1038/s41598-019-45834-4
27. Carroll J. M., Shaughnessy K. A., Diedrich G. A., Finelli C. M. Are oysters being bored to death? Influence of Cliona celata on Crassostrea virginica condition, growth and survival // Diseases of Aquatic Organisms. - 2015. - Vol. 117, no. 1. - P. 31-44. -. DOI: 10.3354/dao02928
28. Carroll J., Reitsma J. Fouling by Cliona (boring sponge) // Diseases of Bivalves / Ed. R. Smolowitz. - London [et al.]: Acad. Press, 2025. - P. 37-50. -. DOI: 10.1016/B978-0-12-820339-2.00010-3
29. Carver C. E., Thériault I., Mallet A. L. Infection of cultured eastern oysters Crassostrea virginica by the boring sponge Cliona celata, with emphasis on sponge life history and mitigation strategies // Journal of Shellfish Research. - 2010. - Vol. 29, no. 4. - P. 905-915. -. DOI: 10.2983/035.029.0423
30. Chelebieva E. S., Lavrichenko D. S., Gostyukhina O. L., Podolskaya M. S., Kladchenko E. S. The boring sponge (Pione vastifica, Hancock, 1849) induces oxidative stress in the Pacific oyster (Magallana gigas, Thunberg, 1793) // Comparative Biochemistry and Physiology. Pt. B: Biochemistry and Molecular Biology. - 2024. - Vol. 273. - Art. no. 110980. -. DOI: 10.1016/j.cbpb.2024.110980
31. Chen Y., Liu C., Li S., Liu Z., Xie L., Zhang R. Repaired shells of the pearl oyster largely recapitulate normal prismatic layer growth: A proteomics study of shell matrix proteins // ACS Biomaterials Science & Engineering. - 2018. - Vol. 5, iss. 2. - P. 519-529. -. DOI: 10.1021/acsbiomaterials.8b01355
32. Chi Y., Yang H., Shi C., Yang B., Bai X., Li Q. Comparative transcriptome and gene co-expression network analysis identifies key candidate genes associated with resistance to summer mortality in the Pacific oyster (Crassostrea gigas) // Aquaculture. - 2023. - Vol. 577. - Art. no. 739922. -. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2023.739922
33. Clark M. S., Peck L. S., Arivalagan J., Backeljau T., Berland S., Cardoso J. C. R., Caurcel C., Chapelle G., De Noia M., Dupont S., Gharbi K., Hoffman J. I., Last K. S., Marie A., Melzner F., Michalek K., Morris J., Power D. M., Ramesh K., Sanders T., Sillanpää K., Sleight V. A., Stewart-Sinclair P. J., Sundell K., Telesca L., Vendrami D. L. J., Ventura A., Wilding T. A., Yarra T., Harper E. M. Deciphering mollusc shell production: the roles of genetic mechanisms through to ecology, aquaculture and biomimetics // Biological Reviews. - 2020. - Vol. 95, no. 6. - P. 1812-1837. -. DOI: 10.1111/brv.12640
34. Coates C. J., Söderhäll K. The stress-immunity axis in shellfish // Journal of Invertebrate Pathology. - 2021. - Vol. 186. - Art. no. 107492. -. DOI: 10.1016/j.jip.2020.107492
35. Coleman S. E. The effects of boring sponge on oyster soft tissue, shell integrity, and predator-related mortality: Thesis / The Univ. of North Carolina. - Chapel Hill, 2014. - 54 p.
36. Costello K. E., Lynch S. A., O’Riordan R. M., McAllen R., Culloty S. C. The importance of marine bivalves in invasive host-parasite introductions // Frontiers in Marine Science. - 2021. - Vol. 8. - Art. no. 609248. -. DOI: 10.3389/fmars.2021.609248
37. Daume S., Fromont J., Parker F., Davidson M., Murphy D., Hart A. Quantifying sponge erosions in Western Australian pearl oyster shells // Aquaculture Research. - 2010. - Vol. 41, iss. 9. - P. e260-e267. -. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2010.02518.x
38. De Bakker D. M., Webb A. E., van den Bogaart L. A., van Heuve S. M., Meesters E. H., van Duyl F. C. Quantification of chemical and mechanical bioerosion rates of six Caribbean excavating sponge species found on the coral reefs of Curaçao // PloS ONE. - 2018. - Vol. 13, iss. 5. - Art. no. e0197824. -. DOI: 10.1371/journal.pone.0197824
39. De la Ballina N. R., Maresca F., Cao A., Villalba A. Bivalve haemocyte subpopulations: a review // Frontiers in Immunology. - 2022. - Vol. 13. - Art. no. 826255. -. DOI: 10.3389/fimmu.2022.826255 EDN: AIVKDU
40. De Paula S. M., Silveira M. Studies on molluscan shells: contributions from microscopic and analytical methods // Micron. - 2009. - Vol. 40, iss. 7. - P. 669-690. -. DOI: 10.1016/j.micron.2009.05.006
41. Dieudonne J., Carroll J. M. The impacts of boring sponges on oyster health across multiple sites and tidal heights // Estuaries and Coasts. - 2022. - Vol. 45, iss. 1. - P. 213-224. -. DOI: 10.1007/s12237-021-00942-1
42. Dohrmann M., Collins A. G., Woerheide G. New insights into the phylogeny of glass sponges (Porifera, Hexactinellida): monophyly of Lyssacinosida and Euplectellinae, and the phylogenetic position of Euretidae // Molecular Phylogenetics and Evolution. - 2009. - Vol. 52, iss. 1. - P. 257-262. -. DOI: 10.1016/j.ympev.2009.01.010
43. Dorgan K. M., Moseley R. D., Titus E., Watson H., Cole S. M., Walton W. Dynamics of mud blister worm infestation and shell repair by oysters // The Biological Bulletin. - 2021. - Vol. 240, no. 2. - P. 118-131. -. DOI: 10.1086/713145
44. Duckworth A. R., Peterson B. J. Effects of seawater temperature and pH on the boring rates of the sponge Cliona celata in scallop shells // Marine Biology. - 2013. - Vol. 160. - P. 27-35. -. DOI: 10.1007/s00227-012-2053-z
45. Dunn R. P., Eggleston D. B., Lindquist N. Oyster-sponge interactions and bioerosion of reef-building substrate materials: implications for oyster restoration // Journal of Shellfish Research. - 2014. - Vol. 33, no. 3. - P. 727-738. -. DOI: 10.2983/035.033.0307
46. Ehrlich H. The circle: biomineralization-demineralization-remineralization in nature // Marine Biological Materials of Invertebrate Origin / H. Ehrlich. - Cham, Switzerland: Springer, 2019. - P. 53-65. -. DOI: 10.1007/978-3-319-92483-0_4
47. El-Sorogy A. S., Alharbi T., Richiano S. Bioerosion structures in high-salinity marine environments: Evidence from the Al-Khafji coastline, Saudi Arabia // Estuarine, Coastal and Shelf Science. - 2018. - Vol. 204. - P. 264-272. -. DOI: 10.1016/j.ecss.2018.03.005
48. Elston R. A. Infectious diseases of the Pacific oyster, Crassostrea gigas // Annual Review of Fish Diseases. - 1993. - Vol. 3. - P. 259-276. -. DOI: 10.1016/0959-8030(93)90038-D
49. Encomio V. G., Stickler S. M., Allen S. K., Chu F. L. Performance of “natural Dermo-resistant” oyster stocks - survival, disease, growth, condition and energy reserves // Journal of Shellfish Research. - 2005. - Vol. 24, iss. 1. - P. 143-155.
50. Ereskovsky A., Kovtun O. A., Pronin K. K., Apostolov A., Erpenbeck D., Ivanenko V. Sponge community of the western Black Sea shallow water caves: diversity and spatial distribution // PeerJ. - 2018. - Vol. 6. - Art. no. e4596. -. DOI: 10.7717/peerj.4596
51. Ereskovsky A., Lavrov A. Porifera // Invertebrate Histology / Ed. E. E. LaDouceur. - Hoboken, NJ: Wiley-Blackwell, 2021. - P. 19-54.
52. Erpenbeck D., Gholami A., Hesni M. A., Ranjbar M. S., Galitz A., Eickhoff B., Namuth L., Schumacher T., Esmaeili H. R., Wörheide G., Teimori A. Molecular biodiversity of Iranian shallow water sponges // Systematics and Biodiversity. - 2020. - Vol. 18, iss. 2. - P. 192-202. -. DOI: 10.1080/14772000.2020.1737978
53. Evcen A., Çınar M. E. Bioeroding sponge species (Porifera) in the Aegean Sea (Eastern Mediterranean) // Journal of the Black Sea / Mediterranean Environment. - 2015. - Vol. 21, no. 3. - P. 285-306.
54. Fang J. K. H., Schönberg C. H. L., Hoegh-Guldberg O., Dove S. Day - night ecophysiology of the photosymbiotic bioeroding sponge Cliona orientalis Thiele, 1900 // Marine Biology. - 2016. - Vol. 163. - Art. no. 100. -. DOI: 10.1007/s00227-016-2848-4
55. Ferrario F., Calcinai B., Erpenbeck D., Galli P., Wörheide G. Two Pione species (Hadromerida, Clionaidae) from the Red Sea: a taxonomical challenge // Organisms Diversity & Evolution. - 2010. - Vol. 10. - P. 275-285. -. DOI: 10.1007/s13127-010-0027-x
56. Fleury C., Marin F., Marie B., Luquet G., Thomas J., Josse C., Serpentini A., Lebel J. M. Shell repair process in the green ormer Haliotis tuberculata: a histological and microstructural study // Tissue and Cell. - 2008. - Vol. 40, iss. 3. - P. 207-218. -. DOI: 10.1016/j.tice.2007.12.002
57. Fromont J., Craig R., Rawlinson L., Alder J. Excavating sponges that are destructive to farmed pearl oysters in Western and Northern Australia // Aquaculture Research. - 2005. - Vol. 36, iss. 2. - P. 150-162. -. DOI: 10.1111/j.1365-2109.2004.01198.x
58. Furuhashi T., Schwarzinger C., Miksik I., Smrz M., Beran A. Molluscan shell evolution with review of shell calcification hypothesis // Comparative Biochemistry and Physiology Pt. B: Biochemistry and Molecular Biology. - 2009. - Vol. 154, iss. 3. - P. 351-371. -. DOI: 10.1016/j.cbpb.2009.07.011
59. Glynn P. W., Manzello D. P. Bioerosion and coral reef growth: a dynamic balance // Coral Reefs in the Anthropocene / Ed. C. Birkeland. - Dordrecht [et al.]: Springer, 2015. - P. 67-97. -. DOI: 10.1007/978-94-017-7249-5_4
60. Gosling E. Marine Bivalve Molluscs. - 2nd ed. - Chichester, UK: John Wiley & Sons, 2015. - 536 p.
61. Gu Z., Wei H., Cheng F., Wang A., Liu C. Effects of air exposure time and temperature on physiological energetics and oxidative stress of winged pearl oyster (Pteria penguin) // Aquaculture Reports. - 2020. - Vol. 17. - Art. no. 100384. -. DOI: 10.1016/j.aqrep.2020.100384
62. Guida V. G. The physiological ecology of the oyster-burrowing sponge symbiosis and the roles of symbioses in marine systems: PhD diss. / North Carolina State Univ. - Raleigh, USA, 1977. - 147 p.
63. Hanley T. C., White J. W., Stallings C. D., Kimbro D. L. Environmental gradients shape the combined effects of multiple parasites on oyster hosts in the northern Gulf of Mexico // Marine Ecology Progress Series. - 2019. - Vol. 612. - P. 111-125. -. DOI: 10.3354/meps12849
64. Hine P. M. The inter-relationships of bivalve haemocytes // Fish & Shellfish Immunology. - 1999. - Vol. 9, iss. 5. - P. 367-385. -. DOI: 10.1006/fsim.1998.0205
65. Holmes K. E. Effects of eutrophication on bioeroding sponge communities with the description of new West Indian sponges, Cliona spp. (Porifera: Hadromerida: Clionidae) // Invertebrate Biology. - 2000. - Vol. 119, no. 2. - P. 125-138. -. DOI: 10.1111/j.1744-7410.2000.tb00001.x
66. Hooper J. N. A., Van Soest R. W. M. Systema Porifera. A guide to the classification of sponges // System a Porifera: a Guide to the Classification of Sponges / Eds: J. N. A. Hooper [et al.]. - Boston: Springer, 2002. - P. 1-7. -. DOI: 10.1007/978-1-4615-0747-5_1
67. Huang J., Liu Y., Jiang T., Dong W., Xie L., Zhang R. Direct control of shell regeneration by the mantle tissue in the pearl oyster Pinctada fucata // Journal of Structural Biology. - 2023. - Vol. 215, iss. 2. - Art. no. 107956. -. DOI: 10.1016/j.jsb.2023.107956
68. Huang J., Zhang R. The mineralization of molluscan shells: some unsolved problems and special considerations // Frontiers in Marine Science. - 2022. - Vol. 9. - Art. no. 874534. -. DOI: 10.3389/fmars.2022.874534
69. Huiping Y. Immunological assays of hemocytes in molluscan bivalves as biomarkers to evaluate stresses for aquaculture // Bulletin of Japan Fisheries Research and Education Agency. - 2021. - No. 50. - P. 31-45.
70. Hüning A. K., Lange S. M., Ramesh K., Jacob D. E., Jackson D. J., Panknin U., Gutowska M. A., Philipp E. E. R., Rosenstiel P., Lucassen M., Melzner F. A shell regeneration assay to identify biomineralization candidate genes in mytilid mussels // Marine Genomics. - 2016. - Vol. 27. - P. 57-67. -. DOI: 10.1016/j.margen.2016.03.011
71. Ivanina A. V., Falfushynska H. I., Beniash E., Piontkivska H., Sokolova I. M. Biomineralization-related specialization of hemocytes and mantle tissues of the Pacific oyster Crassostrea gigas // Journal of Experimental Biology. - 2017. - Vol. 220, no. 18. - P. 3209-3221. -. DOI: 10.1242/jeb.160861
72. Jacob D. E., Soldati A. L., Wirth R., Huth J., Wehrmeister U., Hofmeister W. Nanostructure, composition and mechanisms of bivalve shell growth // Geochimica et Cosmochimica Acta. - 2008. - Vol. 72, iss. 22. - P. 5401-5415. -. DOI: 10.1016/j.gca.2008.08.019
73. Johnstone M. B., Gohad N. V., Falwell E. P., Hansen D. C., Hansen K. M., Mount A. S. Cellular orchestrated biomineralization of crystalline composites on implant surfaces by the eastern oyster, Crassostrea virginica (Gmelin, 1791) // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. - 2015. - Vol. 463. - P. 8-16. -. DOI: 10.1016/j.jembe.2014.10.014
74. Kawabe S., Takada M., Shibuya R., Yokoyama Y. Biochemical changes in oyster tissues and hemolymph during long-term air exposure // Fisheries Science. - 2010. - Vol. 76. - P. 841- 855. -. DOI: 10.1007/s12562-010-0263-1
75. Kingma E. The Role of the excavating sponge Cliona celata in oyster shells: master’s thesis / Utrecht Univ. Netherlands. - Utrecht, 2022. - 30 p.
76. Kladchenko E. S., Andreyeva A. Y., Kukhareva T. A. effect of ranged short-term hypoxia on functional and morphological parameters of hemocytes in the Pacific oyster Сrassostrea gigas (Thunberg, 1793) // Journal of Evolutionary Biochemistry and Physiology. - 2022. - Vol. 58, no. 1. - P. 45-53. -. DOI: 10.1134/S0022093022010045
77. Kladchenko E. S., Chelebieva E. S., Podolskaya M. S., Gostyukhina O. L., Gavruseva T. V., Lavrichenko D. S. Effects of boring sponge Pione vastifica (Hancock, 1849) infestation on redox status and histological structure in Pacific oyster Magallana gigas (Thunberg, 1793) gills // Ecologica Montenegrina. - 2024. - Vol. 77. - P. 211-223. -. DOI: 10.37828/em.2024.77.21
78. Kocot K. M., Aguilera F., McDougall C., Jackson D. J., Degnan B. M. Sea shell diversity and rapidly evolving secretomes: insights into the evolution of biomineralization // Frontiers in Zoology. - 2016. - Vol. 13. - Art. no. 23. -. DOI: 10.1186/s12983-016-0155-z
79. Kumar P. S. Bioeroding sponges in aquaculture systems // Marine Sponges: Chemicobiological and Biomedical Applications / Eds: R. Pallela, H. Ehrlich. - Hyderabad, India: Springer, 2016. - P. 53-56. -. DOI: 10.1007/978-81-322-2794-6_4
80. Le Cam S., Viard F. Infestation of the invasive mollusc Crepidula fornicata by the native shell borer Cliona celata: a case of high parasite load without detrimental effects // Biological Invasions. - 2011. - Vol. 13. - P. 1087-1098. -. DOI: 10.1007/s10530-011-9958-1 EDN: EVVXUS
81. Liao Z., Liu F., Wang Y., Fan X., Li Y., He J., Buttino I., Yan X., Zhang X., Shi G. Transcriptomic response of Mytilus coruscus mantle to acute sea water acidification and shell damage // Frontiers in Physiology. - 2023. - Vol. 14. - Art. no. 1289655. -. DOI: 10.3389/fphys.2023.1289655
82. Maldonado M., Riesgo A. Gametogenesis, embryogenesis, and larval features of the oviparous sponge Petrosia ficiformis (Haplosclerida, Demospongiae) // Marine Biology. - 2009. - Vol. 156. - P. 2181-2197. -. DOI: 10.1007/s00227-009-1248-4
83. Mao Che L., Le Campion-Alsumar, T., Boury-Esnault N., Payri C., Golubic S., Bézac C. Biodegradation of shells of the black pearl oyster, Pinctada margaritifera var. cumingii, by microborers and sponges of French Polynesia // Marine Biology. - 1996. - Vol. 126. - P. 509-519. -. DOI: 10.1007/BF00354633
84. Mariani S., Uriz M. J., Turon X. Larval bloom of the oviparous sponge Cliona viridis: coupling of larval abundance and adult distribution // Marine Biology. - 2000. - Vol. 137. - P. 783-790. -. DOI: 10.1007/s002270000400
85. Marie B., Zanella-Cléon I., Guichard N., Becchi M., Marin F. Novel proteins from the calcifying shell matrix of the Pacific oyster Crassostrea gigas // Marine Biotechnology. - 2011. - Vol. 13. - P. 1159-1168. -. DOI: 10.1007/s10126-011-9379-2
86. Marine Benthic Fauna of Chilean Patagonia: Illustrated Identification Guide / Eds: V. Häussermann, G. Försterra - Santiago: Nature in Focus, 2009. - 1000 p.
87. McDowell I. C., Nikapitiya C., Aguiar D., Lane C. E., Istrail S., Gomez-Chiarri M. Transcriptome of American oysters, Crassostrea virginica, in response to bacterial challenge: insights into potential mechanisms of disease resistance // PLoS One. - 2014. - Vol. 9, iss. 8. - Art. e105097. -. DOI: 10.1371/journal.pone.0105097
88. Molnar J. L., Gamboa R. L., Revenga C., Spalding M. D. Assessing the global threat of invasive species to marine biodiversity // Frontiers in Ecology and the Environment. - 2008. - Vol. 6, no. 9. - P. 485-492. -. DOI: 10.1890/070064
89. Moor J., Ropicki A., Anderson J. L., Asche F. Stochastic modeling and financial viability of mollusk aquaculture // Aquaculture. - 2022. - Vol. 552. - Art. no. 737963. -. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2022.737963
90. Morrow C., Cárdenas P. Proposal for a revised classification of the Demospongiae (Porifera) // Frontiers in Zoology. - 2015. - Vol. 12. - Art. no. 7. -. DOI: 10.1186/s12983-015-0099-8
91. Mote S., Schönberg C. H., Samaai T., Gupta V., Ingole B. A new clionaid sponge infests live corals on the west coast of India (Porifera, Demospongiae, Clionaida) // Systematics and Biodiversity. - 2019. - Vol. 17, iss. 2. - P. 190-206. - 10.1080/14772000.2018.1513 430. DOI: 10.1080/14772000.2018.1513430
92. Mount A. S., Wheeler A. P., Paradkar R. P., Snider D. Hemocyte-mediated shell mineralization in the eastern oyster // Science. - 2004. - Vol. 304, no. 5668. - P. 297-300. -. DOI: 10.1126/science.1090506
93. Neumann A. C. Observations on coastal erosion in Bermuda and measurements of the boring rate of the sponge, Cliona lampa 1, 2 // Limnology and Oceanography. - 1966. - Vol. 11, iss. 1. - P. 92-108. -. DOI: 10.4319/lo.1966.11.1.0092
94. Pernet F., Lupo C., Bacher C., Whittington R. J. Infectious diseases in oyster aquaculture require a new integrated approach // Philosophical Transactions of the Royal Society. B: Biological Sciences. - 2016. - Vol. 371, no. 1689. - Art. no. 20150213. -. DOI: 10.1098/rstb.2015.0213
95. Piscitelli M., Corriero G., Gaino E., Uriz M. J. Reproductive cycles of the sympatric excavating sponges Cliona celata and Cliona viridis in the Mediterranean Sea // Invertebrate Biology. - 2011. - Vol. 130, no. 1. - P. 1-10. -. DOI: 10.1111/j.1744-7410.2010.00216.x
96. Pourmozaffar S., Tamadoni Jahromi S., Rameshi H., Sadeghi A., Bagheri T., Behzadi S., Gozari M., Reza Zahedi M., Abrari Lazarjani S. The role of salinity in physiological responses of bivalves // Reviews in Aquaculture. - 2020. - Vol. 12, iss. 3. - P. 1548-1566. -. DOI: 10.1111/raq.12397
97. Pouvreau S., Lapègue S., Arzul I., Boudry P. Fifty years of research to counter the decline of the European flat oyster (Ostrea edulis): a review of French achievements and prospects for the restoration of remaining beds and revival of aquaculture production // Aquatic Living Resources. - 2023. - Vol. 36. - Art. no. 13. -. DOI: 10.1051/alr/2023006
98. Pulido Mantas T., Bavestrello G., Bertolino M., Cerrano C., Pica D., Roveta C., Calcinai B. A 3D innovative approach supporting the description of boring sponges of the precious red coral Corallium rubrum // Journal of Marine Science and Engineering. - 2022. - Vol. 10, iss. 7. - Art. no. 868. -. DOI: 10.3390/jmse10070868
99. Pyecroft S. B. Shell-boring polychaetes (mudworms) and sponges affecting oysters, scallops, and abalone // Aquaculture Pathophysiology / Eds: F. S. B. Kibenge [et al.]. - London [et al.]: Acad. Press, 2022. - Vol. 2, chap. 77. - P. 583-591. -. DOI: 10.1016/B978-0-323-95434-1.00077-2
100. Reveillaud J., Allewaert C., Pérez T., Vacelet J., Banaigs B., Vanreusel A. Relevance of an integrative approach for taxonomic revision in sponge taxa: case study of the shallow-water Atlanto-Mediterranean Hexadella species (Porifera: Ianthellidae: Verongida) // Invertebrate Systematics. - 2012. - Vol. 26, no. 3. - P. 230-248. -. DOI: 10.1071/IS11044
101. Rosell D. Morphological and ecological relationships of two clionid sponges // Ophelia. - 1994. - Vol. 40, no. 1. - P. 37-50. -. DOI: 10.1080/00785326.1994.10429549
102. Rosell D., Uriz M. J. Excavating and endolithic sponge species (Porifera) from the Mediterranean: species descriptions and identification key // Organisms Diversity & Evolution. - 2002. - Vol. 2, iss. 1. - P. 55-86. -. DOI: 10.1078/1439-6092-00033
103. Rosell D., Uriz M. J. Phylogenetic relationships within the excavating Hadromerida (Porifera), with a systematic revision // Cladistics. - 1997. - Vol. 13, iss. 4. - P. 349-366. -. DOI: 10.1006/clad.1997.0047
104. Rosell D., Uriz M. J., Martin D. Infestation by excavating sponges on the oyster (Ostrea edulis) populations of the Blanes littoral zone (north-western Mediterranean Sea) // Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. - 1999. - Vol. 79, iss. 3. - P. 409-413. -. DOI: 10.1017/S0025315498000526
105. Rützler K. Impact of crustose clionid sponges on Caribbean reef corals // Acta Geológica Hispánica. - 2002. - Vol. 37, no. 1. - P. 61-72.
106. Rützler K. The role of burrowing sponges in bioerosion // Oecologia. - 1975. - Vol. 19, no. 3. - P. 203-216. -. DOI: 10.1007/BF00345306
107. Sacristán-Soriano O., Turon X., Hill M. Microbiome structure of ecologically important bioeroding sponges (family Clionaidae): the role of host phylogeny and environmental plasticity // Coral Reefs. - 2020. - Vol. 39, iss. 5. - P. 1285-1298. -. DOI: 10.1007/s00338-020-01962-2
108. Schönberg C. H. L. Substrate effects on the bioeroding demosponge Cliona orientalis. Bioerosion rates // Marine Ecology. - 2002. - Vol. 23, iss. 4. - P. 313-326. -. DOI: 10.1046/j.1439-0485.2002.02811.x
109. Schönberg C. H. L., Fang J. K. H., Carballo J. L. Bioeroding sponges and the future of coral reefs // Climate Change, Ocean Acidification and Sponges: Impacts Across Multiple Levels of Organization / Eds: J. L. Carballo, J. J. Bell. - Cham, Switzerland: Springer, 2017. - P. 179-372. -. DOI: 10.1007/978-3-319-59008-0_7
110. Schönberg C. H. L., Ortiz J.-C. Is sponge bioerosion increasing // Proceedings of the 11th International Coral Reef Symposium, Fort Lauderdale, Florida, USA, July 7-11, 2008 / Eds: B. Riegl, R. E. Dodge. - Davie, USA: Nat. Coral Reef Inst., 2008. - P. 520-523.
111. Šegvić-Bubić T., Žužul I., Talijančić I., Ugrin N., Lepen Pleić I., Žuvić L., Stagličić N., Grubišić L. Translocation and aquaculture impact on genetic diversity and composition of wild self-sustainable Ostrea edulis populations in the Adriatic Sea // Frontiers in Marine Science. - 2020. - Vol. 7. - Art. no. 84. -. DOI: 10.3389/fmars.2020.00084
112. Shanks A. L., Wright W. G. Adding teeth to wave action: the destructive effects of waveborne rocks on intertidal organisms // Oecologia. - 1986. - Vol. 69. - P. 420-428. -. DOI: 10.1007/BF00377065
113. Simkiss K., Wilbur K. M. Biomineralization. Cell Biology and Mineral Deposition. - San Diego, USA: Acad. Press, 1989. - 327 p.
114. Sivan G., Vidyalakshmi D., Yesudas A., Priyaja P. Bioerosion traces of an endolithic clionaid sponge on the gastropod shell of Tibia curta Sowerby II, 1842 // Marine Biodiversity. - 2023. - Vol. 53, iss. 2. - Art. no. 26. -. DOI: 10.1007/s12526-023-01336-1
115. Sleight V. A., Thorne M. A., Peck L. S., Clark M. S. Transcriptomic response to shell damage in the Antarctic clam, Laternula elliptica: time scales and spatial localisation // Marine Genomics. - 2015. - Vol. 20. - P. 45-55. -. DOI: 10.1016/j.margen.2015.01.009
116. Sousa H., Hinzmann M. Review: Antibacterial components of the Bivalve’s immune system and the potential of freshwater bivalves as a source of new antibacterial compounds // Fish & Shellfish Immunology. - 2020. - Vol. 98. - P. 971-80. -. DOI: 10.1016/j.fsi.2019.10.062
117. Speights C. J., McCoy M. W. Range expansion of a fouling species indirectly impacts local species interactions // PeerJ. - 2017. - Vol. 5. - Art. no. e3911. -. DOI: 10.7717/peerj.3911
118. Sreeremya S., Shobana M. F. Sponge bioerosion: a review // International Journal of Biochemistry and Biomolecules. - 2018. - Vol. 4, iss. 1. - P. 1-7. -. DOI: 10.37628/ijbb.v4i1.267
119. Stefaniak L. M., McAtee J., Shulman M. J. The costs of being bored: effects of a clionid sponge on the gastropod Littorina littorea (L) // Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. - 2005. - Vol. 327, iss. 1. - P. 103-114. -. DOI: 10.1016/j.jembe.2005.06.007
120. Stubler A. D., Furman B. T., Peterson B. J. Effects of p CO2 on the interaction between an excavating sponge, Cliona varians, and a hermatypic coral, Porites furcata // Marine Biology. - 2014. - Vol. 161. - P. 1851-1859. -. DOI: 10.1007/s00227-014-2466-y
121. Van In V., Ntalamagka N., O’Connor W., Wang T., Powell D., Cummins S. F., Elizur A. Reproductive neuropeptides that stimulate spawning in the Sydney Rock Oyster (Saccostrea glomerata) // Peptides. - 2016. - Vol. 82. - P. 109-119. -. DOI: 10.1016/j.peptides.2016.06.007
122. Stubler A. D., Robertson H., Styron H. J., Carroll J. M., Finelli C. M. Reproductive and recruitment dynamics of clionaid sponges on oyster reefs in North Carolina // Invertebrate Biology. - 2017. - Vol. 136, no. 4. - P. 365-378. -. DOI: 10.1111/ivb.12188
123. Suzuki M., Nagasawa H. Mollusk shell structures and their formation mechanism // Canadian Journal of Zoology. - 2013. - Vol. 91, no. 6. - P. 349-366. -. DOI: 10.1139/cjz-2012-0333
124. Taylor D. Impact damage and repair in shells of the limpet Patella vulgata // Journal of Experimental Biology. - 2016. - Vol. 219, no. 24. - P. 3927-3935. -. DOI: 10.1242/jeb.149880
125. Van Soest R. W., Boury-Esnault N., Vacelet J., Dohrmann M., Erpenbeck D., De Voogd N. J., Santodomingo N., Vanhoorne B., Kelly M., Hooper J. N. Global diversity of sponges (Porifera) // PLoS one. - 2012. - Vol. 7, iss. 4. - Art. e35105. -. DOI: 10.1371/journal.pone.0035105
126. Vaughn C. C., Hoellein T. J. Bivalve impacts in freshwater and marine ecosystems // Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. - 2018. - Vol. 49, no. 1. - P. 183-208. -. DOI: 10.1146/annurev-ecolsys-110617-062703
127. Wang X., Li P., Cao X., Liu B., He S., Cao Z., Xing S., Liu L., Li Z. H. Effects of ocean acidification and tralopyril on bivalve biomineralization and carbon cycling: a study of the Pacific oyster (Crassostrea gigas) // Environmental Pollution. - 2022. - Vol. 313. - Art. no. 120161. -. DOI: 10.1016/j.envpol.2022.120161 E
128. Wang Y., Mao J., Fan Z., Hang Y., Tang A., Tian Y., Wang X., Hao Z., Han B., Ding J., Chang Y. Transcriptome analysis reveals core lncRNA-mRNA networks regulating melanization and biomineralization in Patinopecten yessoensis shell-infested by Polydora // BMC Genomics. - 2023. - Vol. 24, no. 1. - Art. no. 723. -. DOI: 10.1186/s12864-023-09837-w
129. Warburton F. E. Inclusion of parental somatic cells in sponge larvae // Nature. - 1961. - Vol. 191, no. 4795. - P. 1317. -. DOI: 10.1038/1911317a0
130. Watts J. C., Carroll J. M., Munroe D. M., Finelli C. M. Examination of the potential relationship between boring sponges and pea crabs and their effects on eastern oyster condition // Diseases of Aquatic Organisms. - 2018. - Vol. 130, iss. 1. - P. 25-36. -. DOI: 10.3354/dao03257
131. Webb A. E., Pomponi S. A., van Duyl F. C., Reichart G. J., de Nooijer L. J. pH regulation and tissue coordination pathways promote calcium carbonate bioerosion by excavating sponges // Scientific Reports. - 2019. - Vol. 9, no. 1. - Art. no. 758. -. DOI: 10.1038/s41598-018-36702-8
132. Webb A. E., van Heuven S. M., de Bakker D. M., van Duyl F. C., Reichart G. J., Nooijer L. J. Combined effects of experimental acidification and eutrophication on reef sponge bioerosion rates // Frontiers in Marine Science. - 2017. - Vol. 4. - Art. no. 311. -. DOI: 10.3389/fmars.2017.00311
133. Weiner S., Addadi L. Crystallization pathways in biomineralization // Annual Review of Materials Research. - 2011. - Vol. 41, no. 1. - P. 21-40. -. DOI: 10.1146/annurev-matsci-062910-095803
134. Wisshak M., Schönberg C. H., Form A., Freiwald A. Sponge bioerosion accelerated by ocean acidification across species and latitudes? // Helgoland Marine Research. - 2014. - Vol. 68. - P. 253-262. -. DOI: 10.1007/s10152-014-0385-4
135. Wolfe K., Kenyon T. M., Mumby P. J. The biology and ecology of coral rubble and implications for the future of coral reefs // Coral Reefs. - 2021. - Vol. 40, no. 6. - P. 1769-1806. -. DOI: 10.1007/s00338-021-02185-9
136. Wörheide G., Dohrmann M., Erpenbeck D., Larroux C., Maldonado M., Voigt O., Borchiellini C., Lavrov D. V. Deep phylogeny and evolution of sponges (phylum Porifera) // Advances in Marine Biology. - 2012. - Vol. 61. - P. 1-78. -. DOI: 10.1016/B978-0-12-387787-1.00007-6
137. Wörheide G., Erpenbeck D., Menke C. The Sponge Barcoding Project: aiding in the identification and description of poriferan taxa // Porifera Research: Biodiversity, Innovation and Sustainability / Eds: M. R. Custódio [et al.]. - Rio de Janeiro: Museu Nacional, 2007. - P. 123-128. - (Série Livros; 28).
138. Wulff J. Ecological interactions and the distribution, abundance, and diversity of sponges // Advances in Marine Biology. - 2012. - Vol. 61. - P. 273-344. -. DOI: 10.1016/B978-0-12-387787-1.00003-9
139. Wulff J. L. Ecological interactions of marine sponges // Canadian Journal of Zoology. - 2006. - Vol. 84, no. 2. - P. 146-166. -. DOI: 10.1139/Z06-019
140. Xavier J. R., Rachello-Dolmen P. G., Parra-Velandia F., Schönberg C. H. L., Breeuwer J. A. J., Van Soest R. W. M. Molecular evidence of cryptic speciation in the “cosmopolitan” excavating sponge Cliona celata (Porifera, Clionaidae) // Molecular Phylogenetics and Evolution. - 2010. - Vol. 56, iss. 1. - P. 13-20. -. DOI: 10.1016/j.ympev.2010.03.030
141. Xiong X., Cao Y., Li Z., Jiao Y., Du X., Zheng Z. Transcriptome analysis reveals the transition and crosslinking of immune response and biomineralization in shell damage repair in pearl oyster // Aquaculture Reports. - 2021. - Vol. 21. - Art. no. 100851. -. DOI: 10.1016/j.aqrep.2021.100851
142. Yarra T., Blaxter M., Clark M. S. A bivalve biomineralization toolbox // Molecular Biology and Evolution. - 2021. - Vol. 38, no. 9. - P. 4043-4055. -. DOI: 10.1093/molbev/msab153
143. Zhai S., Yang B., Zhang F., Li Q., Liu S. Estimation of genetic parameters for resistance to Vibrio alginolyticus infection in the Pacific oyster (Crassostrea gigas) // Aquaculture. - 2021. - Vol. 538. - Art. 736545. -. DOI: 10.1016/j.aquacultural.2021.736545
144. Zhang G., Fang X., Guo X., Li L. I., Luo R., Xu F., Yang P., Zhang L., Wang X., Qi H., Xiong Z., Que H., Xie Y., Holland P. W. H., Paps J., Zhu Y., Wu F., Chen Y., Wang J., Peng C., Meng J., Yang L., Liu J., Wen B., Wang J. The oyster genome reveals stress adaptation and complexity of shell formation // Nature. - 2012. - Vol. 490, no. 7418. - P. 49-54. -. DOI: 10.1038/nature11413
145. Zhang T., Qiu L., Sun Z. Wang L., Zhou Z., Liu R., Yue F., Sun R., Song L. The specifically enhanced cellular immune responses in Pacific oyster (Crassostrea gigas) against secondary challenge with Vibrio splendidus // Developmental & Comparative Immunology. - 2014. - Vol. 45, no. 1. - P. 141-150. -. DOI: 10.1016/j.dci.2014.02.015
146. Zundelevich A., Lazar B., Ilan M. Chemical versus mechanical bioerosion of coral reefs by boring sponges - lessons from Pione cf. Vastifica // Journal of Experimental Biology. - 2007. - Vol. 210, no. 1. - P. 91-96. -.
Выпуск
Другие статьи выпуска
Статья посвящена юбилею известного российского учёного, доктора физико-математических наук, профессора Ибрагима Ахмедовича Керимова. Его научная и научно-педагогическая деятельность на протяжении многих лет связана с Чеченской Республикой. И. А. Керимов принимал активное участие в формировании грозненской научной школы геологов и геофизиков, которая в настоящее время возрождается благодаря его участию и руководству. По инициативе и под непосредственным руководством И. А. Керимова изданы коллективные монографии, сборники трудов конференций, проведены научные мероприятия высокого уровня, в том числе с участием иностранных учёных и специалистов. В научном сообществе И. А. Керимов известен как талантливый организатор и руководитель. Большое внимание Ибрагим Ахмедович уделяет молодым учёным, которых он умеет привлечь к научно-исследовательской работе.
В статье представлены результаты исследования ландшафтной структуры прибрежной зоны юго-восточной части г. Севастополя. Исследования проводили методом ландшафтного профилирования на ключевых участках в период с 2016 по 2022 г. Впервые составлена ландшафтная карта прибрежной зоны изучаемого района на уровне местностей. В сухопутной части выделено 27 местностей, а в морской — 9. Для ландшафтной структуры суши характерны местности крутых и обрывистых склонов, сложенных известняковыми породами с фисташково-можжевеловым редколесьем и сосновыми лесами. Ландшафты наземной части обладают высокой аттрактивностью и выполняют важные средообразующие функции для г. Севастополя. В прибрежье доминируют местности, приуроченные к подводному склону, где преобладают эрикария косматая, гонголария бородатая и филлофора курчавая. Подводные ландшафты характеризуются сохранностью, высокими продукционными показателями макрофитобентоса. Многие виды растительного мира прибрежья находятся под охраной на региональном, государственном и международном уровнях. для сохранения биологического и ландшафтного разнообразия необходимо применять системный подход к охране прибрежной зоны. Такой подход позволит достичь наилучших результатов в сохранении и восстановлении наземных и морских ландшафтов.
В статье рассматривается актуальная экологическая проблема оценки вкладов конкретных подвижных источников выбросов загрязняющих веществ в общее загрязнение атмосферного воздуха городских территорий. Для решения данного вопроса предлагается применять вероятностный подход, основанный на расчёте условной вероятности с использованием формулы Байеса. Приведены результаты использования предложенной методики для оценки вклада транспортных средств различных категорий (L — мотоциклы и мопеды, М1 — легковые автомобили, М2 — автобусы (кроме электробусов) и N — грузовые автомобили) в суммарное загрязнение атмосферного воздуха двух территорий г. Москвы (участок Басманного района и участок района Коньково) и двух городских территорий Московской области (участки г. Балашиха и г. Раменское) тремя токсичными летучими неорганическими оксидами (диоксид азота NO2, диоксид серы SO2, угарный газ СО), а также твёрдыми частицами РМ2.5 и РМ10 в час пик (период с 17 до 18 часов).
Исследован видовой состав, численность, биомасса и трофическая принадлежность Gastropoda в пяти биотопах прибрежной части акватории (включая супралитораль) бухты Ласпи, расположенной у Черноморского побережья Крыма, в июне и сентябре 2023 г. Всего отмечено 14 видов брюхоногих моллюсков. На рыхлых (песчаных) и галечных субстратах обнаружено 11 видов Gastropoda. Средняя численность составила 509 ± 76 экз./м2, средняя биомасса была 2,719 ± 0,333 г/м2. По этим показателям значительно доминировал Bittium reticulatum Da Costa, 1778. В зарослях водорослей цистозиры найдено 5 видов Gastropoda (средняя численность 119 ± 28 экз./кг, средняя биомасса 3,856 ± 0,924 г/кг с преобладанием Rissoa splendida Eichwald, 1830), в эпифитоне Ulva intestinalis Linnaeus, 1753 также отмечено 4 вида брюхоногих моллюсков и тоже с доминированием R. splendida. Средняя численность Gastropoda на ульве составила 1667 экз./кг, а средняя биомасса — 7,265 г/кг. В супралиторали на валунах обнаружен типичный обитатель зоны заплеска Melaraphe neritoides Linnaeus, 1758 со средней численностью 71 экз./м2. Показана размерная структура данного вида. В обрастаниях естественных твёрдых субстратов (перифитоне) на глубине 0 м встречено 3 вида Gastropoda с преобладанием как по численности, так и по биомассе Tricolia pullus Linnaeus, 1758. Проведено сравнение данных по брюхоногим моллюскам на песчано-галечных грунтах в августе 2016 г., июне и сентябре 2023 г. Всего отмечено 17 видов, в 2016 г. — 13 видов, в 2023 г. — 11, общих оказалось 7 (58 %). Также сравнили сведения по Gastropoda в данном и других исследованных здесь биотопах с аналогичными в других районах побережья Крыма. Проведено сравнение таксоцена Gastropoda между различными биотопами внутри бухты Ласпи. Выделено 5 групп различной трофической принадлежности.
В статье представлены результаты картирования видов семейства Orchidoideae Juss. (Орхидные) на территории природного заказника «Байдарский». На основе сеточного метода составлены карты для видов орхидей. Полевые работы по исследованию местообитаний видов семейства Orchidoideae проведены в заказнике в период с 2010 по 2024 г. Выявлено, что в заказнике произрастает 36 видов орхидей, относящихся к 13 родам. Наибольшим количеством видов представлены роды Epipactis и Orchis, наименьшим — Gymnadenia, Neotinea, Steveniella и Limodorum. Приведена интегральная карта распределения общего числа видов орхидных в заказнике на квадрат регулярной сетки. Наибольшее число видов орхидей встречается в трёх районах заказника — окрестности с. Тыловое, с. Кизиловое и урочище Бюзюка. Полученные данные могут быть использованы для ведения кадастра и мониторинговых исследований видов семейства Orchidoideae.
Издательство
- Издательство
- ИНБЮМ
- Регион
- Россия, Севастополь
- Почтовый адрес
- 299011, Россия, г. Севастополь, проспект Нахимова, д. 2.
- Юр. адрес
- 299011, Россия, г. Севастополь, проспект Нахимова, д. 2.
- ФИО
- Горбунов Роман Вячеславович (Директор)
- E-mail адрес
- ibss@ibss-ras.ru
- Контактный телефон
- +7 (869) 2544110
- Сайт
- http://imbr-ras.ru/