Цель исследования: разработка морфологической классификации повреждения нейронов для использования в практической деятельности экспериментаторами, патологоанатомами и судебномедицинскими экспертами.
Материал и методы. Исследовали нейроны коры головного мозга 30-ти экспериментальных животных (крысы линии Вистар). Из них: с остановкой кровообращения n=10, c отравлением клозапином в сочетании с алкоголем (доза клозапина — 150 мг/кг, доза алкоголя — 5 мл/кг), n=20. Кроме этого, исследовали кору головного мозга человека при субарахноидальных кровоизлияниях (САК), n=23, внезапной сердечной смерти n=10, коронавирусной инфекции, n=18. Окрашивание гистологических препаратов проводили гематоксилином и эозином, по Нисслю, по Фельгену (на ДНК), по Браше (на РНК и РНП), иммуногистохимическим методом выявляли каспазу-3.
Результаты. Предложили морфологическую классификацию повреждения нейронов, включающую децентрализацию ядра в нейроне, морфологические изменения ядрышка, темные нейроны, ремоделирование хроматина, липофусциноз, отек нейронов, лизис вещества Ниссля, кальциноз нейронов, нейронофагию, некроз, апоптоз нейронов. Рассмотрели функциональные нарушения, возникающие при исследованных вариантах альтерации нейронов. В результате развивающихся повреждений нейронов нарушается функция цитоскелета нейронов, синтез субъединиц рибосом, синтез рибонуклеопротеидов, нарушение репарации ДНК, активируется апоптоз, повреждаются лизосомы, активизируется образование активных форм кислорода, регистрируются необратимые формы повреждения нейронов (нейронофагия, некроз, апоптоз).
Заключение. Предлагаемая морфологическая классификация дополняет существующие классификации, основанные на исследовании молекулярных маркеров повреждения нейронов, и может быть использована при проведении экспериментальных исследований и в практической работе патологоанатомов и судебно-медицинских экспертов.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Здравоохранение
Важное значение в понимании процессов, происходящих в ЦНС, имеют морфологические исследования, позволяющие верифицировать общепатологические процессы при воздействии повреждающих факторов и оценить характер структурных повреждений нейронов. В повседневной практической деятельности патологоанатом и судебно-медицинский эксперт решают задачи выявления повреждений нейронов, их разновидностей, топографическую локализацию с последующим обоснованием их значимости в возникновении функциональных нарушений при различных заболеваниях центральной нервной системы (ЦНС).
Список литературы
1. Ермохин П. Н. Гистопатология центральной нервной системы. Под редакцией академика АМН СССР проф. А. П. Авцина. М.: “Медицина”; 1969: 245. УДК 616.831/832-001.8 (084.4).
2. Clarke G. D. Developmental cell death: morphological diverciti and multiple mechanisms. Anatomy Embryology (Berl). 1990; 181: 195-201. PMID: 2186664. DOI: 10.1007/BF00174615. PMID: 2186664
3. Kroemer G., El-Deiry W. S., Golstein P. Nomenclature Committee on Cell Death Classification of cell death: recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death. Cell Death Differentiation. 2005; 2: 1463-1467. PMID: 16247491. DOI: 10.1038/sj.cdd.4401724. PMID: 16247491
4. Galluzzi L., Vitale I., Abrams J. M., Alnemri E. S., Baehrecke E. H., Blagosklonny M. V., Dawson T. M., et al. Molecular definitions of cell death subroutines: recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death. Cell Death & Differentiation. 2012; 19: 07-120. PMID: 21760595. DOI: 10.1038/cdd.2011.96. EDN: YCOQNF PMID: 21760595
5. Di Giaimo R., Penna E., Pizzella A., Cirillo R., Perrone-Capano C., Crispino M. Cross talk at the cytoskeleton-plasma membrane interface: impact on neuronal morphology and functions. Int J Mol Sci. 2020; 21 (23): 9133. PMID: 33266269. DOI: 10.3390/ijms21239133. PMID: 33266269
6. Kengaku M. Cytoskeletal control of nuclear migration in neurons and non-neuronal cells. Proc Jpn Acad Ser B Phys Biol Sci. 2018; 94 (9): 337-349. PMID: 30416174. DOI: 10.2183/pjab.94.022. PMID: 30416174
7. Wilson D. M., Cookson M. R., Van Den Bosch L., Zetterberg H., Holtzman D. M., Dewachter I. Hallmarks of neurodegenerative diseases. Cell. 2023; 186: 693-714. PMID: 36803602. DOI: 10.1016/j.cell.2022.12.032. EDN: BJMNBQ PMID: 36803602
8. Parlato R., Kreiner G. Nucleolar activity in neurodegenerative diseases: a missing piece of the puzzle? J Mol Med (Berl). 2013; 91 (5): 541-547. PMID: 23179684. DOI: 10.1007/s00109-012-0981-1. PMID: 23179684
9. Dubois M.-L., Boisvert F.-M. The nucleolus: structure and function. In the book: The Functional Nucleus. David P. Bazett-Jones, Graham Dellaire. (eds.). Springer Nature Link; 2016: 29-49. DOI: 10.1007/978-3-319-38882-3_2
10. Schцfer C., Weipoltshammer K. Nucleolus and chromatin. Histochem Cell Biol. 2018; 150 (3): 209-225. PMID: 30046888. DOI: 10.1007/s00418-018-1696-3. PMID: 30046888
11. Slomnicki L. P., Hallgren J., Vashishta A., Smith S. C., Ellis S. R., Hetman M. Proapoptotic requirement of ribosomal protein L11 in ribosomal stress-challenged cortical neurons. Mol Neurobiol. 2018; 55 (1): 538-553. PMID: 27975169. DOI: 10.1007/s12035-016-0336-y.14. PMID: 27975169
12. Regier M., Liang J., Choi A., Verma K., Libien J., Hernández A. I. Evidence for decreased nucleolar PARP-1 as an early marker of cognitive impairment. Neural Plast. 2019; 2019: 4383258. PMID: 31827497. DOI: 10.1155/2019/4383258. PMID: 31827497
13. Wang X., Zhang X. Y., Liao N. Q., He Z.H., Chen Q. F. Identification of ribosome biogenesis genes and subgroups in ischaemic stroke. Front Immunol. 2024; 15: 1449158. PMID: 39290696. DOI: 10.3389/fimmu.2024.1449158. EDN: PXUQKR PMID: 39290696
14. Chen Q. M. The Odds of protein translation control under stress. Antioxid Redox Signal. 2024; 40 (16-18): 943-947. PMID: 38573012. DOI: 10.1089/ars.2023.0478. PMID: 38573012
15. Hellas J. A., Andrew R. D. Neuronal swelling: a non-osmotic consequence of spreading depolarization. Neurocrit Care. 2021; 35 (Suppl 2): 112-134. PMID: 34498208. DOI: 10.1007/s12028-021-01326-w. PMID: 34498208
16. Murphy T. R., Davila D., Cuvelier N., Young L.R, Lauderdale K., Binder D. K., Fiacco T. A. Hippocampal and cortical pyramidal neurons swell in parallel with astrocytes during acute hypoosmolar stres. Front Cell Neurosci. 2017; 11: 275. PMID: 28979186. DOI: 10.3389/fncel.2017.00275. EDN: YJVFIL PMID: 28979186
17. Chen S., Shao L., Ma L. Cerebral edema formation after stroke: emphasis on blood-brain barrier and the lymphatic drainage system of the brain. Front Cell Neurosci. 2021; 15: 716825. PMID: 34483842. DOI: 10.3389/fncel.2021.716825. EDN: NYMLUS PMID: 34483842
18. Stokum J. A., Gerzanich V., Simard J. M. Molecular pathophysiology of cerebral edema. J Cereb Blood Flow Metab. 2016; 36 (3): 513-538. PMID: 26661240. DOI: 10.1177/0271678X15617172. PMID: 26661240
19. Зиматкин С. М. Бонь Е. И. Темные нейроны мозга. Морфология. 2017; 152 (6): 81-86. DOI: 10.17816/morph.398200
20. Авдеев Д. Б., Степанов С. С., Горбунова А. В., Шоронова А. Ю., Макарьева Л. М., Акулинин В. А., Коржук М. С., Заболотных М. В. Темные нейроны сенсомоторной коры белых крыс после острой неполной ишемии в аспекте артефактов фиксации и нейроглиальных взаимоотношений. Журнал анатомии и гистопатологии. 2021; 10 (2): 9-20. DOI: 10.18499/2225-7357-2021-10-2-9-22
21. Gallias F., Csordas A., Schwartz A., Mazlo M. “Dark” (compacted) neurons may not die in a necrotic manner. Exp Brain Res. 2005; 160 (4): 473-86. 10.1007/s00221-004-2037-4 PMID: 15480602. PMID: 15480602. DOI: 10.1007/s00221-004-2037-4.PMID PMID: 15480602
22. Ahmadpour S., Behrad A., Fernández-Vega I. Dark neurons: a protective mechanism or a mode of death. Journal of Medical Histology. 2019; 3 (2): 125-131. DOI: 10.21608/jmh.2020.40221.1081
23. Kockelkoren R., De Vis J. B., Stavenga M., Mali W. P. Th. M., Hendrikse J., Rozemuller A. M., Koek H. L., et al, the DUST study group. Hippocampal calcification on brain CT: prevalence and risk factors in a cerebrovascular cohort. Eur Radiol. 2018; 28 (9): 3811-3818. PMID: 29619516. DOI: 10.1007/s00330-018-5372-8. PMID: 29619516
24. Дзреян В. А., Хайтин А. М., Демьяненко С. В. Нарушение кальциевого гомеостаза и ответные изменения в кальциевой сигнализации нейронов и глиальных клеток при фотодинамическом воздействии. Биологические мембраны: Журнал мембранной и клеточной биологии. 2022; 39 (4): 283-291. DOI: 10.31857/S0233475522040041
25. Casas A. I., Kleikers P.Wm., Geuss E., Langhauser F., Adler T., Busch D. H., Gailus-Durner V., et al. Calcium-dependent bloodbrain barrier breakdown by NOX5 limits postreperfusion benefit in stroke. J Clin Invest. 2019; 129 (4): 1772-1778. PMID: 30882367. DOI: 10.1172/JCI124283. PMID: 30882367
26. Winick-Ng W., Kukalev A., Harabula I., Zea-Redondo L., Szabó D., Meijer M., Serebreni L., et al. Cell-type specialization is encoded by specific chromatin topologies. Nature. 2021; 599 (7886): 684-691. PMID: 34789882. DOI: 10.1038/s41586-021-04081-2. EDN: MKFFFC PMID: 34789882
27. Mirabella A. C., Foster B. M., Bartke T. Chromatin deregulation in disease. Chromosoma. 2016; 125: 75-93. PMID: 26188466. DOI: 10.1007/s00412-015-0530-0. EDN: UZWQAI PMID: 26188466
28. Aleksandrov R., Hristova R., Stoynov S., Gospodinov A. The chromatin response to double-strand DNA breaks and their repair. Cells. 2020; 9 (8): 1853. PMID: 32784607. DOI: 10.3390/cells9081853. EDN: EDRZLB PMID: 32784607
29. Su Y., Shin J., Zhong C., Wang S., Roychowdhury P., Lim J., Kim D., et al. Neuronal activity modifies the chromatin accessibility landscape in the adult brain. Nat Neurosci. 2017; 20 (3): 476-483. PMID: 28166220. DOI: 10.1038/nn.4494. PMID: 28166220
30. Kirmes I., Szczurek A., Prakash K., Charapitsa I., Heiser C., Musheev M., Schock F., et al. A transient ischemic environment induces reversible compaction of chromatin. Genome Biol. 2015; 16: 246. PMID: 26541514. DOI: 10.1186/s13059-015-0802-2. EDN: GJNXJD PMID: 26541514
31. Fullard J. F., Hauberg M. E., Bendl J., Egervari G., Cirnaru M.-D., Reach S. M., Motl J., et al. An atlas of chromatin accessibility in the adult human brain. Genome Res. 2018; 28 (8): 1243-1252. PMID: 29945882. DOI: 10.1101/gr.232488.117. EDN: YITBEL PMID: 29945882
32. Li X., Egervari G., Wang Y., Berger S. L., Nat Z. L. Regulation of chromatin and gene expression by metabolic enzymes and metabolites. Nat Rev Mol Cell Biol. 2018; 19 (9): 563-578. PMID: 29930302. DOI: 10.1038/s41580-018-0029-7. PMID: 29930302
33. Falk M., Feodorova Y., Naumova N., Imakaev M., Lajoie B. R., Leonhardt H., Joffe B., et al. Heterochromatin drives compartmentalization of inverted and conventional nuclei. Nature. 2019; 570 (7761): 395-399. PMID: 31168090. DOI: 10.1038/s41586-019-1275-3. PMID: 31168090
34. Hilbert L., Sato Y., Kuznetsova K., Bianucci T., Kimura H., Jülicher F., Honigmann A., et al. Transcription organizes euchromatin via microphase separation. Nat Commun. 2021; 12: 1360. PMID: 33649325. DOI: 10.1038/s41467-021-21589-3. EDN: IXTYUK PMID: 33649325
35. Di Guardo G. Lipofuscin, lipofuscin-like pigments and autofluorescence. Eur J Histochem. 2015; 59 (1): 2485. PMID: 25820564. DOI: 10.4081/ejh.2015.2485. PMID: 25820564
36. Riga D., Riga S., Halalau F., Schneider F. Brain lipopigment accumulation in normal and pathological aging. Ann N Y Acad Sci. 2006; 1067: 158-163. PMID: 16803981. DOI: 10.1196/annals.1354.019. PMID: 16803981
37. Glees P., Hasan M. Lipofuscin in neuronal aging and diseases. Norm Pathol Anat (Stuttg). 1976; 32: 1-68. PMID: 639413. PMID: 639413
38. Snyder A. N., Crane J. S. Histology, lipofuscin. 2023. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2025. PMID: 30726043 Free Books & Documents. PMID: 30726043
39. Baldensperger T., Jung T., Heinze T., Schwerdtle T., Höhn A., Grune T. The age pigment lipofuscin causes oxidative stress, lysosomal dysfunction, and pyroptotic cell death. Free Radic Biol Med. 2024; 225: 871-880. PMID: 39486751. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2024.10.311. PMID: 39486751
40. Liu K., Ding L., Li Y., Yang H., Zhao C., Lei Y., Han S., et al. Neuronal necrosis is regulated by a conserved chromatin-modifying cascade. Proc Natl Acad Sci U S A. 2014; 111 (38): 13960-13965. PMID: 25201987. DOI: 10.1073/pnas.1413644111. PMID: 25201987
41. Martin L. J., Chang Q. DNA damage response and repair, DNA methylation, and cell death in human neurons and experimental animal neurons are different. J Neuropathol Exp Neurol. 2018; 77 (7): 636-655. PMID: 29788379. DOI: 10.1093/jnen/nly040. PMID: 29788379
42. Nussbacher J. K., Tabet R., Yeo G. W., Lagier-Tourenne C. Disruption of RNA metabolism in neurological diseases and emerging therapeutic interventions. Neuron. 2019; 102 (2): 294-320. PMID: 30998900. DOI: 10.1016/j.neuron.2019.03.014. PMID: 30998900
43. Delgado-Martín S., Martínez-Ruiz A. The role of ferroptosis as a regulator of oxidative stress in the pathogenesis of ischemic stroke. FEBS Lett. 2024; 598 (17): 2160-2173. PMID: 38676284. DOI: 10.1002/18733468.14894. PMID: 38676284
44. Brown G. C. Neuronal loss after stroke due to microglial phagocytosis of stressed neurons. Int J Mol Sci. 2021; 22 (24): 13442. PMID: 34948237. DOI: 10.3390/ijms222413442. PMID: 34948237
45. Galloway D. A., Phillips A. E.M., Owen D. R.J., Moore C. S. Phagocytosis in the brain: homeostasis and disease. Front Immunol. 2019; 10: 790. PMID: 31040847. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00790. PMID: 31040847
46. Wakida N. M., Cruz G. M. S., Ro C.C., Moncada E. G., Khatibzadeh N., Flanagan L. A., Berns M. W. Phagocytic response of astrocytes to damaged neighboring cells. PLoS One. 2018; 13 (4): e0196153. DOI: 10.1371/journal.pone.019615
47. Yanumula A., Cusick J. K. Biochemistry, extrinsic pathway of apoptosis. In: StatPearls. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2025. PMID: 32809646 Free Books & Documents. PMID: 32809646
48. Glover H. L., Schreiner A., Dewson G., Tait S. W. G. Mitochondria and cell death. Nat Cell Biol. 2024, 26 (9): 1434-1446. PMID: 38902422. DOI: 10.1038/s41556-024-01429-4.
Выпуск
Другие статьи выпуска
Цель: изучить патофизиологические механизмы и клиническую значимость дельта-ритмов (4 Гц) при нарушениях сознания, включая кому, синдром безответного бодрствования (вегетативное состояние) и состояние минимального сознания (СМС), в качестве биомаркеров для диагностики, прогноза и целенаправленной терапии.
Материалы и методы. Провели краткий обзор результатов экспериментальных и клинических исследований по изучению генерации и модуляции дельта-ритма при нарушениях сознания. Особое внимание уделили таламо-кортикальным взаимодействиям, кортикальному торможению, нарушениям нейромодуляции, а также роли глиальных клеток, нейровоспалению и метаболическим нарушениям. Количественный анализ ЭЭГ и усовершенствованную нейровизуализацию выделили в качестве ключевых инструментов для оценки дельта-активности.
Результаты. Установили, что дельта-ритмы доминируют на ЭЭГ при всех состояниях нарушенного сознания, при этом глобальная активность с высокой амплитудой наблюдается при коме, а активность с низкой амплитудой — при вегетативных состояниях, что, соответственно, указывает на подавление активности коры головного мозга и таламокортикальное отключение. При СМС снижение амплитуды волн дельта-ритма и улучшение связи коррелировали с периодическим целенаправленным поведением. Терапевтические вмешательства, включая транскраниальную магнитную стимуляцию, транскраниальную стимуляцию переменным током и фармакологические препараты, демонстрировали потенциал для модуляции дельта-ритмов. Кроме того, стохастический резонанс стал новым механизмом стабилизации нейронных сетей, проходящим сквозь помехи.
Заключение. Дельта-ритмы служат важнейшими биомаркерами состояний нарушенного сознания и представляют диагностическую, прогностическую и терапевтическую ценность. Мультимодальные подходы, объединяющие ЭЭГ, нейровизуализацию и механистические исследования, необходимы для углубления понимания и улучшения клинических результатов при лечении пациентов в состоянии нарушенного сознания.
Цель: обоснование патогенеза ишемического инсульта при инфекционных заболеваниях нижних дыхательных путей.
Материал и методы. Провели поиск оригинальных исследований, клинических сообщений, обзорных и редакционных статей, комментариев и кратких сообщений, опубликованных до 25 июня 2025 г. в базе PubMed. Дополнительные источники, которые не выявили с помощью поиска в первичной базе данных, анализировали после изучения списков литературы по отобранным статьям. Статьи отбирали, исходя из соответствия названия и аннотации цели настоящего обзора. В анализ включили данные 160 источников.
Результаты. Выделили и подробно рассмотрели механизмы развития ишемического инсульта при респираторных инфекциях: 1) активацию свертывающей системы крови и нарушение естественных антикоагулянтных и фибринолитических механизмов; 2) взаимодействие системы гемостаза с врожденным иммунитетом; 3) воздействие возбудителей инфекции на прогрессирование атеросклероза и стабильность атеросклеротической бляшки; 4) формирование тромбоэмболов в легочных венах.
Заключение. Как бактериальная, так и вирусная инфекция могут инициировать прокоагулянтное состояние, опосредованное тканевым фактором, фактором фон Виллебранда, активацией тромбоцитов, нейтрофильных внеклеточных ловушек и снижением активности эндогенных антикоагулянтов. Инфекционный процесс, локализованный в легких, характеризующийся повреждениями эндотелия сосудов легких, альвеолоцитов, внутриальвеолярным отложением фибрина, отеком, клеточной инфильтрацией, в совокупности с нарушениями гемостаза создает условия для формирования тромбов в сосудах легких. Таким образом, легочные вены и венулы могут являться источником тромбоэмболии сосудов головного мозга. Этот механизм развития тромбоэмболического инсульта во многом объясняет случаи острых нарушений мозгового кровообращения у пациентов с инфекцией нижних дыхательных путей без сердечно-сосудистых факторов риска. Другой механизм ишемического инсульта связан с прямым или опосредованным воздействием патогенов на стабильность атеросклеротических бляшек в сосудах головного мозга, что в совокупности с системным прокоагулянтным дисбалансом, приводит к формированию атеротромбоза. Учитывая обоснованную патогенетическую связь острых инфекционных заболеваний легких с тромбоэмболическим и атеротромботическим инсультами, необходима клиническая настороженность относительно острых нарушений мозгового кровообращения в тактике ведения таких пациентов.
Инфаркт головного мозга по ишемическому типу на сегодняшний день является одной из наиболее приоритетных проблем здравоохранения. Несмотря на различие в вариантах течения ишемического и ишемически-реперфузионного повреждения нервной ткани, в конечном счете процент инвалидизации напрямую зависит от эффективности воздействия на зону пенумбра. Применение дихолинсукцината (ДХС) — нейронального инсулин-сенситайзера является перспективным фармакологическим методом лечения и профилактики последствий перенесенного инсульта.
Цель исследования. Изучить влияние фармакологического прекондиционирования ДХС на гибель клеток мозга в условиях экспериментального ишемического инсульта у крыс.
Материалы и методы. Ишемический инсульт у крыс (n=16) моделировали введением вазоконстриктора эндотелина-1 (ET-1) в стриатум. Эффект фармакологического прекондиционирования с использованием ДХС как активного вещества оценивали, измеряя площадь инфаркта мозга в срезах мозга, окрашенных крезиловым фиолетовым. Влияние ДХС на показатели гликолиза и окислительного фосфорилирования в первичной культуре клеток мозжечка крысы оценивали, измеряя скорость закисления внеклеточной среды и скорости поглощения кислорода, соответственно.
Результаты. Курсовое введение ДХС в режиме прекондиционирования в течение 7 дней, один раз в день, в дозе 50 мг/кг per os снижает максимальную площадь зоны инфаркта мозга на 34% (p0,05) по сравнению с контролем в условиях последующего экспериментального ишемического инсульта, вызванного введением ET-1. Трехдневная инкубация первичной культуры мозжечка крыс с 50 мкМ ДХС не влияет на базовые уровни гликолиза (p=0,916) и дыхания в клетках (p=0,8346), но увеличивает гликолитический резерв клеток на 70,0% (p0,0001) по сравнению с контролем.
Заключение. Впервые показан нейропротективный эффект фармакологического прекондиционирования нейрональным инсулин-сенситайзером дихолинсукцинатом в условиях ишемического инсульта. Механизм действия ДХС связан с повышением гликолитического резерва клеток мозга, то есть с увеличением способности прекондиционированных клеток вырабатывать АТФ и лактат посредством гликолиза в условиях острого падения окислительного фосфорилирования.
Цель исследования. Изучение нейропротекторных свойств хлорида лития в условиях моделирования открытой черепно-мозговой травмы (ОЧМТ) у крыс.
Материалы и методы. Моделирование ОЧМТ выполнили по методу Д. М. Фини. В исследование включили крыс-самцов линии Вистар (n=40): ложнооперированных животных (ЛО, n=10); контрольную группу с ОЧМТ (Контроль, n=10); животных, которым после ОЧМТ вводили хлорид лития в дозе 1,5 ммоль/кг (ОЧМТ + Литий 63 мг/кг, n=10) и в дозе 0,5 ммоль/кг (ОЧМТ + Литий 21 мг/кг, n=10). Оценку когнитивного и неврологического статуса крыс проводили при помощи двух тестов: «Водный лабиринт Морриса» и «Постановка конечности на опору». Для изучения объема повреждения головного мозга на 14-й день после ОЧМТ выполнили магнитно-резонансную томографию (МРТ).
Результаты. Применение хлорида лития в дозе 63 мг/кг через 60 мин после моделирования ОЧМТ снижает объем повреждения головного мозга на 41,5% (р=0,001), а хлорид лития в дозе 21 мг/кг, введенный в том же временном интервале, снижает объем повреждения головного мозга на 27,5% (р=0,001) по сравнению с группой Контроль. Лечение животных хлоридом лития в дозе 63 мг/кг улучшало когнитивные функции крыс на 71% в сравнении с контрольными животными (р=0,009), а в группе лечения хлоридом лития в дозе 21 мг/кг — на 65% (р=0,010).
Заключение. Показали, что хлорид лития в дозах 21 мг/кг и 63 мг/кг обладает нейропротекторными свойствами, уменьшая (по данным МРТ) объем повреждения мозга, снижает неврологический дефицит и тем самым улучшает когнитивные функции у животных.
Цель исследования — изучение воздействия трехкратной 60-минутной ингаляции аргон-кислородной смеси (Ar 70%/O₂ 30%) на степень неврологического дефицита, размер повреждения мозга, клеточные реакции, а также содержание цитокинов у крыс после фотохимически индуцированного инсульта.
Материалы и методы. В эксперименте использовали 21 самца крыс линии Wistar массой 250–300 г, которых случайным образом распределили на три группы: контрольная группа с ишемией + ингаляция N₂ 70%/O₂ 30% (группа «Ишемия», n=10); опытная группа с ишемией + ингаляция Ar 70%/O₂ 30% (группа «Ишемия + iAr», n=8); и группа ложнооперированных животных (группа «ЛО», n=3). Неврологический статус оценивали на протяжении 14 дней с использованием теста «Постановка конечности на опору». Через 14 дней после ишемии проводили магнитно-резонансную томографию (МРТ), гистологический и иммуногистохимический анализы, выделяли РНК из ткани мозга и определяли экспрессию генов цитокинов с помощью обратной транскрипции-ПЦР.
Результаты. Получили статистически значимые различия при оценке в тесте ПКО между группой Ишемия и группой Ишемия + iAr на 3-и (7,3 [5,3; 10,4] против 9,9 [10,2; 13,2], р=0,045) и 7-е (8,0 [7,3; 9,2] против 10,0 [9,0; 11,5], р=0,027)) сутки после моделирования инсульта. Объем ишемии по данным МРТ статистически значимо различался между группами (группа Ишемия + iAr 12,5 [8,5; 17,4] мм3 и группа Ишемия 21,0 [17,5; 22,68] мм3, р=0,01). Уровни экспрессии генов провоспалительных цитокинов оказались статистически значимо ниже после воздействия аргон-кислородной смеси (IL-1β: группа Ишемия + iAr 205 [175,5; 247,5] vs группа Ишемия 328,5 [299; 347,5], p=0,001; TNF: группа Ишемия + iAr 110,5 [93,5; 113] vs группа Ишемия 149,5 [126,5; 176,5], p=0,001).
Заключение. Таким образом, трехкратная 60-минутная ингаляция аргон-кислородной смеси (Ar 70%/O₂ 30%) после фотохимически вызванного инсульта уменьшает степень неврологических нарушений, изменяет уровень экспрессии генов провоспалительных цитокинов и оказывает влияние на клеточные реакции.
Цель исследования: определить наиболее специфичные и чувствительные критерии диагностики нозокомиальных менингитов и вентрикулитов.
Материал и методы. В ретроспективное когортное исследование случай-контроль, проводимое на базе отделения анестезиологии-реанимации Российского научно-исследовательского нейрохирургического института (РНХИ) им. проф. А. Л. Поленова, филиала Национального медицинского исследовательского центра (НМИЦ) им. В. А. Алмазова Минздрава России включили 120 пациентов, перенесших интракраниальное нейрохирургическое вмешательство: основная группа (n=60) — пациенты с нозокомиальным менингитом (НМ), группа сравнения (n=60) — больные без НМ. Критерии включения: возраст старше 18 лет. Критерии исключения: наличие тяжелого иммуносупрессивного статуса (ВИЧ-инфекции), признаки инфекции центральной нервной системы (ЦНС) (менингит, вентрикулит, абсцесс головного мозга) при госпитализации, экстракраниальный характер оперативных вмешательств, наличие ликвореи в дооперационном периоде, травмы ЦНС, экстракраниальные причины инфекции ЦНС. Применяли критерии диагностики НМ Центров по контролю и профилактике заболеваний США (CDC) и НМИЦ нейрохирургии им. акад. Н. Н. Бурденко.
Результаты. При внешней валидации критериев диагностики НМ в анализируемой когорте пациентов чувствительность и специфичность по критериям CDC составили, соответственно, 81,67 и 83,33%. По критериям НМИЦ нейрохирургии им. акад. Н. Н. Бурденко эти показатели составили для вероятного НМ 81,67 и 88,33%, для подтвержденного НМ — 51,67 и 100%, соответственно. По критериям CDC наивысшую чувствительность выявили для показателя концентрации белка в спинномозговой жидкости (СМЖ) 0,33 г/л (83,6%), при крайне низкой специфичности — 21%, наивысшую специфичность — для результата посева СМЖ (100%). По критериям НМИЦ нейрохирургии им. акад. Н. Н. Бурденко для вероятного НМ наибольшую чувствительность демонстрировал показатель цитоза в СМЖ 65 клеток в мкл (64,4%), наибольшую специфичность — показатели концентрации глюкозы в ликворе 2,6 ммоль/л (93,9%) и CSF/SGLU 0,45 (96,8%). Для подтвержденного НМ максимальную чувствительность также демонстрировал показатель цитоза в СМЖ 65 клеток в мкл (95,2%), но специфичность этого признака составила только 51%. Наибольшую специфичность выявили для показателя лактата в СМЖ 4,2 ммоль/л (92,3%). Рассчитали оптимальные пороговые значения для 4-х показателей: температуры тела 37,7°C; цитоза в СМЖ 245 клеток/мкл; глюкозы СМЖ 2,0 ммоль/л и лактата СМЖ 3,7 ммоль/л. Использование комбинации пороговых значений всех 4-х показателей позволило достичь чувствительности 90,00% и специфичности 91,67%. Наибольшую диагностическую ценность имели показатели цитоза в СМЖ (AUC=0,90; 95% ДИ 0,84–0,95), повышенного лактата СМЖ (AUC=0,85; 95% ДИ 0,75–0,93), общего белка в СМЖ (AUC=0,83; 95% ДИ 0,75–0,90) и температуры тела (AUC=0,82; 95% ДИ 0,74–0,89). Показатели положительного посева СМЖ и наличия ригидности затылочных мышц коррелировали с диагнозом НМ (rbp=0,522 и rbp=0,415, соответственно, p=0,0001), однако не показали хорошей предиктивной диагностической способности.
Заключение. Наиболее клинически значимыми признаками НМ являются: повышение уровня цитоза СМЖ, концентрации лактата СМЖ, лихорадка. Золотой стандарт диагностики НМ — положительный бактериологический анализ СМЖ показал низкую чувствительность — 69,2%. При сочетанном применении разработанные в ходе исследования пороговые показатели температуры тела, плеоцитоза спинномозговой жидкости (СМЖ), глюкозы и лактата СМЖ обладают более высокой чувствительностью и специфичностью, чем используемые ранее.
Цель исследования — выявить потенциальные предикторы функционального исхода (ФИ) у пациентов с подтипами ишемического инсульта (ИИ), не получавших реперфузионную терапию.
Материалы и методы. В проспективное исследование включили 229 пациентов с диагнозом «ишемический инсульт», которых разделили на три группы в зависимости от подтипа ИИ: 1-я группа — 84 пациента с кардиоэмболическим ИИ; 2-я группа — 65 пациентов с атеротромботическим ИИ; 3-я группа — 80 пациентов с лакунарным ИИ. В качестве критериев ФИ рассматривали изменения значения mRS путем вычисления разницы между параметрами при поступлении и на 21-й день от развития ИИ — mRS. С целью оптимизации работы модели машинного обучения (ML), выбрали бинарную классификацию ФИ на 21-й день от развития ИИ: показатель mRS 3 баллов соответствовал неблагоприятному нелетальному исходу, mRS = 0–2 балла — благоприятному ФИ. Анализировали взаимосвязь с ФИ (коэффициент корреляции, r) и предиктивную способность (ML (дерево решений), прирост информации, п. и.) 29-ти параметров: демографические; коморбидность; данные инструментальных методов исследования; NIHSS, BI, CDR; сывороточные концентраций цитокинов на 2-й день госпитализации.
Результаты. Выявили значимые (p0,0001) предикторы неблагоприятного нелетального ФИ: в 1-й группе — женский пол (п. и. = 0,346), наличие повторного ИИ (п. и. = 0,248), сахарный диабет (п. и. = 0,442), концентрацию CXCL2 (п. и. = 0,306); во 2-й группе — степень ГИБВ (п. и. = 0,206), наличие сахарного диабета (п. и. = 0,340), содержание CCL2 (п. и. = 0,116), CCL3 (п. и. = 0,202) и CCL23 (п. и. = 0,101); в 3-й группе — возраст (п. и. = 0,106), ожирение 2–3-й степени (п. и. = 0,150), степень ГИБВ (п. и. = 0,300), содержание CXCL5 (п. и. = 0,143) и MIF (п. и. = 0,145). В качестве предикторов благоприятного ФИ (p0,0001) в 1-й группе выявили концентрации CCL25 (п. и. = 0, 108) и IL-6 (п. и. = 0,401); во 2-й группе — ожирение 1-й степени (п. и. = 0, 118) и концентрация TNF-α (п. и. = 0,211); в 3-й группе — наличие ГБ (п. и. = 0,113) и ожирение 1-й степени.
Заключение. Результаты исследования продемонстрировали различия в структуре факторов, влияющих на ФИ в зависимости от патогенетического подтипа. Несмотря на определенную ценность полученных данных, для расширения возможностей прогнозирования исхода острого ИИ, требуется дальнейшее проведение исследований с целью подтверждения значимости выявленных маркеров.
Издательство
- Издательство
- ФНКЦ РР
- Регион
- Россия, Солнечногорск
- Почтовый адрес
- 141534, Московская область, г.о. Солнечногорск, д. Лыткино, 777
- Юр. адрес
- 141534, Московская область, г.о. Солнечногорск, д. Лыткино, 777
- ФИО
- ГРЕЧКО АНДРЕЙ ВЯЧЕСЛАВОВИЧ (Директор)
- E-mail адрес
- fnkcrr@fnkcrr.ru
- Контактный телефон
- +7 (849) 5641300
- Сайт
- https://fnkcrr.ru/