ISSN 0206-0477 · EISSN 2221-3996

· Языки: ru / en

Статья: Анализ последовательности гена cytb тетратиридиев Mesocestoides Vaillant, 1863 от мелких млекопитающих Дальнего Востока России (2025)

Читать

Читать онлайн

Данная работа продолжает серию статей, посвященных молекулярно-генетическому анализу широко распространенных гельминтов – цестод рода Mesocestoides, паразитирующих (на стадии метацестоды) у мелких млекопитающих. В этой работе мы изучаем генетическое разнообразие Mesocestoides spp. от микромаммалий Дальнего Востока России на примере гена cytb. Впервые у Mesocestoides spp., паразитирующих у хозяев разных родов и видов, обитающих в этом регионе, выявлен полиморфизм нуклеотидной последовательности гена цитохрома b и аминокислотной последовательности кодируемого полипептида. Были выявлены два вида Mesocestoides spp., не относящиеся к генетически подтвержденным видам рода. Один из них обнаружен только у Micromys minutus (Pallas, 1771), добытого в районе села Георгиевка Хабаровского края. Второй вид представлен девятью особями из географически далеких локаций, у которых обнаружено две генетические сублинии и 11 нуклеотидных различий в последовательности гена cytb. Индексы молекулярного разнообразия показывают высокий уровень полиморфизма нуклеотидной последовательности этого гена в генофонде изученного вида Mesocestoides sp. Кроме того, было установлено наличие трех изоформ полипептида цитохрома b. Анализ аминокислотных замен в этих изоформах полипептида и в полипептиде из образца от M. minutus также указывает на принадлежность последнего к отдельному виду.

This paper continues a series of articles concerning the molecular genetic analysis of widespread helminths – cestodes of the genus Mesocestoides Vaillant, 1863, parasitising (at the metacestode stage) small mammals. In this study, we examine the genetic diversity of Mesocestoides spp. from micromammals of the Russian Far East using the cytb gene as an example. Polymorphism of the nucleotide sequence of the cytochrome b gene and the amino acid sequence of the encoded polypeptide was detected for the first time in Mesocestoides spp. parasitising hosts of different genera and species inhabiting this region. Two species of Mesocestoides spp. were identified that were not related to the genetically confirmed species of the genus. One of them was found only in Micromys minutus (Pallas, 1771), obtained near Georgievka village in Khabarovsk Territory. The second species is represented by nine individuals from geographically distant locations, in which two genetic sublines and 11 nucleotide differences in the cytb gene sequence were found. Molecular diversity indices show a high level of polymorphism in the nucleotide sequence of this gene in the gene pool of the studied species of Mesocestoides. In addition, the presence of three isoforms of the cytochrome b polypeptide was established. Analysis of amino acid substitutions in these polypeptide isoforms and the polypeptide from the M. minutus sample also indicates that the latter belongs to a separate species.

Ключевые фразы: ген cytb, генетическое разнообразие, mesocestoides, полипептид, тетратиридий

Автор (ы): Поспехова Наталья Анатольевна, Переверзева Виктория Владимировна, Докучаев Николай Евгеньевич, Примак Андрей Александрович

Журнал: ТРУДЫ ЗООЛОГИЧЕСКОГО ИНСТИТУТА РАН

Предпросмотр статьи

Идентификаторы и классификаторы

SCI: Биология
УДК: 576.895.121. Cestodes. Ленточные глисты

Для цитирования:

ПОСПЕХОВА Н. А., ПЕРЕВЕРЗЕВА В. В., ДОКУЧАЕВ Н. Е., ПРИМАК А. А. АНАЛИЗ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ ГЕНА CYTB ТЕТРАТИРИДИЕВ MESOCESTOIDES VAILLANT, 1863 ОТ МЕЛКИХ МЛЕКОПИТАЮЩИХ ДАЛЬНЕГО ВОСТОКА РОССИИ // ТРУДЫ ЗООЛОГИЧЕСКОГО ИНСТИТУТА РАН. 2025. № 1, ТОМ 329

Текстовый фрагмент статьи

Список литературы

1. Алви МА., Альшаммари А., Али Р.М.А., Уль Хак С., Башир Р., Ли Л., Сакиб М., Саджид М.С., Гафур М., Имран М., Иджаз М.У., Фу Б.-К., Саид М., Ахмад И., Лю Ю.-Ю., Ян Х.- B. и Jia.- Z. 2023. Выявление популяционного разнообразия, основанного на новых генах cytb и nad5, и устойчивости к бензимидазолу у Echinococcus granulosus бычьего происхождения. Границы ветеринарии, 10: 119-1271. DOI: 10.3389 / fvets.2023.1191271
2. Байер А., Альсарраф М., Д., Мирзее Э., Мегголодзей-Собокинс, Бен-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро-Боро Я Являюсь Членом Совета Директоров, Членом Совета Директоров, Членом Совета Директоров, Членом Совета Директоров, Членом Совета Директоров, Членом Совета Директоров., Горец., Альсарраф М. и Бен.М. 2020. Грызуны как промежуточные хозяева цестод, паразитирующих у плотоядных млекопитающих и хищных птиц в Польше. Паразиты и переносчики, 13: 95. DOI: 10.1186 / s13071-020-3961-2
3. Банделт Х.Дж., Форстер П. и Р., 1999. Медианная сеть для определения внутривидовой филогении. Молекулярная биология и эволюция, 16: 37-48. DOI: 10.1093 / oxford journals.molbev.a026036
4. Бутвилов С.В., Бармагов Е.В., Бутвилов В.Е., Давыдов В.В., Черноус Е.А. и Викрам Хрусталев В.В., 2009. Основные методы молекулярной эволюции. Белпринт, mins, 216 с. [На русском языке].
5. Кросби П.Р., Надлер С.А., Платцер Э.Г., Викинг С., Марио Дж. и Бойс.М., 2000. Молекулярная систематика Mesocestoides spp. (Cestoda: Mesocestoididae) от домашних собак (Canis familiaris) и койотов (canis latrans). Журнал паразитологии, 86: 350-357. [0350:MSOMSC]2.0.CO; 2. DOI: 10.1645 / 0022-3395 (2000) 086
6. Этгес Ф.Дж., 1991. Пролиферативный тетратиридий Mesocestoides vogae sp. n. (Цестода). Журнал гельминтологического общества Глазго, 58 (2): 181-185.
7. Экскоффье Л., Лаваль Г. и Шнайдер С., 2005. Harlequin версии 3.0: интегрированная “мягкая виагра” для анализа данных популяционной генетики. Эволюционная биоинформатика Онлайн, 1: 47-50. DOI: 10.1177 / 117693430500100003
8. Губный А. и Эстербауэр Э., 1998. Морфологическое исследование видов Mesocestoides (Cestoda, Mesocestoididae), паразитирующих на Vulpes vulpes в Венгрии. Miscellanea Zoologica Hungarica, 12: 11-19.
9. Хассанин А., Лекуантр Г. и Тиллиер С., 1998. “Эволюционный сигнал” гомоплазии в последовательностях генов, кодирующих белки, и его последствия для априорного определения целей в филогенезе. Конференция по рандеву в академии наук. Наука о жизни, 321 (7): 611-620. DOI: 10.1016/S0764-4469(98)80464-2
10. Х. Р., Митропа Мегагова М., О’Коннор А., Снабель В. и Олсон П.Д. 2011. Молекулярное и морфологическое описание мезоцестоидов рыжих лисиц (Vulpes vulpes) в Центральной Европе. Паразитология, 138 (5): 638-647. DOI: 10.1017 / S0031182011000047
11. Собочи-Собочи-Собочи-Собочи-Собочи-Собочи-Собочи, Стояйя Дж., Макондзиор Э., Ручи Дж.М. 2019. Генетическое разнообразие генов ДНК микрохондрий у Spirometra erinaceieuropaei (Cestoda: Diphyllobothridae) из Польши. Журнал зоологической систематики и эволюционных исследований, 57: 764-777. DOI: 10.1111 / jzs.12319 EDN: PEM
12. Политика конфиденциальности _ Политика конфиденциальности _ Юридическое уведомление _ Политика конфиденциальности _ Политика использования файлов cookie и Шенброт Г.И. 2022. Полевки и лемминги (Arvicolinae) Палеарктического региона. Издательство университета, Марибор, 437 стр. DOI: 10.18690 / um.fnm.2.2022
13. Литература И., Тенора Ф., Let WGM / WGM / WGM., Голдов М., Торрес Дж. и Олсон П.Д., 2006. Mesocestoides litteratus (Batsch, 1786) (Cestoda: Cyclophyllidea: Mesocestoididae) от рыжей лисицы: морфологическая характеристика и 18S рДНК европейских изолятов. Гельминтология, 43: 191-195. DOI: 10.2478 / s11687-006-0036-7
14. На Мегакао М., Йо Макгояма Н., Са., Фу Мегунага М. и Ито А. 2002. Полная последовательность митохондриальной ДНК цестоды Echinococcus multilocularis (Cyclophyllidea: Taeniidae). Митохондрия, 1 (6): 497-509. DOI: 10.1016 / s1567-7249 (02)00040-5
15. Nei, 1987. Молекулярная эволюционная генетика. Издательство Колумбийского университета, Нью-Йорк, 495 стр. DOI: 10.7312 / nei-92038
16. Ней М. С., 2000. Молекулярная эволюция и филогенетика. Издательство Оксфордского университета, Нью-Йорк, 352 стр. DOI: 10.1093 / oso / 9780195135848.001.0001
17. Николай Викторович фон М., Ричард Л. и Лоос-Франциска Б., 1999. Вклад в филогению циклофиллид (Cestoda), полученный на основе митохондриальной 12S рДНК. Журнал молекулярной эволюции, 48: 586-596. DOI: 10.1007 / pl00006501 EDN: NAFLQO
18. Паджетта. и Бойс.М., 2005. Лоси как первые промежуточные хозяева Mesocestoides на острове Сан-Мигель, США. Журнал гельминтологии, 79: 67-73. DOI: 10.1079 / joh2005275
19. Паджетта., Надлер С.А., Мансон Л., САКП Б. и Бойс.М., 2005. Систематика мезоцестоидов (Cestoda: Mesocestoididae): оценка молекулярной и морфологической изменчивости среди изолятов. Журнал паразитологии, 91: 1435-1443. DOI: 10.1645 / GE-3461.1
20. Поспе Мгачова Н.А., Переверзева В.В. и до Мегачаев Н.Е. 2018. Первые молекулярно-генетические сведения о tetrathyridia рода Mesocestoides от красно-Бактрии полевки из Магаданской области. Паразитология, 52 (5): 382-394. [На Русском]. DOI: 10.7868 / S0031184718050037
21. Поспе Мгачова Н.А., Переверзева В.В., До Мегачаев Н.Е. и Прима.А. 2023. Филогенетические связи представителей рода Mesocestoides Vaillant, 1863 с мелкими млекопитающими Востока России и Аляски. Вестник Северо-Восточного исследовательского центра, 3: 67-79. [На русском языке]. DOI: 10.34078 / 1814-0998-2023-3-67-79
22. Поспе Мгачова Н.А., Переверзева В.В., До Мегачаев Н.Е. и Прима.А. 2024. Филогенетические связи Mesocestoides Vaillant, 1863 tetrathyridia из мелких млекопитающих Восточной России и крыльев, основанные на гене 18S рРНК. Паразитология, 58 (2): 91-100. [На русском языке]. DOI: 10.31857 / S0031184724020017
23. Сержант Ф., Жуэ Д., Ферте Х. и Нильсен О.К., 2016. Встречаемость Mesocestoides canislagopodis (Rudolphi, 1810) (Magnagrabbe, 1865) у млекопитающих и птиц Исландии и их молекулярное определение в комплексе видов Mesocestoides. Паразитологические исследования, 115 (7): 2597-2607. DOI: 10.1007 / s00436-016-5006-5
24. Тамура., Штехер Г., Петерсон Д., Филиппи А. С. п. 2013. MEGA6: молекулярно-эволюционный генетический анализ, версия 6.0. Молекулярная биология и эволюция, 30: 2725-2729. DOI: 10.1093 / molbev/mst197
25. Ульзийджаргал Г., Йеруулт К., Мгулан Дж., Ганцецег К., Мегачандра Т., Ямасамги Х. и Наранмагхаджид М. 2020. Молекулярная идентификация видов Taenia hydatigena и Mesocestoides на основе анализа копроднк плотоядных животных Монголии.Международный журнал по паразитологии: Паразиты и паразиточеловеки, 11: 72-82. DOI: 10.1016 / j.ijppa.2019.12.004
26. Макколи С., Джонсон Дж., Смит М.Дж., Крэндалл А. и Макклеллан Д.А. 2003. TreeSAAP: Отбор по свойствам аминокислот с использованием филогенетических деревьев. Биоинформатика, 19 (5): 671-672. DOI: 10.1093 / биоинформатика / btg043
27. Й.-Д., Дай Г.-Д., Ли Л., Литтлвуд Д.Т.Дж., Охиолей Дж.А. и др., 2022. Расширение биоразнообразия циклофиллид у грызунов Цинхай-Тибетского нагорья и гипотеза о циклофиллидах “за пределами Цинхай-Тибетского нагорья”. Границы микробиологии, 13: 747-484. DOI: 10.3389 / fmicb.2022.747484 НОМЕР издания: NL
28. Зейл Г. и Хильдебранд Дж., 2012. Молекулярная идентификация Mesocestoides spp. от промежуточных хозяев (грызунов) в Центральной Европе (Польша). Паразитологические исследования, 110 (2): 1055-1061. DOI: 10.1007 / s00436-011-2598-7
29. Зардойя Р. и Мейер А., 1996. Филогенетическая роль генов, кодирующих митохондриальные белки, в установлении взаимоотношений между позвоночными. Молекулярная биология и эволюция, 13: 933-942. DOI: 10.1093 / oxford journals.molbev.a025661
30. Чжан И., Чжао., Ян Д., Тянь Ю., Чжан. и Лю А. 2018. Генетическая характеристика трех последовательностей митохондриальных генов изолятов Coenurus cerebralis и cysticercus tenuicollis, полученных от коз/овец, во Внутренней Монголии, Китай. Паразит, 25: 1-6. DOI: 10.1051 / паразит / 2018002
31. Чжун Х., Магганг Н., Ху Д., Магганг Дж., Лю Т., Гу Х., Магганг С., Пэн Х. и Ян Г., 2014. Анализ последовательности гена cytb у Echinococcus granulosus из Китая. Журнал паразитологии, 52 (2): 205-209. DOI: 10.3347 / aggijp.2014.52.2.205
32. Янчев, 1986. Морфология, систематика и распространение видов рода Mesocestoides Vaillant, 1863 в Болгарии. Гельминтология, 21: 45-65.
33. Ян Д., Жэнь Ю., Фу Ю., Се Ю., Не Х., Нонг Х., Гу Х., Магган С., Пэн Х. и Ян Г. 2013. Генетическая вариация Taenia pisiformis, собранная в провинции Сычуань, Китай, основана на митохондриальном гене цитохрома В. Журнал паразитологии, 51 (4): 449-452. DOI: 10.3347 / aggijp.2013.51.4.449

1. Alvi M.A., Alshammari A., Ali R.M.A., Ul Haq S., Bashir R., Li L., Saqib M., Sajid M.S., Ghafoor M., Imran M., Ijaz M.U., Fu B.-Q., Saeed M., Ahmad I., Liu Y.-Y., Yan H.-B. and Jia W.-Z. 2023. Revealing novel cytb and nad5 genes-based population diversity and benzimidazole resistance in Echinococcus granulosus of bovine origin. Frontiers in Veterinary Science, 10: 1191271. DOI: 10.3389/fvets.2023.1191271
2. Bajer A., Alsarraf M., Dwuznik D., Mierzejewska E.J., Kolodziej-Sobocinska M., Behnke-Borowczyk J., Banasiak L., Grzybek M., Tolkacz K., Kartawik N., Stanczak L., Opalinska P., Krokowska-Paluszak M., Gorecki G., Alsarraf M. and Behnke J.M. 2020. Rodents as intermediate hosts of cestode parasites of mammalian carnivores and birds of prey in Poland, with the first data on the life-cycle of Mesocestoides melesi. Parasites & Vectors, 13: 95. DOI: 10.1186/s13071-020-3961-2
3. Bandelt H.J., Forster P. and Röhl A. 1999. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies. Molecular Biology and Evolution, 16: 37-48. DOI: 10.1093/oxfordjournals.molbev.a026036
4. Butvilovsky A.V., Barkovsky E.V., Butvilovsky V.E., Davydov V.V., Chernous E.A. and Khrustalev V.V. 2009. Basic methods of molecular evolution. Belprint, Minsk, 216 p. [In Russian].
5. Crosbie P.R., Nadler S.A., Platzer E.G., Kerner C., Mariaux J. and Boyce W.M. 2000. Molecular systematics of Mesocestoides spp. (Cestoda: Mesocestoididae) from domestic dogs (Canis familiaris) and coyotes (Canis latrans). Journal of Parasitology, 86: 350-357. [0350:MSOMSC]2.0.CO;2. DOI: 10.1645/0022-3395(2000)086
6. Etges F.J. 1991. The proliferative tetrathyridium of Mesocestoides vogae sp. n. (Cestoda). Journal of the Helminthological Society of Washington, 58(2): 181-185.
7. Excoffier L., Laval G. and Schneider S. 2005. Arlequin ver. 3.0: an integrated software package for population genetics data analysis. Evolutionary Bioinformatics Online, 1: 47-50. DOI: 10.1177/117693430500100003
8. Gubányi A. and Eszterbauer E. 1998. Morphological investigation of Mesocestoides (Cestoda, Mesocestoididae) species parasitizing Vulpes vulpes in Hungary. Miscellanea Zoologica Hungarica, 12: 11-19.
9. Hassanin A., Lecointre G. and Tillier S. 1998. The “evolutionary signal” of homoplasy in protein-coding gene sequences and its consequences for a priori weighting in phylogeny. Comptes Rendus de l’Académie des Sciences. Sciences de la Vie, 321(7): 611-620. DOI: 10.1016/S0764-4469(98)80464-2
10. Hrćkova G., Miterpakova M., O’Connor A., Snabel V. and Olson P.D. 2011. Molecular and morphological circumscription of Mesocestoides tapeworms from red foxes (Vulpes vulpes) in central Europe. Parasitology, 138(5): 638-647. DOI: 10.1017/S0031182011000047
11. Kołodziej-Sobocińska M., Stojak J., Kondzior E., Ruczyńska I. and Wójcik J.M. 2019. Genetic diversity of two mitochondrial DNA genes in Spirometra erinaceieuropaei (Cestoda: Diphyllobothridae) from Poland. Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research, 57: 764-777. DOI: 10.1111/jzs.12319 EDN: PEMKXK
12. Kryštufek B. and Shenbrot G.I. 2022. Voles and lemmings (Arvicolinae) of the Palaearctic region. University Press, Maribor, 437 p. DOI: 10.18690/um.fnm.2.2022
13. Literák I., Tenora F., Letková V., Goldová M., Torres J. and Olson P.D. 2006. Mesocestoides litteratus (Batsch,1786) (Cestoda: Cyclophyllidea: Mesocestoididae) from the red fox: morphological and 18S rDNA characterization of European isolates. Helminthologia, 43: 191-195. DOI: 10.2478/s11687-006-0036-7
14. Nakao M., Yokoyama N., Sako Y., Fukunaga M. and Ito A. 2002. The complete mitochondrial DNA sequence of the cestode Echinococcus multilocularis (Cyclophyllidea: Taeniidae). Mitochondrion, 1(6): 497-509. DOI: 10.1016/s1567-7249(02)00040-5
15. Nei M. 1987. Molecular evolutionary genetics. Columbia University Press, New York, 495 p. DOI: 10.7312/nei-92038
16. Nei M. and Kumar S. 2000. Molecular evolution and phylogenetics. Oxford University Press, New York, 352 p. DOI: 10.1093/oso/9780195135848.001.0001
17. Nickisch-Rosenegk von M., Richard L. and Loos-Frank B. 1999. Contributions to the phylogeny of the Cyclophyllidea (Cestoda) inferred from mitochondrial 12S rDNA. Journal of Molecular Evolution, 48: 586-596. DOI: 10.1007/pl00006501 EDN: NAFLQO
18. Padgett K.A. and Boyce W.M. 2005. Ants as first intermediate hosts of Mesocestoides on San Miguel Island, USA. Journal of Helminthology, 79: 67-73. DOI: 10.1079/joh2005275
19. Padgett K.A., Nadler S.A., Munson L., Sacks B. and Boyce W.M. 2005. Systematics of Mesocestoides (Cestoda: Mesocestoididae): evaluation of molecular and morphological variation among isolates. Journal of Parasitology, 91: 1435-1443. DOI: 10.1645/GE-3461.1
20. Pospekhova N.A., Pereverzeva V.V. and Dokuchaev N.E. 2018. The first molecular genetic data on the tetrathyridia of the genus Mesocestoides from the red-backed vole from Magadan province. Parazitologiya, 52(5): 382-394. [In Russian]. DOI: 10.7868/S0031184718050037
21. Pospekhova N.A., Pereverzeva V.V., Dokuchaev N.E. and Primak A.A. 2023. Phylogenetic relationships of representatives of the genus Mesocestoides Vaillant, 1863 from small mammals in the East of Russia and Alaska. Bulletin of the North-East Research Center FEB RAS, 3: 67-79. [In Russian]. DOI: 10.34078/1814-0998-2023-3-67-79
22. Pospekhova N.A., Pereverzeva V.V., Dokuchaev N.E. and Primak A.A. 2024. Phylogenetic relationships of Mesocestoides Vaillant, 1863 tetrathyridia from small mammals of Eastern Russia and Alaska based on 18S rRNA gene. Parazitologiya, 58(2): 91-100. [In Russian]. DOI: 10.31857/S0031184724020017
23. Skirnisson K., Jouet D., Ferté H. and Nielsen Ó.K. 2016. Occurrence of Mesocestoides canislagopodis (Rudolphi, 1810) (Krabbe, 1865) in mammals and birds in Iceland and its molecular discrimination within the Mesocestoides species complex. Parasitology Research, 115(7): 2597-2607. DOI: 10.1007/s00436-016-5006-5
24. Tamura K., Stecher G., Peterson D., Filipski A. and Kumar S. 2013. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Molecular Biology and Evolution, 30: 2725-2729. DOI: 10.1093/molbev/mst197
25. Ulziijargal G., Yeruult C., Khulan J., Gantsetseg C., Wandra T., Yamasaki H. and Narankhajid M. 2020. Molecular identification of Taenia hydatigena and Mesocestoides species based on copro-DNA analysis of wild carnivores in Mongolia.International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 11: 72-82. DOI: 10.1016/j.ijppaw.2019.12.004
26. Woolley S., Johnson J., Smith M.J., Crandall K.A. and McClellan D.A. 2003. TreeSAAP: Selection on Amino Acid Properties using phylogenetic trees. Bioinformatics, 19(5): 671-672. DOI: 10.1093/bioinformatics/btg043
27. Wu Y.-D., Dai G.-D., Li L., Littlewood D.T.J., Ohiolei J.A. et al. 2022. Expansion of Cyclophyllidea biodiversity in rodents of Qinghai-Tibet Plateau and the “Out of Qinghai-Tibet Plateau” hypothesis of Cyclophyllideans. Frontiers in Microbiology, 13: 747484. DOI: 10.3389/fmicb.2022.747484 EDN: NLWMEK
28. Zaleśny G. and Hildebrand J. 2012. Molecular identification of Mesocestoides spp. from intermediate hosts (rodents) in central Europe (Poland). Parasitology Research, 110(2): 1055-1061. DOI: 10.1007/s00436-011-2598-7
29. Zardoya R. and Meyer A. 1996. Phylogenetic performance of mitochondrial protein-coding genes in resolving relationships among vertebrates. Molecular Biology and Evolution, 13: 933-942. DOI: 10.1093/oxfordjournals.molbev.a025661
30. Zhang Y., Zhao W., Yang D., Tian Y., Zhang W. and Liu A. 2018. Genetic characterization of three mitochondrial gene sequences of goat/sheep-derived Coenurus cerebralis and Cysticercus tenuicollis isolates in Inner Mongolia, China. Parasite, 25: 1-6. DOI: 10.1051/parasite/2018002
31. Zhong X., Wang N., Hu D., Wang J., Liu T., Gu X., Wang S., Peng X. and Yang G. 2014. Sequence analysis of cytb gene in Echinococcus granulosus from western China. Korean Journal of Parasitology, 52(2): 205-209. DOI: 10.3347/kjp.2014.52.2.205
32. Yanchev Y. 1986. Morphology, taxonomy and distribution of the species of the genus Mesocestoides Vaillant, 1863 in Bulgaria. Khelmintologiya, 21: 45-65.
33. Yang D., Ren Y., Fu Y., Xie Y., Nie H., Nong X., Gu X., Wang S., Peng X. and Yang G. 2013. Genetic variation of Taenia pisiformis collected from Sichuan, China, based on the mitochondrial cytochrome b gene. Korean Journal of Parasitology, 51(4): 449-452. DOI: 10.3347/kjp.2013.51.4.449

Выпуск

№ 1, Том 329 (2025)

Кол-во страниц: 74 страницы

Другие статьи выпуска

К познанию рода Hysterosphaerius Melichar, 1906 (Hemiptera: Fulgoroidea: Issidae) (2025)

Авторы: Гнездилов Владимир Михайлович

Hysterosphaerius sexpunctatus Melichar, 1906, типовой вид монотипического рода Hysterosphaerius Melichar, 1906, переописан по новым материалам из Сингапура. Генитальные структуры самца H. sexpunctatus впервые описаны и проиллюстрированы. Обсуждены родственные отношения рода Hysterosphaerius в пределах трибы Hemisphaeriini Melichar (Issinae).

Сохранить в закладках

Современное состояние зоопланктона озера Валдайское (Национальный парк «Валдайский») (2025)

Авторы: Литвинчук Лариса Федоровна

Национальный парк «Валдайский» – это одна из крупнейших особо охраняемых природных территорий европейской части России. На территории этого национального парка находится около 200 озёр, одно из которых озеро Валдайское. Изучение его зоопланктонного сообщества началось более 100 лет назад и проводилось неоднократно. Наличие длительного ряда исследований дает редкую возможность проследить изменения в зоопланктоне этого уникального водоема. Летом 1999 и 2020 гг. был исследован пелагический зоопланктон (Rotifera, Cladocera и Copepoda) этого озера. Обнаружено 39 таксонов беспозвоночных. Основу сообщества составляли виды, типичные для умеренной зоны европейской части России. Качество вод в озере в течение всего периода исследования можно оценить как олигосапробные (чистые). На участках озера, расположенных рядом с населенными пунктами, отмечено повышение численности и биомассы зоопланктона, снижение числа видов-индикаторов олигосапробных вод, увеличение доли особей веслоногих ракообразных с признаками морфопатологии. В целом, численность зоопланктона в Валдайском озере за последние годы значительно снизилась, а биомасса в Городском и Центральном плесах возросла по сравнению с 1970-ми годами.

Сохранить в закладках

Систематика американских кузнечиков (Orthoptera: Tettigoniidae). Сообщение 12: подтрибы Steirodontina и Anaulacomerina (2025)

Авторы: Горохов Андрей Васильевич

Рассмотрен новый материал по родам Steirodon Serville, 1831, Cnemidophyllum Rehn, 1917, Emsleyfolium Cadena-Castañeda et al., 2016 и Stilpnochlora Stål, 1873 из подтрибы Steirodontina (Steirodontini), а также по родам Separatula Gorochov, 2018 и Anaulacomera Stål, 1873, принадлежащим подтрибе Anaulacomerina (Phaneropterini). Кратко обсуждены некоторые подроды этих родов и их диагностические признаки. Описаны следующие новые таксоны (13): Steirodon (Steirodon) superbum sp. nov. из Перу; S. (Peucestes) para sp. nov. из Бразилии; S. (P.) dentatum woronovi subsp. nov. из Колумбии; S. (Posidippus) minor sp. nov. из Французской Гвианы; S. (Frontinus) planifemur sp. nov. из Перу; Cnemidophyllum (Peucestophyllum) granti peruanum subsp. nov. из Перу; C. (Peucestoides) bituberculatum sp. nov. из Перу; Emsleyfolium unilobatum sp. nov. из Перу; E. cusco sp. nov. из Перу; Stilpnochlora jalisco sp. nov. из Мексики; S. marginella latistriata subsp. nov. из Суринама; Separatula symmetrica sp. nov. из Перу; S. falcata tenuis subsp. nov. из Перу. Steirodon validum Stål, 1874 и S. (Posidippum) parastahli Piza, 1979 возвращены в подроды Steirodon и Posidippus Brunner-Wattenwyl, 1878 соответственно (но последний вид как возможный синоним S. stahli BrunnerWattenwyl, 1878); родовые названия Phyllolophus Rehn, 1944 и Steirodonopis Scudder, 1875 возвращены в синонимы подродов Steirodon и Frontinus Stål, 1873 также соответственно. Гомонимичное название Posidippus validus Saussure et Pictet, 1898 заменено на новое замещающее название S. (Posidippus) major nom. nov., и S. (P.) dentiferoides Emsley, 1970, syn. nov. синонимизирован с S. (P.) stahli. Для Steirodon (Frontinus) irregulariterdentatum (Brunner-Wattenwyl, 1891) обозначен неотип, и этот вид переописан; Posidippus rarospinulosus Brunner-Wattenwyl, 1891 перемещен в Steirodon (Frontinus), а P. tricenarius Piza, 1974 трактуется как отдельный вид того же подрода, а не как синоним S. (F.) rufolineatum Emsley, 1970. Cnemidophyllum (Cnemidophyllum) tani Cadena-Castañeda, 2016 перемещен в подрод Peucestophyllum Emsley, 1970 этого же рода. Для A. (Munticercora) sclerogenitalis woronovi Gorochov, 2021 впервые описаны церки самца.

Сохранить в закладках

Новый вид рода Osteodiscus (Cottoidei: Liparidae) из Курильской котловины Охотского моря (северо-западная Пацифика) (2025)

Авторы: Чернова Наталья Владимировна, THIEL R.

Описан новый вид липаровых рыб из рода Osteodiscus Stein, 1978, представители которого отличаются от Careproctus Krøyer, 1862 редукцией мягких тканей в брюшной присоске. Tри экземпляра Osteodiscus lindbergi sp. nov. были пойманы в ходе международной экспедиции СохоБио («Sea of Okhotsk Biodiversity Studies», 2015 г.) в Курильской котловине Охотского моря на абиссальных глубинах (3306–3348 м). От четырех других представителей рода новый вид отличается числом позвонков (53) и лучей в спинном (51) и анальном (42) плавниках, выемчатым грудным плавником с умеренно удлиненной нижней лопастью (составляющей 67–76% длины его верхней лопасти), горизонтальным ртом, отсутствием шипиков на коже. Окраска головы и тела коричневая, перитонеум черный. Этот абиссобентальный вид, по-видимому, эндемичен для Курильской глубоководной котловины.

Сохранить в закладках

Издательство

Издательство: ЗИН РАН
Регион: Россия, Санкт-Петербург
Почтовый адрес: 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д. 1
Юр. адрес: 199034, г. Санкт-Петербург, Университетская наб., д. 1
ФИО: Чернецов Никита Севирович (Директор)
E-mail адрес: director@zin.ru
Контактный телефон: +7 (812) 3280011
Сайт: https://zin.ru

Все права на тексты и товарные знаки принадлежат их законным владельцам. Подробнее...

Сайт https://scinetwork.ru (далее – сайт) работает по принципу агрегатора – собирает и структурирует информацию из публичных источников в сети Интернет, то есть передает полнотекстовую информацию о товарных знаках в том виде, в котором она содержится в открытом доступе.

Сайт и администрация сайта не используют отображаемые на сайте товарные знаки в коммерческих и рекламных целях, не декларируют своего участия в процессе их государственной регистрации, не заявляют о своих исключительных правах на товарные знаки, а также не гарантируют точность, полноту и достоверность информации.

Все права на товарные знаки принадлежат их законным владельцам!

Сайт носит исключительно информационный характер, и предоставляемые им сведения являются открытыми публичными данными.

Администрация сайта не несет ответственность за какие бы то ни было убытки, возникающие в результате доступа и использования сайта.

Спасибо, понятно.

Наведите камеру на QR-код, чтобы открыть моб. версию страницы.