В работе обобщены современные представления о стволовых клетках, рассмотрены их классификация и значение для фундаментальных целей клеточной биологии и клинической медицины, а также показаны возникшие противоречия между представлениями классической гистологии и современными сведениями о стволовых клетках. Обсуждена роль и значимость основных концепций о стволовых клетках для развития регенеративной медицины. Поставлен вопрос о необходимости создания в медицинских вузах курса, посвящённого стволовым клеткам и клеточным технологиям.
Идентификаторы и классификаторы
Исследованию стволовых клеток (начатого с изучения гемопоэтической стволовой клетки, предсказанной А.А. Максимовым) посвящён гигантский массив литературы, в том числе десятки обзоров и монографий [1–10 и др.]. За прошедшие более чем 100 лет изучения концепция стволовой клетки претерпела значительные изменения. Однако и в настоящее время ещё нет общепринятой модели стволовой клетки [9].
Список литературы
- Дыгай А.М., Семченко В.В., Лебедев И.Н., и др. Регенеративная биология и медицина. Кн. 3. Клеточные технологии в клинической медицине. Москва, Омск, Томск, Ханты-Мансийск:
Омская областная типография, 2017. 774 с - Ерениев С.И., Степанов С.С., Дыгай А.М., и др. Регенеративная биология и медицина. Кн. 2. Клеточные технологии в терапии болезней нервной системы. Ред. Ярыгин К.Н., Семченко В.В., Ярыгин В.Н. Екатеринбург, Москва, Омск, Томск, Ханты-Мансийск: Омская областная типография, 2015. 360 с.
- Зорин В.Л., Зорина А.И., Пулин А.А., Копнин П.Б., Ерёмин И.И. Перспективы использования клеток, обладающих миогенным потенциалом в лечении заболеваний скелетных мышц: обзор исследований. Ч. 1. Сателлитные клетки // Патологическая
физиология и экспериментальная терапия. 2015. Т. 59, № 2. С. 88–98. - Никольский Н.Н., Габай И.А. Эмбриональные стволовые клетки человека. Проблемы и перспективы // Цитология. 2007. Т. 49, № 7. С. 529–537.
- Семченко В.В., Ерениев С.И., Степанов С.С., и др. Регенеративная биология и медицина. Кн. 1. Генные технологии и клонирование. Омск, Москва, Томск: Oмская областная типография. 2012. 296 с.
- Стадников А.А., Шевлюк Н.Н. Стволовые клетки и репаративная регенерация в постнатальном онтогенезе млекопитающих //
- Danisovic L., Oravcova L., Krajciova L., et al. Effect of longterm culture on the biological and morphological characteristics of human adipose tissue-derived stem cells // J. Physiol. Vol. 68, № 1. P. 149–158.
- Glenn J.D., Whartenby T.A. Mesenchymal stem cells: Emerging mechanisms of immunomodulation and therapy // World J. Stem Cells. 2014. Vol. 6, № 5. P. 526–539. doi: 10.4252/wjsc.v6.i5.526
- Paniker M., Rao M. Stem cells and neurogenesis // Stem cell biology. New York: Cold Spring Harbor Lab. Press. 2001. P. 399–438.
- Vogel H., Niewisch H., Matioli G. Stochastic development of stem cells // J. Theor. Biol. 1969. Vol. 22, № 2. P. 249–270.
- Воротеляк Е.А., Васильев А.В., Терских В.В. Проблема дефиниции стволовой клетки // Цитология. 2019. Т. 61, № 1. С. 3–15.
- Terminologia Histologica. Международные термины по цитологии и гистологии человека с официальным списком русских эквивалентов. Под редакцией чл.-корр. РАМН В.В.Банина и проф. В.Л.Быкова. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2009. 272 с.
- Terminologia Embryologica. Международные термины по эмбриологии человека с официальным списком русских эквивалентов. Под редакцией акад. РАН Л.Л.Колесникова, проф. Н.Н.Шевлюка, проф. Л.М.Ерофеевой. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2014. 422 с.
- Бородина А.В., Грюкова А.А., Шатрова А.Н., Бурова Е.Б., Никольский Н.Н., Дерябин П.И. Распространение преждевременного старения в популяции эндометриальных стволовых клеток человека // Цитология. 2017. Т. 59, № 11. С. 748.
- Zhang Y., Lin X., Dai Y., et al. Endometrial stem cells repair injred endometrium and induce angiogenesis via akt and Erk pathways // Reproduction. 2016. Vol. 152, № 5. P. 389–402. doi: 10.1530/REP-16-0286
- Демура С.А., Коган Е.А., Пауков В.С. Морфология и молекулярные основы повреждения ниш стволовых клеток респираторного ацинуса при идиопатических интерстициальных пневмониях // Архив патологии. 2014. Т. 76, № 6. С. 28–36. doi: 10.17116/patol201476628-36
- Докшин П.М., Малашичева А.Б. Активация репаративных свойств стволовых клеток сердца при остром инфаркте миокарда // Цитология. 2017. Т. 59, № 11. С. 758–759.
- Maruyama T., Masuda M., Ono M., Kajitani T., Yoshimura G. Human uterine stem/progenitor cells: their possible role in uterine physiology and pathology // Reproduction. 2010. Vol. 140, № 1.P. 11–22. doi: 10.1530/REP-09-0438
- Мнихович М.В. Морфологические и ультраструктурные особенности эпителиально-мезенхимальной трансформации при раке молочной железы // Вестник авиценны. 2013. № 2. С. 39–45.
- Hashimoto N., Phan S.H., Imaizumi K., et al. Endothelialmesenchymal transition in bleomycin-induced pulmonary fibrosis // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2010. Vol. 43, № 2. P. 161–172. doi:
10.1165/rcmb.2009-0031OC - Исаева В.В., Ахмадиева А.В., Александрова Я.Н., Шукалюк А.И. Морфофункциональная организация стволовых резервных клеток, обеспечивающих бесполое и половое размножение беспозвоночных животных // Онтогенез. 2009. Т. 40, № 2. С. 83–96.
- Скавуляк А.Н., Крещенко Н.Д., Емаков А.Н. Регуляция суточ- ной митотической активности стволовых клеток у планарий // Цитология. 2017. Т. 59, № 11. С. 788–789.
- Peter R., Ladurner P., Rieger R.M. The role of stem cell strategies in coping with environmental stress and choosing between alternative reproductive modes: turbellaria rely on a single cell
type to maintain individual life and propagate species // Matine Ecol. 2001. Vol. 22, № 1–2. P. 39–51. - Кожухарова И.В., Фридлянская И.И., Ковалёва З.В., и др. Но- вые линии эмбриональных стволовых клеток человека С612 и С910 // Цитология. 2009. Т. 51, № 7. С. 551–557.
- Крылова Т.А., Кольцова А.М., Зенин В.В., и др. Характеристики и специфические особенности новых линий эмбриональных стволовых клеток человека // Цитология. 2009. Т. 51, № 7. С. 565–575.
- Golos T.G., Glacoumopoulos M., Gartuwaile M.A. Embryonic stem cells as models of throphoblast differentiation: progress, opportunities and limitations // Reproduction. 2010. Vol. 140 № 1. P. 3–9. doi: 10.1530/REP-09-0544
- Thomson J.A., Itskovitz-Eldor J., Shapiro S.S., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts // Science. 1998. Vol. 282, № 5391. P. 1145–1147.
- Baker E.C., Harrison N.J., Maltby E., et al. Adaptation of culture of human embryonic stem cells and ontogenesis in vivo // Nature Biotechnology. 2007. Vol. 25. № 2. P. 206–215. doi: 10.1038/nbt1285
- Pfeffer P.L., Pearton D.J. Trophoblasts development // Reproduction. 2012. Vol. 143. № 3. P. 231–246. doi: 10.1530/REP-11-0374
- Сohnheim J. Congenitales, quergestreiftes Muskelsarkom der Nieren // Archiv fur pathologische Anatomie und Physiologie und fur klinische Medicin. 1975. Bd. 65, № 1. S. 64–69.
- Иванов А.А., Попова О.П., Кузнецова А.В., Данилова Т.И. Стволовые опухолевые клетки при раке молочной железы // Архив патологии. 2015. Т. 77, № 5. С. 64–67. doi: 10.17116/patol201577564-67
- Москалёва Е.Ю., Жорова Е.С., Семочкина Ю.П., и др. Характеристика опухолей, развившихся у мышей после введения сингенных облучённых мезенхимных стволовых клеток костного мозга // Цитология. 2017. Т. 59, № 4. С. 271–278.
- Hubbard S.A., Gargett C.E. A cancer stem cell origin for human endometrial carcinoma? // Reproduction. 2010. Vol. 140, № 1. P. 11–22. doi: 10.1530/REP-09-0411
- Nowell P.C. The clonal evolution of tumor cell populations // Science. 1976. Vol. 194, № 4260. P. 23–28. doi: 10.1126/science.959840
- Perou S.M., Sorlie T., Eisen M.B., et al. Molecular portraits of human breast tumours // Nature. 2000. Vol. 406, № 6797. P. 747–752. doi: 10.1038/35021093
- Yu B., Cu T., Zhang X., Yu X., Kong W. Sphere formation assay is not an effective method for cancer stem cell derivation and chatacterization from the Caco-2 colotectal cell line // Curr. Stem Cell Res. Ther. 2014. № 9. P. 82–88. doi: 10.2174/1574888x09666131217114927
- Борисов К.Е., Сакаева Д.Д. Стволовые клетки глиальных опухолей головного мозга // Архив патологии. 2013. Т. 75, № 2. С. 43–52.
- Garson K., Vanderhyden B.C. Epithelial ovarian cancer stem cells: underlying complexity of a simple paradigm // Reproduction.2015. Vol. 149, № 2. P. 59–70. doi: 10.1530/REP-14-0234
- Дош Д., Харазова А.Д., Кофман А.В. Медленная пролиферация клеток злокачественных опухолей: признак стволовых клеток или реакция на неблагоприятные факторы // Цитология. 2017. Т. 59, № 7. С. 459–461.
- Мингалеева Р.Н., Мифтахова Р.Р., Ризванов А.А. Стволовые опухолевые клетки: 20 лет позади // Гены и клетки. 2015. Т. 10, № 2. С. 11–15.
- Boral D., Nie D. Cancer stem cells and niche microenvironments // Front Biosci. 2012. № 4. P. 2502–2514. doi: 10.2741/e561
- Кузнецова Д.С., Проданец Н.Н., Родимова С.А., и др. Роль подсаженных МСК в регенерации костной ткани // Морфология. 2018. Т. 153, № 3. С. 156–157.
- Тепляшин А.С., Коржикова С.В., Шарифуллина С.З., и др. Характеристика мезенхимных стволовых клеток человека, выделенных из костного мозга и жировой ткани // Цитология. 2005. Т. 47, № 2. С. 130–135.
- Dominici M., Le Blanc V., Mueller I.I., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement // Cytotherapy. 2006. Vol. 8, № 4. P. 315–317. doi:10.1080/14653240600855905
- Introna M., Rambaldi A. Mesenchymal stromal cells for prevention and treatment of graft-versus-host disease: successus and hurdles // Curr. Opin. Organ Transplant. 2015. Vol. 20, № 1. P. 72–78. doi: 10.1097/MOT.0000000000000158
- Jacono E., Brunori L., Pirrone A., et al. Isolation, characterization and differentiation of mesenchymal stem cells from amniotic fluid, umbilical cord blood and wharton’s jelly in the horse // Reproduction. 2012. Vol. 143, № 4. P. 455–468. doi: 10.1530/REP-10-0408
- Li N., Feugier P., Serrurrier B., et al. Human mesenchymal stem cells impove ex vivo expansion of adult humanCD34+ peripheral blood progenitor cells and decrease their allostimulatory capacity // Exp. Hematol. 2007. Vol. 35, № 3. P. 507–515. doi: 10.1016/j.exphem.2006.10.015
- Rafei M., Birman E., Former K., Galipeau J. Allogeneic mesenchymal stem cells for transment of experimental autoimmune encephalomyelitis // Mol. Ther. 2009. Vol. 17, № 10. P. 1799–1803.
doi: 10.1038/mt.2009.157 - Ren G., Zhang L., Zhang X., et al. Mesenchymal stem cell-mediated immunosuppression occurs via concepted action of chemokinesand nitric oxide // Cell stem cell. 2008. Vol. 2, № 2. P.
141–150. doi: 10.1016/j.stem.2007.11.014 - Zuc P.A., Zhu M., Mizino H., et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies // Tissue Eng. 2001. № 7. P. 211–218. doi: 10.1089/107632701300062859
- Sims D.E. Deversity within pericytes // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 2000. Vol. 27, № 10. P. 842–846. doi: 10.1046/j.1440-1681.2000.03343.x
- Банин В.В. Роль перицитов в гистогенезе // Морфология. 2014. Т. 145, № 3. С. 29.
- Банин В.В. Мезенхима в организме взрослого // Морфология. 2018. Т. 153, № 3. С. 34.
- Банин В.В., Арутюнян Г.А. Перициты как полипотентный источник стволовых клеток взрослого // Морфология. 2019. Т. 155, № 2. C. 32–33.
- Арутюнян Г.А. Мобилизация перицитов при репаративном ангиогенезе // Морфология. 2018. Т. 153, № 3. С. 23–24.
- Базитов А.А. Принципы определения и классификации тканей // Арх. Анат. 1982. Т. 82, № 6. С. 92–100.
- Клишов А.А. Историко-гносеологический анализ понятия «ткань» // Арх. анат. 1982. Т. 83, № 7. С. 74–93.
- Кочетов Н.Н. Диффероны, клеточные популяции и тканевой уровень в иерархии систем организма // Арх. анат. 1991. Т. 101, № 7. С. 88–92.
- Михайлов В.П. Эволюционная гистология // Бирюков Д.А., Михайлов В.П. Эволюционно-морфологические и физиологические основы развития советской медицины. Л.: Медицина.
Ленинградское отделение. 1967. С. 9–68. - Михайлов В.П. Генетическая система тканей и их иерархическая таксономия // Тканевая биология. Тарту: Тартуский гос. ун-т. 1980. С. 3–14.
- Хлопин Н.Г. Морфофизиологические классификации и генетическая система тканевых структур // Успехи соврем. биологии. 1943. Т. 16, № 3. С. 267–294.
- Шевлюк Н.Н., Стадников А.А. Представления о тканях. История и современность // Морфология. 2014. Т. 145. № 2. С. 74–78.
- Шевлюк Н.Н.. Стадников А.А. Взаимодействие про- и эукариот и проблемы биологии тканей // Морфология. 2015. Т. 148, № 5. С. 7–13.
- Hosoyama T., Mc Givern J.V., Van Dyke J.M., Ebert A.D., Suzuki M. Derivation of myogenic progenitors directly from human pluripotent stem cells a sphere-based culture // Stem Cells Transl. Med. 2014. № 3. P. 564–574. doi: 10.5966/sctm.2013-0143
- Маянская И.В., Гоганова А.Ю., Толкачёва Н.И., Ашкинази И.В., Маянский А.Н. Иммуносупрессивное действие мезенхимальных стволовых (стромальных) клеток // Иммунология. 2013. Т. 34, № 2. С. 122–128.
- Петрова Е.С., Исаева С.М. Нейральные стволовые/ прогениторные клетки стимулируют репаративные процесс в повреждённом нерве крысы // Цитология. 2017. Т. 59, № 11.
С. 780–781. - Цебоева А.А., Бибаева Л.В., Ефимов К.Ф., Дзахова Г.А. Применение клеточных трансплантатов в лечении травмы спинного мозга в эксперименте // Морфология. 2018. Т. 153, № 3. С. 298–299.
- Цыб А.Ф., Петров В.Н., Коноплянникова А.Г., и др. Ингибирующее действие in vitro мезенхимальных стволовых клеток на зимозаниндуцируемую продукцию активных форм кислорода макрофагами // Клеточные технологии в биологии и медицине. 2008. № 3. С. 171–177.
- Molina E.R., Smith B.T., Shah S.A., Shin H., Mikos A.G. Immunomodulatory properties of stem cells and bioactive molecules for tissue ingineering // J. Control. Release. 2015. Vol. 219, № 1. P.
107–118. doi: 10.1016/j.jconrel.2015.08.038 - Raffaghello L., Bianchi G., Bertolotto M., et al. Human mesenchymal stem cells inhibit neutrophil apoptosis: a model for neutrophil preservation in the bone marrow niche // Stem Cells. 2008. Vol. 26, № 1. P. 151–162. doi: 10.1634/stemcells.2007-0416
- Wang M., Yang Y., Yang D. Umblical cord blood-derived mesenchymal stem cells in vitro // Immu nology. 2009. Vol. 126, № 2. P. 220–232. doi: 10.1111/j.1365-2567.2008.02891.x
- Дыгай А.М., Скурихин Е.Г. Стволовая клетка. Новые подходы в терапии дегенеративных заболеваний // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2012. Т. 56, № 2. С. 3– 3.
- Мануилова Е.С., Гривенников И.А. Эмбриональные стволовые клетки. Достижения и перспективы // В кн. Биология стволовых клеток и клеточные технологии. Под ред. М.А.Пальцева. Т.1. Гл. 7. М.: ОАО «Изд-во «Медицина», Изд-во «Шико». 2009. С. 141–171.
- Соколова И.Б., Полынцев Д.Г. Эффективность применения мезенхимных стволовых клеток для улучшения микроциркуляци в коре головного мозга спонтанно гипертензивных крыс // Цитология. 2017. Т. 59, № 4. С. 279–284.
- Челышев Ю.А. Спинной мозг: травматическое повреждение и терапевтические мишени. Актовая речь. 14 мая 2019 г. Казань: Казанский ГМУ, 2019. 28 с.
- Ankrum J., Karp J.M. Mesenchymal stem cell therapy: two steps forward, one step back // Trends Mol. Med. 2010. Vol. 16, № 5. P. 203–209. doi: 10.1016/j.molmed.2010.02.005
- Sensebe L., Krampera M., Schrezenmeier H., Bourin P., Giordano R. Mesenchymal stem cells for clinical application // Vox Sang.2010. Vol. 98, № 1. P. 93–107. doi: 10.1111/j.1423- 0410.2009.01227.x
- Sharma R.R., Pollock K., Hubel A., McKenna D. Mesenchymal stem or stromal cells: a review of clinical applications and manufacturing practices // Transfusion. 2014. Vol. 54, № 5. P. 1418–1437.
- Sivanathan K.M., Gronthos S., Rojas-Canales D., Thierry B., Coates P.T. Interferon-gamma modification of mesenchymal stem cells: implications of autologous and allogeneic mesenchymal stem cell therapy in allotransplantation // Stem Cell Rev. 2014. Vol. 10, № 3. P. 351–375. doi: 10.1007/s12015-014-9495-2
- Тимин Г.В., Рыжов В.А., Николаев Б.П., и др. Разработка нового метода детектирования системно вводимых стволовых клеток в организме // Цитология. 2017. Т. 59, № 11. С. 796–797.
- Юдинцева Н.М., Нащекина Ю.А., Боголюбова И.О., и др.. Оценка влияния наночастиц на свойства мезенхимных клеток костного мозга в условиях in vitro и их визуализация в условиях in vitro и in vivo // Гены и клетки. 2017. Т. 12, № 3. С. 275.
- Бочков Н.П., Воронина Е.С., Катосова Л.Д., и др. Генетическая безопасность клеточной терапии // Вестник Российской АМН. 2011. № 9. С. 5–10.
- Михеева Н.Ф., Бутылин П.А., Зарицкий А.Ю., Попов Б.В. Снижение пролиферативной активности мезенхимных стволовых клеток человека в ходе долгосрочного культивирования не сопряжено с изменением их миграционных свойств // Цитология. 2017. Т. 59, № 12. С. 836–845.
- Петинати Н.А., Капранов Н.М., Бигильдеев А.Е., и др. Изменение свойств мультипотентных мезенхимных стромальных клеток под действием интерферон-гамма // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2017. Т. 163, № 2. С. 194–199.
- Ратушный А.Ю., Буравкова Л.Б. Секреторный фенотип мезенхимных стромальных клеток при репликативном старении и в 784.
- Савченкова И.П., Савченкова Е.А., Гулюкин М.И. Изме- нение мультипотентных мезенхимных стромальных клеток, выделенных из подкожно-жировой ткани человека, в результате длительного культивирования // Цитология. 2017. Т. 59, № 5. С. 307–314.
- Van Zant G., Holland B.P., Eldridge P.W., Chen J.J. Genotyperestricted growth and aging pattern in hematopoietic stem cell population of allophenic mice // J. Exp. Med. 1990. Vol. 17, № 5. P. 1547–1566. doi: 10.1084/jem.171.5.1547
Выпуск
Другие статьи выпуска
Статья посвящена 80-летию со дня рождения известного учёного-морфолога, доктора медицинских наук, профессора, заслуженного деятеля науки и техники Украины, академика Российской академии наук, советника ректора Крымского федерального университета имени В.И. Вернадского по медицинскому образованию и науке Анатолия Андреевича Бабанина. В статье изложена краткая биография, научные и педагогические достижения и заслуги академика А.А. Бабанина.
Цель. Выявление тучных клеток в большой мере зависит от избранного красителя и фиксатора, от типа тучных клеток и исследуемой ткани, от вида животного. Исходя из этого, целью данной работы было протестировать три различных красителя для нахождения оптимального способа гистохимического выявления тучных клеток в мягкой мозговой оболочке крысы.
Материал и методы. В работе использовали мозг крыс линии Вистар в возрасте 5, 14 и 30 дней (n=15). Срезы мозга толщиной 6–7 мкм окрашивали крезиловым фиолетовым, метиленовым зелёным или толуидиновым синим по методу Ниссля и просматривали в световом микроскопе Leica DM750 (Германия).
Результаты. Тучные клетки были обнаружены в мягкой мозговой оболочке крыс всех исследованных возрастов при окраске любым из использованных красителей. Их можно определить по метахроматической окраске. При использовании крезилового фиолетового или толуидинового синего на препаратах наблюдалась интенсивная окраска всех клеточных элементов нервной ткани, на фоне которой метахроматически окрашенные тучные клетки выделялись слабо, иногда их было невозможно отдифференцировать от окружающей ткани. После окрашивания метиленовым зелёным окраска срезов мозга была более бледной, но метахроматически ярко окрашенные тучные клетки на этом фоне контрастно выделялись и их метахромазия чётко регистрировалась при цифровой фотосъёмке.
Выводы. Для изучения тучных клеток в мягкой мозговой оболочке крысы оптимально подходит метахроматическая окраска метиленовым зелёным. Она позволяет легко выявлять пиальные мастоциты, исследовать их морфологические особенности и удобна для морфометрического исследования тучных клеток.
Цель. Выявить и описать микро- и ультраструктурные термоиндуцированные изменения стенки кисты Бейкера в зависимости от продолжительности однонаправленного равномерного нагрева при 70 °С.
Материалы и методы. Из 15 кист Бейкера, иссечённых во время операции, было взято по одному полнослойному фрагменту, каждый из которых был разделён на 4 части. Одна из них являлась контрольным образцом, а оставшиеся 3 фрагмента размещали синовиальной оболочкой вниз на термостолике, нагретом до 70 °С, с экспозицией 60, 120 и 180 с. Гистоморфологическое исследование образцов осуществляли при помощи светооптического и электронного микроскопов.
Результаты. Определены 2 слоя стенки кисты Бейкера: внутренний (синовиальный) и наружный (фиброзный). В образцах с периодом теплового воздействия 60 с не отмечено повреждений даже синовиального слоя. В тканях кисты после 120 с термовоздействия обнаружены признаки термического повреждения клеток синовиального слоя и подлежащих коллагеновых волокон фиброзного слоя. При продолжительности нагрева до 180 с гистоморфологическое исследование обнаружило признаки повреждения, доходящие до середины фиброзного слоя, а на электронно-микроскопическом уровне определялись признаки глубокой дезорганизации коллагеновых волокон стенки кисты.
Обсуждение. При световой микроскопии неповреждённых участков стенки кисты выделяли 2 слоя (синовиальный и фиброзный) различной плотности с проходящими сквозь них кровеносными сосудами. Эксперимент позволяет предположить, что для достижения клинически значимого результата термотерапии кисты Бейкера необходимо распространение зоны необратимой коагуляции за середину фиброзного слоя стенки кисты. Это в свою очередь гарантирует повреждение капиллярной сети, обеспечивающей трофику и пролиферацию синовиацитов. Выдвинутая гипотеза соответствует парадигме аналогичных исследований коагуляции кист иных локализаций.
Заключение. Полученные результаты светооптического и электронно-микроскопического исследования фрагментов стенки кисты Бейкера свидетельствуют о прямой зависимос
Издательство
- Издательство
- ЭКО-ВЕКТОР
- Регион
- Россия, Санкт-Петербург
- Почтовый адрес
- 191186, г Санкт-Петербург, Центральный р-н, Аптекарский пер, д 3 литера а, помещ 1Н
- Юр. адрес
- 191186, г Санкт-Петербург, Центральный р-н, Аптекарский пер, д 3 литера а, помещ 1Н
- ФИО
- Щепин Евгений Валентинович (ГЕНЕРАЛЬНЫЙ ДИРЕКТОР)
- E-mail адрес
- e.schepin@eco-vector.com
- Контактный телефон
- +7 (812) 6488366